体内处理精原干细胞产生转基因小鼠的试验方法
实验概要本试验描述了通过体内处理小鼠精原干细胞产生转基因小鼠的技术，其成功率高。在此次研究中通过的将幼鼠的精原干细胞（SSCS）与重组慢病毒表达的EGFP -F在体内感染，然后与正常雌性交配。转基因可遗传和前处理的小鼠可在多次交配试验中使用。这项技术可以适用于模拟接近人类发展和疾病的实验室动物模型。实验原理转基因小鼠的产生促使我们理解成长和发展的各个方面了有了巨大的进步。使用各种技术将一个单细胞胚胎植入到伪孕妈妈或用干细胞植入技术生成淘汰或基因敲除小鼠。这些实验昂贵，劳动密集，费时和需要好几个女的捐助者。精原干细胞是负责生产精子和合适的生殖转换对象。Nagano等将重组逆转录病毒体外感染精原干细胞，然后异种移植到雄性小鼠睾丸细胞后产生转基因小鼠产生。在某些情况下受体小鼠很难接受供体的精原细胞，其成功率是相当低的。同样，携带lacZ基因的逆转录病毒与睾丸生殖细胞的体内转导，其成功率为2.8％。植入后的低成功率阻碍了胚......阅读全文
转基因小鼠制备实验
实验材料 小鼠试剂、试剂盒 HCGPMSG透明质酸酶戊巴比妥钠仪器、耗材 显微镜镊子持卵针注射针实验步骤 1. 选取7~8周龄雌性小鼠，阴道口封闭，作为供体，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。 2. 47~48小时后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并与正常公鼠合
转基因小鼠制备实验
1、 选取7~8周龄雌性小鼠，阴道口封闭，作为供体，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。 2、 47~48小时后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并与正常公鼠合笼；另取数只适龄母鼠（2月龄以上）作为受体，阴道口潮红，与结扎公鼠合笼。 3、第二天上午9:00前观察供体、受
转基因小鼠制备实验
转基因小鼠制备实验可应用于：（1）动物发育研究；（2）研究细胞功能调控机制。实验方法原理遗传的基本物质是DNA，基因是位于染色体上有遗传效应的DNA片段，对于储存在生物全套染色体中的全部遗传信息，可称其为基因组。不同种类、不同个体的生物基因组成是不同的，对动物个体来说，非自身的基因成分属于外源基因，
转基因小鼠制备实验
实验步骤 1. 选取7~8周龄雌性小鼠，阴道口封闭，作为供体，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。2. 47~48小时后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并与正常公鼠合笼；另取数只适龄母鼠（2月龄以上）作为受体，阴道口潮红，与结扎公鼠合笼。3. 第二天上午9:00前观察
转基因小鼠制备实验方法
实验概要掌握转基因小鼠制备基本实验方法。实验步骤1. 选取7~8周龄雌性小鼠，阴道口封闭，作为供体，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。 2. 47~48小时后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并与正常公鼠合笼；另取数只适龄母鼠（2月龄以上）作为受体，阴道口潮红，与结
转基因食物或危害小鼠健康
法国卡昂大学的一个研究小组近日宣布，他们发现被终身喂食一种普通转基因玉米的小鼠易患上肿瘤，并且肝脏和肾脏也受到严重损害。目前，法国政府已经启动了对转基因玉米安全性的调查。 虽然之前的安全实验已经证实在食用90天之后，这种转基因玉米对动物没有不良影响，《每日邮报》相关报道称，新的实验被认为是首次对
转基因小鼠搭上西班牙军队“便机”
这些笼子里装的是运抵大加那利岛的Javier Castro Hern的转基因小鼠，这些动物曾在西班牙马德里被拦截数月。 被西班牙航空公司拒载运载的29只转基因小鼠近日搭乘西班牙军队的便机飞往加那利群岛，现在它们已经抵达目的地特纳利夫岛上的拉古纳大学。 这些小鼠在美国培
转基因小鼠模型的建立(SOP)4
（6） 为保暖包裹小鼠于纱布中或将其放置于热垫内使其苏醒，处于麻醉状态 下的小鼠应该严格监护直到其完全苏醒。手术后小鼠饲养2周后确定手术是否成功。 （7） 实验性饲养：将1-2只母鼠与输精管切除小鼠合笼饲养，次晨进行阴道栓检查。有阴道栓的母鼠，用磷酸缓冲液处理后24小时，其输卵管潮红。卵细胞
