发布时间:2019-11-15 17:14 原文链接: 植物体内可溶性蛋白和非可溶性蛋白含量的测定实验

实验方法原理


植物材料经Tris-HCl缓冲液研磨、离心后,可溶性蛋白质溶于上清液中,非可溶性蛋

白则存在于沉淀部分。将沉淀用碱水解,则会得到非可溶性蛋白的提取液。蛋白质提取

液与考马斯亮蓝G-250反应呈蓝色。在一定范围内,蛋白质的含量与反应液在595nm波

长的吸光度呈正比,由此可求出蛋白质的含量。

实验材料

植物叶片                                                          

试剂、试剂盒

考马斯亮蓝溶液                                                                  

HCl                                                                 

MgCl2                                                                  

EDTA                                                                  

二硫苏糖醇                                                                  

牛血清蛋白标准母液                                                          

仪器、耗材

高速冷冻离心机                                                                  

分光光度计                                                                  

恒温水浴                                                                 

研钵                                                                 

试管                                                                  

移液管                                                                 

洗耳球                                                          

实验步骤1. 牛血清蛋白标准曲线的制作

(1)取6支试管,编号,按下表配制每管含量为0~100μg的牛血清蛋白标准液。

加入表中试剂后,摇匀,以0号管为空白对照,在595nm波长处测定其吸光度(A)值。


(2)标准曲线绘制

以牛血清蛋白含量为横坐标,吸光度值为纵坐标,绘制标准曲线。

2. 蛋白质的提取

称取叶片0.3~0.5g,剪碎于冷冻过的研钵中加提取液3 ml,加少量石英砂,在

冰浴中快速研磨成匀浆,匀浆倒入离心管中,再用5 ml提取液(分两次)将研钵

中匀浆洗入离心管,然后在10000 r/ min,4℃条件下离心20min,上清液即为

可溶性蛋白质提取液。


将离心所得的沉淀加3 ml 1mol·L-1NaOH溶液,在90℃恒温水浴中加热20min后,

在4000 r / min,4℃条件下离心10min,上清液即为非可溶性蛋白质提取液。


3. 测定

上述两种上清液各取0.1 ml分别放入2支试管中,每管再加Tris缓冲液0.9 ml,

空白对照管加Tris缓冲液1 ml,然后各管分别再加入考马斯亮蓝染色液5 ml,

摇匀,在595nm波长处测定吸光度(A)值。


五、结果计算

根据所测得的样品液吸光度值,从标准曲线查出蛋白质含量,按下公式计算可

溶性蛋白质和非可溶性蛋白质含量。




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