实验动物的处死以及尸体的处理

一、实验动物的处死方法

1. 较大动物的处死方法　以下几种方法适用于豚鼠、猫、兔、狗等较大或更大一点的动物。

（1）空气栓塞法：将空气注入动物静脉，使之很快栓塞而死。当空气注入静脉后，可在右心随着心脏的跳动使空气与血液相混致血液成泡沫状，随血液循环到全身。如进入肺动脉，可阻塞其分支，进入心脏冠状动脉，造成冠状动脉阻塞，发生严重的血液循环障碍，动物很快致死。一般兔、猫等需注入20～40ml。狗需注入80～150ml。这是zui常用的一种方法。

（2）急性失血法：①一次性抽取大量心脏血液，可使动物很快致死。②狗可采用股动、静脉放血法。给狗按每千克体重静脉注射硫喷妥纳20～30mg，动物麻醉后，暴露股三角区，用利刀在股三角区作一个约10cm的横切口，把股动、静脉全切断，血立即喷出。用一块湿纱布不断擦去股动脉切口周围处的血液和血凝块，同时不断地用自来水冲洗流血，使股动脉切口保持畅通，动物3～5min内即死亡。

（3）破坏延脑法：如果急性实验后，脑已暴露，可用器具将延髓破坏，导致动物死亡。对家兔可用木槌或手击其后脑部，损坏延脑，造成死亡。

（4）开放性气胸法：将动物开胸，造成开放性气胸。这时胸膜腔的压力与大气压力相等，肺脏因受大气压缩发生肺萎陷，纵隔摆动，动物窒息而死。

（5）化学药物致死法：给动物的静脉内注入福尔马林溶液，使血液内蛋白凝固，导致全身血液循环严重障碍和缺氧而死。成年狗静脉内需注入10%福尔马林溶液20ml。

4%戊巴比妥作静脉注射（1mg/kg），或20%氨基甲酸乙酯（尿烷或乌拉坦作胸腔注射（5ml/kg）给动物的静脉内注入氯的化的钾溶液，使动物心肌失去收缩能力，心脏急性扩张，致心脏弛缓性停跳而死亡。成年兔静脉内需注入10%氯的化的钾溶液5～10ml；成年狗静脉内需注入20～30ml。

2. 小动物的处死方法　以下几种方法适用于大鼠、小鼠这类小动物。

（1）脊椎脱臼法：是将动物的颈椎脱臼，断开脊髓使动物致死。左手拇指与食指用力向下按住鼠头，右手抓住鼠尾用力向后拉，鼠便立即死亡。这是zui常用的一种方法。

（2）急性大失血法：可将眼球摘除导致大量失血致死。

（3）击打法：右手抓住鼠尾提起，用力撞击其头部，鼠痉挛后立即死亡。用小木槌击打鼠头部也可致死。

（4）断头法：给小鼠断头时，可用左手拇指和食指夹住小鼠的肩胛部，固定。右手拿剪刀迅速将头剪断。给大鼠断头时，实验者应戴上棉纱手套，用右手握住大鼠头部，左手握住背部，露出颈部，助手用剪刀在鼠颈部将鼠头剪掉。

（5）可将浸有乙的醚或氯的仿的棉球连同小动物一起密封于玻璃容器内麻醉。

3. 蛙类的处死方法　常用金属探针插入枕骨大孔，破坏脑脊椎。左手用湿布将蛙包住，露出头部，并且用食指按压其头部前端，拇指按压背部，使头前俯；右手持探针由头前端沿中线向尾方刺入，触及凹陷处即枕骨大孔所在。进入枕骨大孔后将探针转向头方，向前探入颅腔，然后向各方搅动，以捣毁脑组织。脑组织捣毁后，将探针退出，再由枕骨大孔刺入，转向尾方，与脊柱平行刺入椎管，以破坏脊髓。待蛙的四肢肌肉完全松弛后拔出探针，用干棉球将针孔堵住，以防止其出血。

如处死的是蟾蜍，在操作时要防止毒腺分泌物射入眼内。如被射入，立即用大量生理盐水冲洗眼睛。

二、实验后动物尸体的处理

1. 实验中因正常死亡的动物，如：失血过多、创伤等，以及实验后处死的动物应装入垃圾袋内并交学校动物中心处理。注意实验动物禁止食用。

2. 因传染病死亡的动物，应将尸体焚烧或掩埋（1m以下），或固定后投入粪池，腐烂发酵后作肥料。