转基因小鼠模型的建立(SOP)6
[洗卵管制作] 1） 点燃酒精灯，调节火焰到最佳。捏持玻璃毛细吸管或巴氏移液管在火焰上焰旋转过火。 2） 当吸管开始变软，快速撤离火焰，向外急剧扯拉使吸管变长，形成口径大约200?l的吸管。注意制备过程中离开火焰的时间以及扯拉的力度，尽量保证制备吸管的一致性。 3） 为吸管评分，轻柔地
转基因小鼠模型的建立(SOP)3
（2）受体母鼠的准备输卵管转移的受体鼠应该为4-6周龄大小，体重在20-25克左右，严禁用低体重以及超重母鼠，若体重较低，其体能不足以维持妊娠，可能导致受精卵的重新吸收；若体重较重，麻醉剂被吸收入脂肪组织，降低麻醉效果，可能使手术困难，而且脂肪组织的存在意味着静脉的存在，所以手术时切掉脂肪组织可能导
转基因小鼠模型的建立(SOP)7
4） 如果未见DNA溶液流，则轻轻摩擦持样器钝缘，渐渐的打开注射器针头。针头重新进入油内确定DNA溶液流的存在。5） 移动持卵管回到受精卵下部。通过微分驱动水压控制系统使持卵管内产生温和的负压，并使持卵管末端吸住受精卵。此操作必须确保受精卵基底部与凹玻片基底部轻轻接触。注意不宜吸得过紧，否则会使
转基因小鼠模型的建立(SOP)7
10） 移卵操作完成后，撤回移卵管，去除器械，按原本位置将各器官重置于腹腔内。10）缝合切口，用小夹夹持皮肤。常用自动小夹代替缝线，这样可以避免小鼠啃嘶缝线，切口裂开。11）若进行双侧手术，则于另一侧子宫角重复上述操作。12）手术完成后，安置小鼠于清洁的笼中。麻醉状态下，小型哺乳动物无法有效维持机
转基因小鼠模型的建立(SOP)5
4．显微注射（1）导入DNA的制备：显微注射首先涉及导入DNA的制备，显微注射的转入基因通常为去除载体序列的线状DNA，转基因所用载体是真核表达载体，即含有在哺乳动物细胞内表达的真核启动子。所谓组织特异性的实现多是通过组织特异性启动子来实现组织特异性表达的。制备转基因小鼠，必须对待导入DNA进行分离
转基因小鼠模型的建立(SOP)2
[不足之处]（1）外源基因随机整合；（2）个别原核不清晰，需进行特殊处理；（3）需大型精密仪器，费用昂贵；（4）操作周期相对较长。（二）实验器材的准备1．输精管切除术用器材：弯式有齿镊、直式有齿镊、显微镊、手术剪、自动小夹涂药器、自动小夹、带弯针4/0丝线及持针器、直径为10cm塑料 Petri氏培
转基因小鼠制备实验方法（protocol)
1、 选取7~8周龄雌性小鼠，阴道口封闭，作为供体，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。2、 47~48小时后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并与正常公鼠合笼；另取数只适龄母鼠（2月龄以上）作为受体，阴道口潮红，与结扎公鼠合笼。3、第二天上午9:00前观察供体、受体，
转基因小鼠模型的建立(SOP)1
名称：转基因小鼠模型的建立(SOP)关键词：转基因小鼠目的：在动物体研究转化基因原理：转基因动物是指染色体基因组中整合有外源基因并能遗传给后代的一类动物。整合到动物染色体基因组的外源基因称为转基因。转基因技术则是指制备转基因动物所需的一套技术，它涉及外源基因的构建、载体和受体的筛选、基因导人技术、供
转基因小鼠的“三段进阶”
小鼠转基因的“三段进阶”。这里我们说的转基因小鼠是指：将一段外源基因随机插入到小鼠基因组中，获得过量表达目的基因的小鼠模型。转基因1.0 显微注射法构建完全随机插入转基因小鼠用显微注射针将线性化的外源DNA片段直接注入小鼠受精卵的原核中，使外源基因整合到小鼠基因组中，从而获得转基因小鼠。优点：过程较
转基因小鼠模型的建立(SOP)8
（1） RNA的分离：根据实验者的需要从转基因小鼠组织或细胞中提取总RNA或mRNA。分离总RNA比较简单，且适合做基因做基因转录分析。实验操作参见第一章的第四节。（2） Northern 印迹分析：该技术用于定性检测转基因动物组织或细胞中转基因转录的相对水平。其实验操作参见第一章的第九节。（3
动物实验技术：转基因小鼠制备实验
