实验动物给药量的确定
在观察一个药物的作用时，应该给动物多在的剂量是实验开始时应确定的一个重要问题。剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死，可以按下述方法确定剂量： 1．先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干分之一为应用剂量，一般可取1/10-1/5。 2．植物药粗制剂的剂量多按生药折算。 3．化学药品可参考化学结构相似的已知药物，特别是化学结构和作用都相似的药物的剂量。 4．确定剂量后，如第一次实验的作用不明显，动物也没有中毒的表现（体重下降、精神不振、活动减少或其他症状），可以加大剂量再次实验。如出现中毒现象，作用也明显，则应降低剂量再次实验。在一般情况下，在适宜的剂量范围内，药物的作用常随剂量的加大而增强。所以有条件时，最好同时用几个剂量作实验，以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时，则更应慎重分析。 5．用大动物进行实验时，开始的剂量......阅读全文
实验动物给药量的确定
在观察一个药物的作用时，应该给动物多在的剂量是实验开始时应确定的一个重要问题。剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死，可以按下述方法确定剂量： 1．先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干分之一为应用剂量，一般可取1/10-1/5。 2．植物
实验动物给药量的确定
在观察一个药物的作用时，应该给动物多在的剂量是实验开始时应确定的一个重要问题。剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死，可以按下述方法确定剂量：1．先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干分之一为应用剂量，一般可取1/10-1/5。2．植物药粗制剂
实验动物用药量的计算
动物实验所用的药物剂量，一般按mg/kg体重或g/kg体重计算，应用时须从已知药液的浓度换算出相当于每kg体重应注射的药液量（ml数），以便给药。 例1：计算给体重1.8kg的家兔，静脉注射20%氨基甲酸乙酯溶液麻醉，按每kg体重1g的剂量注射，应注射多少ml？ 计算方法：兔每kg体重需注射1
如何掌握准确的动物实验麻醉药量和选择合适的给药方法
常用麻醉药的剂量和用法： 戊巴比妥钠：适用于犬、猫、兔时，多采用静脉和腹腔注射的方法，静脉时计量为30mg/kg，常用浓度为3％，用药量为1.0mg/kg；腹腔时计量为40-50mg/kg，常用浓度为3％，用药量为1.4-1.7mg/kg。当对象为豚鼠时，用腹腔注射计量为40-
如何掌握准确的动物实验麻醉药量和选择合适的给药方法
常用麻醉药的剂量和用法：戊巴比妥钠：适用于犬、猫、兔时，多采用静脉和腹腔注射的方法，静脉时计量为30mg/kg，常用浓度为3％，用药量为1.0mg/kg；腹腔时计量为40-50mg/kg，常用浓度为3％，用药量为1.4-1.7mg/kg。当对象为豚鼠时，用腹腔注射计量为40-50mg/kg常用浓度为
实验动物经口给药法——实验动物经口给药法
实验材料小鼠大鼠豚鼠兔猫狗试剂、试剂盒水药液片剂胶囊剂仪器、耗材灌胃器注射器兽用针头鼠笼开口器导尿管镊子经口给药有口服和灌胃两种方法，口服法一般将药物掺入饲料或溶于水中，由动物自由摄取，但为了保证药物的剂量准确性，应使用灌胃法。可供选择的动物有小鼠、大鼠、豚鼠、兔、猫、狗等动物。灌胃法(1)小鼠灌胃
北京确定“绿色公园”标准－给小动物留空间
北京朝阳公园风光 正在举办的第六届北京公园节上，不少市民和游客都收到一本《2011北京公园节绿皮书》。在该绿皮书中，北京市首次公布“绿色公园标准”，包括公园的规划与绿色设计、绿色环境与生态管理、景观质量、空气质量、水体质量、生物多样性、绿色设施与材料等11项内容。
实验动物的除毛和给药
一、实验动物的除毛在动物实验中，被毛有时会影响实验操作与观察，因此必须除去。除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脱毛等。（一）剪毛法：剪毛法是将动物固定后，先用蘸有水的纱布把被毛浸湿，再用剪毛剪刀紧贴皮肤剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪破皮肤。剪下的毛应集中放在一容器内，防止到处飞扬。给狗、羊等动物
