| 实验方法原理 | 将 4~8 只新生鼠的小脑切成小立方块,放入 HBSS,在 37°C 条件下用胰蛋白酶消化 15 min。将细胞接种于涂有 L-多聚赖氨酸的培养皿或培养瓶。 |
|---|---|
| 实验材料 | DMEM HBSS L-多聚赖氨酸 阿糖胞苷 0.025% 胰蛋白酶 硅酮 |
| 仪器、耗材 | P e tr i培养皿 解剖刀 解剖剪 解剖镊 Pasteur吸管 10ml吸管 试管 水浴箱 |
| 实验步骤 | 1. 在无菌条件下切除小脑,放入 HBSS(含有 3 g/L BSA)。 2. 用解剖刀将脑组织切成约 0.5 mm3 大小的立方体。 3. 将组织块移入 12 ml 试管,用 HBSS 洗 3 次。每次洗涤后让组织块沉到试管底部。 4. 加入 10 ml 用 HBSS 配制的 0.025 % 胰蛋白酶(用 HBSS 配制),在 37°C 条件下用水浴箱孵育 15 min。 5. 将胰蛋白酶消化的脑组织移入 50 ml 离心管,然后加入 20 ml 生长培养液,以终止胰蛋白酶的消化作用。 6. 通过用硅化的 Pasteur 吸管研磨使组织分散,直至获得单细胞悬液。 硅化 Pasteur 吸管: (a)用超纯水将硅酮液稀释为 0.1%~1%; (b)将吸管浸人硅酮液或用硅酮液冲洗吸管内面; (c)放置 24 h 晾干或在 100°C 条件下放置几分钟使吸管变干; (d)将吸管干热灭菌。 用 L-多聚赖氨酸处理培养皿: (a)用超纯水溶解 L-多聚赖氨酸(10 mg/L); (b)将混合物过滤除菌; (c)每个 35 mm Petri 培养皿内加入 1 ml L-多聚赖氨酸液; (d)10~15 min 后吸出 L-多聚赖氨酸液,加入 1~15 ml 培养液; (e)将培养皿在培养箱内放置 2 h 以上,至细胞接种。 7. 将盛有细胞悬液的离心管放 3~5 min,让小的组织团块沉到试管底。然后,用 Pasteur 吸管吸出组织团块。 8. 将单细胞悬液离心(200 g ,5 min ) 后,吸出上清液。 9. 用生长培养液混悬细胞团,然后接种细胞,每个培养皿的细胞密度为 2.5×106~3.0×106 个。 10. 培养 2~4 d 后(两天后最佳),加入 5~10 μmol/L 阿糖胞苷,继续培养 24 h。 11. 用 DMEM (含有 30 mmol/L 葡萄糖、2 mmol/L 谷氨酰胺、24.5 mmol/L 氯化钾、100 mU/L 胰岛素(Sigma,Ⅰ-1882)、7 μmol/L 对氨基苯甲酸(Sigma,A -3659)、100 μg/ml 庆大霉素和 10 % 加热灭活的 FCS)换液。 |
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