1. 将含有目的DNA片段的琼脂糖凝胶切下,并放入2.0 ml离心管中。 2. 按1:3的比例(凝胶质量毫克数:融胶液体积微升数)加入Extraction Buffer。(每次加入的ExtractionBuffer最大体积不宜超过1.2 ml)。例如:100 mg凝胶应加入300 μl ExtractionBuffer。 3. 于恒温水浴或金属浴中55 ℃孵育,直到凝胶融化。低熔点凝胶可于50 ℃孵育,一般孵育时间不多于10分钟,孵育过程中每隔2-3分钟混匀一次。 4. 可选:按1:1的比例(凝胶质量毫克数:异丙醇体积微升数)加入异丙醇,并混合均匀。一般大于120 bp DNA片段,不需要加异丙醇。 5. 将混合液全部转移到Spincolumn内,于6,000 g离心1分钟,并弃去接液管内液体。如混合液体积大于750 μl可先转移750 μl,其余的液体待离心弃液后,再转移。 6. 向Spincolumn内加500μlExtractionBuffer,于12,000 g离心30-60秒,并弃去接液管内液体。 7. 向Spincolumn内加650 μl WashBuffer,于12,000 g离心30-60秒,并弃去接液管内液体。 8. 重复第7步一次。 9. 再次于12,000 rpm离心1分钟,然后将Spincolumn转移到无菌的1.5 ml离心管中。如不进行该步离心,则无法保证离心柱内残液被彻底清除。 10. 向Spincolumn内加50μlElutionBuffer、去离子水或TE溶液,并于室温静置1分钟。可根据实验的实际需要决定Elution Buffer用量。 11. 于12,000 g离心1分钟,1.5 ml离心管内溶液中含有目的DNA片段。 12. 回收的DNA可直接用于各类下游分子生物学实验,如果不立即使用,请保存于-20 ℃。 展开 |