用PCR来制备编码随机肽的双链DNA文库实验

发布时间：2019-09-13 12:03 原文链接：用PCR来制备编码随机肽的双链DNA文库实验

试剂、试剂盒	限制性内切酶和缓冲液灭菌双蒸水 Tris-HCl 生物素标记的 PCR 引物
仪器、耗材	链霉抗生物素蛋白磁性珠琼脂糖凝胶电泳所需的试剂和设备
实验步骤	一、材料 1. 缓冲液、溶液和试剂灭菌双蒸水（ddH₂0) 10 mmol/LTris-HCl，pH8.0 2. 酶和酶缓冲液限制性内切酶和缓冲液（见第 9 步） 10XVent 缓冲液 VentDNA 聚合酶 3. 核酸和寡核苷酸生物素标记的 PCR 引物，长度至少 15bp,5'末端进行了生物素修饰（见图 26-1)。编码 12 个氨基酸的 NNK 库。库的设计如图 26-1(a) 所示。合成的链含有一个随机多肽库，它们的 3'末端和 5‘末端都加了一个特定的侧翼序列，作为引物结合的位点，并且含有限制性内切酶的识别位点，以方便将文库 DNA 克隆进合适的载体系统。侧翼序列长度至少应该有 15bp，并且设计时应该有 3 个标准：1.它们应该是有效的 PCR 引物结合位点；2.它们应该含有后续克隆步骤所需的限制性酶切位点（可选：限制性酶切位点可以位于 PCR 引物 5’端与文库寡核苷酸的重叠区，而不要位于文库寡核苷酸内部），3.因为一端或两端的便翼 DNA 序列有可能在肽库中代表氨基酸，它们应该不包含影响文库功能的密码子。在合成文库的编码区过程中，每个密码子的前两个位点中，4 种核苷酸的含量是相等的，而在第三个位点，G+T 的比例是 1:1[图 26-1（a)]。在第三个位点不使用 A 和C 核苷酸，减少了形成终止密码子的可能，但仍允许编码 20 种氨基酸。 dNTP(各 20 mmol/L) 4. 其他琼脂糖凝胶电泳所需的试剂和设备，包括溴化乙锭 (见第 11 步） QIAprep Miniprep silica column(QIAGEN) 链霉抗生物素蛋白磁性珠（Dynal) 二、方法 1. 第一轮聚合反应：文库的 PCR 扩增（1）进行下列反应，将单链的合成寡核苷酸，扩增为有效的构建文库的起始材料。下面所给的是 100ul 体系的用量。要构建大规模的库，准备 1 ml 的反应物，并将它们平分到 10个独立的 PCR 管中。 10pmol 的文库寡核苷酸 2U 的 Vent DNA 聚合酶生物素标记的 PCR 引物，各 100pmol 10ul 的 10XVent 缓冲液 dATP、dCTP、dTTP 和 dGTP，各 1ul 用 ddH₂O 定容至 100ul （2）在一个热循环仪中，94°C 将混合物预热 20s。（3）按下面的参数进行 30 轮 PCR 循环。 94°C10s 55°C10s(或用引物的合适退火温度） 72°C15s （4）冷却至 4°C。 2. 第二轮聚合反应：合成配对的双链文库 DNA. （5）在每 100ul 第一轮反应产物中，加入 10ul 的 10X 反应缓冲液、100pmol 的各引物、2U 的 Vent DNA 聚合酶。（6）进行一个单轮的循环：94°C 30s，55°C 30s，72°C 15s。（7）冷却至 4°C。（8）用 QIAprep 的柱子纯化第二轮扩增产物，并用 10mmol/L Tris(pH8.0) 洗脱。（9）用合适的内切酶消化洗脱产物（图 26-2，第 1 泳道），然后用乙醇沉淀 DNA, 并用ddH₂O 溶解（Sambrook and Russell2001)。经过这一消化反应，生物素标记的 DNA 末端将从文库的核心释放出来。（10）用链霉抗生物素蛋白磁性珠去掉生物素标记的 DNA 末端（Korn et al.1992)。这一步骤将增加目的连接产物的产量，因为这些末端能够与文库插入片段或表达载体相连接。链霉抗生物素蛋白的亲和步骤，同时能去掉任何没有酶切或部分酶切的 PCR 产物（图 26-2,第 3 泳道和第 4 泳道）。（11）在 4% 的琼脂糖凝胶上，分析反应中间产物和终产物。终产物（图 26-2, 第 4 泳道）是高纯度且高度复杂的双链文库 DNA，有突出的末端，可以直接连接到合适的表达系统上。展开

