基因组DNA的得率较低或者无基因组DNA原因及解决方法

1 ) 样品材料老化或者反复冻融导致 DNA 含量下降：

应选择新鲜的材料样品，如新鲜血液、新鲜菌液、刚离体的动物组织或幼嫩的植物组织等，不能立即处理的样品应放入液氮或-70℃低温保存，以免DNA降解。

2 ) 样品破壁或者裂解不完全， DNA 未充分释放：

动植物样品应在液氮中充分研磨，G+细菌、酵母等破壁较困难的样品应用溶菌酶、Lyticase酶或机械方法协助破壁。

3 ) 样品过多导致细胞裂解不充分：

加样过多导致细胞裂解不充分，细胞裂解不充分。

4 ) DNA 吸附不均匀：

如，在上吸附柱前没有加无水乙醇，或使用低浓度乙醇代替无水乙醇，会导致DNA不能充分沉淀，与硅胶模吸附不彻底，因此应在样品裂解后加适量的无水乙醇，再上吸附柱使DNA与硅胶模充分吸附。

5 ) DNA 洗脱不适当：

洗脱缓冲液pH过低会阻碍DNA从硅胶模上洗脱下来，应确保洗脱液pH值在7.0～8.5之间。洗脱液体积过少(<30μL)，不易浸透硅胶模，使DNA不能洗脱下来，因此，洗脱液体积应大于30μL，超过200μL，所得的DNA 浓度降低。洗脱时可以将洗脱液于65～70℃水浴预热，加入洗脱液后在室温静置2～5分钟，可提高洗脱效率，加大DNA 产量。