实验动物给药途径和方法
（六）淋巴囊注射蛙类常采用此法，因其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头背淋巴囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。有时也可采用胸淋巴囊给药。方法是将针头刺入口腔，使穿过下颌肌层入
实验动物经口给药法
经口给药有口服和灌胃两种方法，口服法一般将药物掺入饲料或溶于水中，由动物自由摄取，但为了保证药物的剂量准确性，应使用灌胃法。可供选择的动物有小鼠、大鼠、豚鼠、兔、猫、狗等动物。 灌胃法(1)小鼠灌胃法：将小鼠放在粗糙面上，用左手手掌及小指无名指夹住尾部，再以拇指及示指抓住两耳和头颈部的皮肤，使口腔和
实验动物给药途径和方法
在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。 （一）皮下注射 注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚
动物颅脑给药—套管给药实验的操作方法
在脑科学基础研究领域中，颅脑给药已经成为大多数动物实验的重要环节。根据实验设计，常见有三种给药方式：单次注射给药、多次反复给药和持续释放给药。前者通常采用立体定位仪配合微量注射泵给药，第二种通常采用套管给药，第三种通常通过植入式缓释泵给药。 本文主要介绍套管给药，它主要用于给小鼠、大鼠、猴等实验动物
实验动物给药和采血方法（二）
4.后肢胫部皮下静脉取血将兔仰卧固定于兔固定板上，或由一人将兔固定好。拔去胫部被毛，在胫部上端股部扎以橡皮管，则在胫部外侧浅表皮下，可清楚见到皮下静脉。用左手两指固定好静脉，右手取带有5（1/2）号针头的注射器内皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器，表示针头已刺入血管，即可取血。一次
实验动物给药和采血方法（一）
1.割(剪）尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器（刀或剪刀）割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉
细胞水平药效实验，给药剂量应该怎样确定
细胞水平药效实验，给药剂量应该怎样确定你的预实验的三个浓度的确定是查阅相关文献资料后确定的吧?如果无相关文献,你的预实验就只选了3个浓度,还有一个浓度无效,按说正式实验并不太好确定高中低三个剂量,应该继续预实验.下面是建议：1）比较30与15的效果,如果30效果好于15,往上再选浓度,15好于30,
如何确定动物实验室的洁净级别？
我国对实验动物的环境及设施有国家标准，其标准规定了实验动物环境及设施的技术要求、建筑设施、设施分类、设施区域的设置、垫料、饮水和笼具的要求及实验方法等，适用于实验动物的饲育、实验、和生产。标准实验动物的分四类：普通级、清洁级、SPF级、ＧＦ级。相应的设施分类是开放系统、亚屏障系统、屏障系统、隔离系统
常用小型实验动物灌胃给药技术方法介绍
随着生命科学技术的发展，动物实验已成为医学实验研究的基本方法。根据实验研究目的、实验动物的种类及药物剂型、剂量的不同，要求对实验动物实施不同的给药方法。尤其对于药物的毒理、药效的研究和药物剂量的确定，经口灌胃给药方法是一种重要的途径。在国内文献上却很少见到具体的描述。在此，作者将在实践中摸索出的一套
如何确定动物实验室的规模及洁净级别？
一、如何确定动物实验室的规模？不同的药品检验所需要的动物品种和数量不一样，动物的品种和数量对规模设置影响很大，由于动物的品种和级别的差异，所要求的试验和饲养环境也不同，需要的动物数量又是根据试验的内容所定，因此各企业的动物实验室规模应根据产品、生产量明确提出实验需要的品种、数量及动物实验的内容而定。
40万买下3大医院处方信息－根据用药量给医生回扣
“统方”是医院里的一种专业术语，其实就是一个医院对医生处方用药量信息的一个统计。哪些医生哪种药用得比较集中？哪种药比较受医生的青睐？这对普通老百姓来说，价值并不大，但是一些爱钻空子的医药代表却视此为宝贝，他们可以有“的”放“矢”，根据医生的用药量兑现回扣，但这些数据是保密的，很难搞到手――除非，
实验动物的麻醉方法3
