| 实验方法原理 | 将培养物放在显微镜的载物台上，打开电源，选择合适的镜头，聚焦于标本。如果必要的话，将聚光器和相差环调节在中心。 |
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| 仪器、耗材 | 倒置显微镜 擦镜纸 |
| 实验步骤 | 1. 确保显微镜（配有相差10×、20× 或40× 的物镜及聚光器和合适的相差环）洁净（用 70 % 乙醇擦拭载物台。如果有必要，用擦镜纸清洁物镜）。 2. 打开电源，将灯光强度从最低开始调至合适的强度，而不是直接打到强光。 3. 检查光源与聚光器的衔接： (a)将一张染色切片、培养瓶或培养皿放在载物台上； (b)关闭视场光圈； (c)聚焦在可变光阑上； (d)将可变光阑成像调整到视野的中央。 4. 将相差环调至中央： (a)如果显微镜配有相差望远镜，将之插入标准目镜位置，然后聚焦于相差环，检査聚光器环（黑色背景中的白环）是否与物镜环（白色背景中的黑环）同轴； (b)如果没有相差望远镜，则将染色的标本换为没有染色的培养物（活的或固定的培养物），重新聚焦，调整相差环，直到获得最优对比。 5. 观察细胞。10× 相差物镜作为常规观察已足够，4× 相差物镜不能提供足够的细节资料，而高于 10× 的放大倍数则限制了观察区域。 (a)注意生长期（例如，稀疏、亚汇合、汇合、致密）； (b)注意细胞状态（例如，清亮、透明或有颗粒、有空泡等）。 6. 检査培养基的清亮程度（例如，无碎片、漂浮的颗粒、污染迹象等），根据需要选择一个放大倍数更高的物镜。 7. 记录观察的结果。 8. 旋低变阻器（把灯光调暗），关掉电源。 9. 将培养液放回孵箱，或放在超净台上进行无菌操作。 |