1、 选取7~8周龄雌性小鼠，阴道口封闭，作为供体，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。2、 47~48小时后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并与正常公鼠合笼；另取数只适龄母鼠（2月龄以上）作为受体，阴道口潮红，与结扎公鼠合笼。3、第二天上午9:00前观察供体、受体，
转基因小鼠预言新流感病毒
德国的研究者开发了一种转基因小鼠，这种小鼠可以帮助科学家们发现新的可能导致全球流行病的流感病毒株。在一项研究中对小鼠进行了描述。“禽流感病毒在体内逃避 MxA 蛋白限制需要病毒核蛋白具有人类特征”这将于 4 月 10 日在实验医学杂志上发表。 甲型流感病毒从猪、禽类或其他动物物种传播给人类时，
转基因工程小鼠落户强磁场中心
无特定病原体级动物中心引进多种基因工程小鼠。 中科院强磁场科学中心无特定病原体（SPF）级动物中心日前投入使用， 从美国引进的多种基因工程小鼠也喜迁新居。这标志着强磁场中心肿瘤分子遗传和表观遗传学的研究正式起航。 能稳定遗传且表达外源基因的小鼠即转基因小鼠。目前该动物中心已有超过30个基因工程小
最新RNAi技术可媲美转基因小鼠模型
基因编辑技术一直都是生命科学的热门研究领域，近来编辑领域出现了可与转基因小鼠技术相媲美的新RNAi干扰技术，该技术由洛克菲勒大学的研究人员研制出，在全基因组水平上首次对小鼠进行RNAi筛查研究，并在数月内发现了导致表皮肿瘤生长的基因，研究成果发表在《自然》期刊上。 RNAi技术筛查致病基因
ace2转基因小鼠的缺点
发育脊髓缺陷。ace2转基因小鼠的缺点是转基因小鼠的神经管问题异常严重，也就是发育脊髓缺陷。这类出生缺陷会导致脊柱裂和无脑畸形。转基因小鼠被广泛应用于基因表达、蛋白质间相互作用、癌症研究、免疫学研究、干细胞研究、神经疾病研究、药物研发与药效评估等领域。
ace2转基因小鼠的缺点
发育脊髓缺陷。ace2转基因小鼠的缺点是转基因小鼠的神经管问题异常严重，也就是发育脊髓缺陷。这类出生缺陷会导致脊柱裂和无脑畸形。转基因小鼠被广泛应用于基因表达、蛋白质间相互作用、癌症研究、免疫学研究、干细胞研究、神经疾病研究、药物研发与药效评估等领域。
制备转基因小鼠过程中的若干技巧
背景：当今转基因技术迅速发展，作为模式动物的小鼠在上世纪就已经有完整的转基因制备过程。虽然技术成熟但方法单一，所以需要进行发展和改进。 方法改进： 1.在小鼠品系的选择上需要注意，尽量选择容易受胎的品系。如ICR小鼠 2.在利用显微注射法制备转基因小鼠时，质粒浓度在1.5ng/
Cell:－CRISPR技术加快转基因小鼠模型构建
Whitehead研究所的研究人员利用基因调控系统CRISPR/Cas，仅需一步操作就可将报告基因和条件性等位基因转入小鼠基因组中。目前生成包含如此复杂工程等位基因的动物只需数周而非数年的时间，科学家可快速利用这些动物来构建疾病模型及研究基因功能。这一突破性的研究发表在《细胞》(Cell)杂志上
显微注射法建立转基因小鼠模型的操作流程
实验概要本实验详细介绍了显微注射法建立转基因小鼠模型的操作流程。实验原理转基因小鼠制备的基本原理是将改建后的目的基因(或基因组片段)用显微注射法注入供体小鼠的受精卵(或着床前胚胎细胞)，然后将此受精卵(或着床前胚胎细胞)再植入受体动物的输卵管(或子宫)中，使其发育成携带有外源基因的转基因动物，通过分
新研究实现转基因小鼠脑内多基因的同时激活
1月15日，《自然-神经科学》（Nature Neuroscience）发表了题为《利用CRISPR/dCas9转基因小鼠在脑内进行多基因的同时激活》的研究论文，该研究由中国科学院上海生命科学研究院神经科学研究所、脑科学与智能技术卓越创新中心、神经科学国家重点实验室杨辉研究组与上海科技大学黄鹏羽
基因编辑CRISPR/Cas9技术构建转基因小鼠的优势
当当当！敲黑板！！看这里！！！ 2016年国家自然科学基金放榜已经有一段时间啦！各位老师是不是还沉浸在喜悦中不能自拔呢？O(∩_∩)O清醒一下，我们的目标是：基金年年有，明年中更多！ 每年的国家自然科学基金都是中国科研领域的风向标！通过分析国自然，可以看出最新的研究热点、目前国家重视
基因编辑CRISPR/Cas9技术构建转基因小鼠的优势
当当当！敲黑板！！看这里！！！2016年国家自然科学基金放榜已经有一段时间啦！各位老师是不是还沉浸在喜悦中不能自拔呢？O(∩_∩)O清醒一下，我们的目标是：基金年年有，明年中更多！每年的国家自然科学基金都是中国科研领域的风向标！通过分析国自然，可以看出最新的研究热点、目前国家重视的科目、临床上亟待解