发布时间:2020-08-11 09:52 原文链接: 差异DNA的PCR扩增实验

实验步骤

一、材料


1. 缓冲液、溶液和试剂


dNTP 溶液(包含所有 4 种 dNTP,各 10 mmol/L)


2. 酶和酶缓冲液


PCR 反应缓冲液,10X


聚合酶混合液,50X(Advantage2,Clontech,或相当产品)


3. 核酸和寡核苷酸


DNA 样品(即方案 2 第 16 步中的各消减样品)


嵌套 PCR 引物 NP1(10umol/L)


嵌套 PCR 引物 NP2R(10umol/L)


PCR 引物 PI(10umol/L)


来自方案 1 第 4 阶段第 8 步的未消减检测者对照


4. 专用设备


热循环仪,预设至 72°C


5. 附加试剂


2% 琼脂糖凝胶电泳所需的试剂与设备


二、方法


1. 初级 PCR


(1)每个稀释的 DNA 样品(即方案 2 第 16 步中的各消减样品,以及方案 1 第 4 阶段第 7步中相应的稀释但未消减的检测者对照),各取 1ul分装到准确标记的离心管中。冷冻的样品应该解冻,并在 72°C 温育,然后吹吸混匀再使用。


(2)另取一个离心管,为所有的初级 PCR 管配制一个主体混合液。按照下面的顺序将试剂混合。


灭菌水                                     19.5ul

PCR 反应缓冲液,10X            2.5ul

dNTP 溶液(10mmol/L)           0.5ul

PCR 引物 PI(10pmol/L)           1.0ul

50X 聚合酶混合液                   0.5ul

总体积                                     24.0ul


(3)取 24ul 主体混合液,分装到第 1 步准备的各反应管中。


(4)用 1 滴矿物油覆盖。


(5)在热循环仪中,将反应混合液 74°C 温育 5 min,以延伸接头。这一步「填充」接头所缺失的链,因而产生了 PCR 引物的结合位点。不要将样品从热循环仪中取出。


(6)立即开始下面的循环。


(7)从每个管中取 4ul, 在 2.0% 琼脂糖 TAE 凝胶上分析。

对于某些复杂的消减(复杂的组织或其核基因钽),建议分两步进行初级 PCR, 这样可以显著降低背景。首先,进行本方案所描述的初级 PCR, 然后按照方案 4 第 1 阶段笫 10 步所描述的步骤再进行一次初级PCR。最后再逬入次级 PCR(方案 3)。


2. 次级 PCR


(8)每个初级 PCR 产物各取 2ul, 用 38ul 水稀释。


(9)从第 1 步稀释的各初级 PCR 产物中,各取 lul,加到标记好的离心管中。


(10)按照下面的顺序将试剂混合,为次级 PCR 及一个附加反应的样品配制主体混合液。


灭菌水                                            18.54ul

PCR 反应缓冲液,10X                    2.5ul

嵌套 PCR 引物 NH(10umol/L)         1.0ul

嵌套 PCR 引物 NP2R(10umol/L)     1.0ul

dNTP 溶液(10 mmol/L)                 0.5ul

50X 聚合酶混合液                           0.5ul

总体积                                             24.0ul


(11)将 24ul 主体混合液分装至第 2 步的各反应管中。


(12)用 1 滴矿物油穎盖。


(13)立即开始下面的循环。


(14)从每个管中取 4ul,在 2.0% 琼脂糖 TAE 凝胶上分析。


(15)反应产物应保存在- 20°C。现在,这个 PCR 产物就富集了差异 DNA。


如果不需要 MOS, 就可以直接进入「消减 DNA 的克隆」这一部分。


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