四、实验动物用药量的确定及计算方法（一）动物给药量的确定观察一种药物对实验动物的作用时，一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死。可以按下述方法确定剂量：1. 先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干
给地球上最奇怪动物测序
鸭嘴兽 图片来源：Lukas / stock.adobe.com 18世纪末，欧洲人在澳大利亚发现了鸭嘴兽，它长得像海狸，通常被认为是世界上最奇怪的哺乳动物。鸭嘴兽表现出一系列奇怪的特征：产卵而不是胎生，分泌乳汁，没有牙齿，有毒刺，有10条性染色体。这种古怪的半水栖动物一直困扰着研究人员。
实验动物实验标本的采集实验——实验动物尿液采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒水仪器、耗材收集器实验步骤尿液的采集 常用的采集方法较多，一般在实验前需给动物灌服一定量的水。(1) 代谢笼法：此法较常用，适用于大、小鼠。将动物放在特制的笼内。一般需收集 5 小时以上的尿液，最后取平均值。(2) 导尿法：常用于雄性兔、狗。动物轻度麻醉后，固定于手术台上
实验动物实验标本的采集实验——实验动物脑脊液采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 狗、兔脑脊液的采集：通常采取脊髓穿刺法，穿刺部位在两髂连线中点稍下方第七腰椎间隙。动物麻醉后侧卧位固定，头尾部尽量弯向腰部，去被毛。消毒后一手固定穿刺部位的皮肤，腰穿针垂直刺入，当有落空感及动物的后肢跳动时，针已达椎管内，抽去针芯，即
实验动物实验标本的采集实验——实验动物腹水的采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤抽取大鼠、小鼠的腹水时，抓取固定动物，使动物腹部朝上，消毒皮肤，针头在腹股沟和腹中线之间刺人腹腔，腹压高时腹水自然流出，腹水少时可用注射器抽取。
实验动物实验标本的采集实验——动物采血方法
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：适用于少量采血，如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后，将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉，让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。
倡导环保理念－美动物园拟给游客发“动物粪便”
美国底特律动物园计划14日给游客免费发放动物粪便制成的有机肥料，以倡导环境保护理念。 美联社4日报道，动物园拟于4月中旬举办“绿节”，展示园方如何利用动物粪便。活动期间，前1000名参观厌氧沼气池的游客将免费获得动物粪便制成的有机肥料。每份肥料重大约2.3千克，按照园方的说法，富含营养，“放在
动物实验时动物的选择
为了获得理想的实验结果，必须根据实验目的选择适宜的观察对象，在选择动物时，需考虑如下因素： 种属的选择不同种属的动物对同一疾病病因刺激的反应程度会有很大的差异。在选择实验动物时，尽可能选择对刺激因素较为敏感且与人类接近的种属。例如在进行发热实验时，宜首选家兔：在进行过敏反应和变态反应实验时，宜首选豚
人类多次将疾病传播给其他动物
covid-19现在正在北美白尾鹿中传播。图片来源：Wildlife Photographer via Getty Images 历史上的许多疾病最初都是通过其他动物传播给人类的，但疾病也会以另一种方式传播。近百项研究发现了大
常规剂型、系统给药siRNA显示动物疗效
《自然生物技术》杂志发表一篇由哈佛大学和麻州大学科学家的一个妊娠毒血症siRNA药物发现工作。作者根据溶解性FLT1（sFLT1，也称sVEGFR1）mRNA与膜上全长FLT1 mRNA的区别找到选择性敲低sFLT1的siRNA序列。在小鼠模型中不需使用特殊纳米制剂的siRNA显着降低血浆和胎盘
作物、动物给全球贡献了多少农业氨
过去几十年来大气氨排放与农业生产活性氮过量使用密切相关，然而，全球农业系统哪些作物或动物具有高氨排放潜力、农业氨排放如何影响全球氮沉降的时空格局尚不清楚。 3月28日，兰州大学资源环境学院氮循环研究团队在美国《国家科学院院刊》在线发表题为《探索1980年以来全球农业氨排放变化及其对氮沉降的贡