试剂、试剂盒

限制性内切酶和缓冲液灭菌双蒸水 Tris-HCl 生物素标记的 PCR 引物

仪器、耗材

链霉抗生物素蛋白磁性珠琼脂糖凝胶电泳所需的试剂和设备

实验步骤

一、材料

1. 缓冲液、溶液和试剂

灭菌双蒸水（ddH₂0)

10 mmol/LTris-HCl，pH8.0

2. 酶和酶缓冲液

限制性内切酶和缓冲液（见第 9 步）

10XVent 缓冲液

VentDNA 聚合酶

3. 核酸和寡核苷酸

生物素标记的 PCR 引物，长度至少 15bp,5'末端进行了生物素修饰（见图 26-1)。

编码 12 个氨基酸的 NNK 库。库的设计如图 26-1(a) 所示。

合成的链含有一个随机多肽库，它们的 3'末端和 5‘末端都加了一个特定的侧翼序列，作为引物结合的位点，并且含有限制性内切酶的识别位点，以方便将文库 DNA 克隆进合适的载体系统。侧翼序列长度至少应该有 15bp，并且设计时应该有 3 个标准：1.它们应该是有效的 PCR 引物结合位点；2.它们应该含有后续克隆步骤所需的限制性酶切位点（可选：限制性酶切位点可以位于 PCR 引物 5’端与文库寡核苷酸的重叠区，而不要位于文库寡核苷酸内部），3.因为一端或两端的便翼 DNA 序列有可能在肽库中代表氨基酸，它们应该不包含影响文库功能的密码子。在合成文库的编码区过程中，每个密码子的前两个位点中，4 种核苷酸的含量是相等的，而在第三个位点，G+T 的比例是 1:1[图 26-1（a)]。在第三个位点不使用 A 和C 核苷酸，减少了形成终止密码子的可能，但仍允许编码 20 种氨基酸。

dNTP(各 20 mmol/L)

4. 其他

琼脂糖凝胶电泳所需的试剂和设备，包括溴化乙锭 (见第 11 步）

QIAprep Miniprep silica column(QIAGEN)

链霉抗生物素蛋白磁性珠（Dynal)

二、方法

1. 第一轮聚合反应：文库的 PCR 扩增

（1）进行下列反应，将单链的合成寡核苷酸，扩增为有效的构建文库的起始材料。下面所给的是 100ul 体系的用量。要构建大规模的库，准备 1 ml 的反应物，并将它们平分到 10个独立的 PCR 管中。

10pmol 的文库寡核苷酸

2U 的 Vent DNA 聚合酶

生物素标记的 PCR 引物，各 100pmol

10ul 的 10XVent 缓冲液

dATP、dCTP、dTTP 和 dGTP，各 1ul

用 ddH₂O 定容至 100ul

（2）在一个热循环仪中，94°C 将混合物预热 20s。

（3）按下面的参数进行 30 轮 PCR 循环。

94°C10s

55°C10s(或用引物的合适退火温度）

72°C15s

（4）冷却至 4°C。

2. 第二轮聚合反应：合成配对的双链文库 DNA.

（5）在每 100ul 第一轮反应产物中，加入 10ul 的 10X 反应缓冲液、100pmol 的各引物、2U 的 Vent DNA 聚合酶。

（6）进行一个单轮的循环：94°C 30s，55°C 30s，72°C 15s。

（7）冷却至 4°C。

（8）用 QIAprep 的柱子纯化第二轮扩增产物，并用 10mmol/L Tris(pH8.0) 洗脱。

（9）用合适的内切酶消化洗脱产物（图 26-2，第 1 泳道），然后用乙醇沉淀 DNA, 并用ddH₂O 溶解（Sambrook and Russell2001)。经过这一消化反应，生物素标记的 DNA 末端将从文库的核心释放出来。

（10）用链霉抗生物素蛋白磁性珠去掉生物素标记的 DNA 末端（Korn et al.1992)。这一步骤将增加目的连接产物的产量，因为这些末端能够与文库插入片段或表达载体相连接。链霉抗生物素蛋白的亲和步骤，同时能去掉任何没有酶切或部分酶切的 PCR 产物（图 26-2,第 3 泳道和第 4 泳道）。

（11）在 4% 的琼脂糖凝胶上，分析反应中间产物和终产物。终产物（图 26-2, 第 4 泳道）是高纯度且高度复杂的双链文库 DNA，有突出的末端，可以直接连接到合适的表达系统上。