本实验流程旨在对单细胞进行分离、捕获、标记和分析,以获取单个细胞的基因表达、蛋白质表达或其他生物分子信息,为细胞生物学、医学研究和临床诊断等提供准确和可重复的数据。
样本:细胞悬液(如组织解离后的细胞、血液细胞等)
试剂
细胞解离试剂
细胞活性检测试剂(如台盼蓝)
单细胞捕获试剂(如微流控芯片、磁珠等)
反转录试剂
PCR 试剂
荧光标记抗体(用于蛋白质分析)
核酸染料(用于细胞死活鉴定)
测序文库构建试剂
设备
流式细胞仪
单细胞分选仪
荧光显微镜
定量 PCR 仪
测序仪
离心机
移液器
超净工作台
样本处理
确保样本新鲜,如为组织样本,需迅速进行解离处理,获得单细胞悬液。
用细胞滤网过滤细胞悬液,去除细胞团块和杂质。
使用台盼蓝染色法检测细胞活性,确保活细胞比例符合实验要求。
试剂准备
按照试剂说明书,将所需试剂解冻并配制为工作液。
检查试剂的有效期和质量。
设备校准和调试
校准流式细胞仪和单细胞分选仪的液流系统和检测通道。
调试定量 PCR 仪和测序仪的参数,确保仪器正常运行。
流式细胞分选法
将处理好的细胞悬液加载到流式细胞仪上。
根据细胞的大小、形态、荧光标记等特征,设置分选参数,筛选出目标单细胞。
将分选得到的单细胞收集到含有特定培养基或缓冲液的微孔板或离心管中。
微流控芯片捕获法
将细胞悬液加载到微流控芯片的入口。
利用芯片内部的微通道和微结构,实现单细胞的捕获和隔离。
检查捕获的单细胞数量和状态。
转录组分析
对于分选或捕获的单细胞,进行裂解和 RNA 提取。
使用反转录酶将 RNA 反转录为 cDNA。
通过 PCR 或体外转录等方法对 cDNA 进行扩增。
蛋白质组分析
对于单细胞,加入荧光标记的抗体进行孵育。
洗涤去除未结合的抗体,通过荧光显微镜或流式细胞仪检测荧光信号。
数据预处理
对获取的原始数据进行质量控制,去除低质量的数据点。
进行数据标准化和归一化处理,消除系统误差。
细胞聚类分析
使用聚类算法,根据基因表达或蛋白质表达模式对单细胞进行分类。
分析不同细胞类群的特征和差异。
差异表达基因/蛋白质分析
比较不同细胞类群之间的基因/蛋白质表达水平,筛选出差异表达的分子。
进行功能富集分析,了解差异表达分子的生物学功能。
实验过程中要保持无菌操作,防止细胞污染。
严格控制实验条件,如温度、pH 值等,避免对细胞状态和实验结果产生影响。
对实验数据进行及时备份,防止数据丢失。
定期对实验设备进行维护和保养,确保其性能稳定。
设立对照实验,包括阳性对照和阴性对照,以验证实验结果的准确性。
对同一批样本进行多次重复实验,评估实验结果的重复性。
定期对实验人员进行培训和考核,提高实验操作的规范性和一致性。
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