肿瘤细胞原代培养实验

瘤组织

Hanks液

平皿 培养瓶 恒温箱

一、将取得的瘤组织去除脂肪、结缔组织及坏死部分。

二、在平皿中用Hanks液洗3次，剪碎组织，切成1-2 mm³ 小块。

三、接种于培养瓶（或皿）中，37℃、5%CO₂ 或加盖并塞在普通恒温箱中培养。

一、注意污染

1、严格进行动物皮肤消毒，使用三套器械取材。新生动物皮肤先用2%碘酒液消毒，成年鼠先用3%——5%碘酒液消毒后用75%酒精消毒。

2、严格进行无菌操作，防止细菌、霉菌、支原体污染，避免化学物质污染。自取材开始，保持所有组织细胞处于无菌条件。细胞计数可在有菌环境中进行。

3、吸取液体前，瓶口和吸管进行火焰消毒；吸取液体时，避免瓶口和吸管碰撞。

4、离心管入台前，管口、管壁应消毒。

5、实验者离开超净台时，要随时用肘部关闭工作窗。

6、使用过的器械用酒精棉球擦去血污后，移入另一个器皿中继续消毒，在浸泡器械时剪刀口要叉开放，镊子弯头要向下放，并加盖消毒。凡在超净台外操作的步骤，各器皿需用盖子或橡皮塞，以防止细菌落入。

二、器材使用时既要注意用火焰消毒，又要防止烫伤、烫死细胞。经火焰消毒后的吸管一定要用Hanks液冷却。

一、对肿瘤细胞系或细胞株的评价
 

已建成的各种肿瘤细胞系或细胞株，无疑都是可用的实验对象。近年我国已建成的肿瘤细胞系已非常多，并获得越来越广泛的应用。但根据研究者的经验，在使用这些细胞系时，应持特别审慎态度，主要是应考虑到这些细胞在长期传代中有否发生遗传性改变的可能。众所周知，长期传代细胞系染色体核型常是不稳定的。另外也可能发生如基因突变、基因易位或缺失等变化。其结果可能导致细胞产生生物学性状上的变动。
 

以近年建成的各种肿瘤细胞系为例，都已传代少则几十，多则百代以上后，才确认建成了细胞系。这种情况下很难保证细胞从初代到建成时的性状仍是一致的。已如前述，癌细胞在培养中并非能很顺利地传下去，凡已长期传代的细胞系，都已获得不死性。当前尚未完全确证所有癌细胞都具有不死性；因此尚难肯定在长期培养中的癌细胞的生物学性状与体内时仍完全相同（包括不死性）。据上述对用癌细胞系所获实验结果应尽量做分析性的结论，避免做概括性的与体内等同的结论，外推与体内等同更是不妥的。广泛来说，应用各种较长时间培养细胞做实验时，都应如此。

二、提高肿瘤细胞培养存活率和生长率措施
 

根据人们的经验，肿瘤细胞在体外不易培养，建立能传代的肿瘤细胞系更为困难。当肿瘤组织或细胞初代接种培养后，常出现以下几种情况：
 

1.  完全无细胞游出或移动；
 

2.  有细胞移动和游出，但无细胞增殖，细胞长时间处于停滞状态以致难以传代；
 

3.  有细胞增殖，传若干代后停止生长或衰退死亡；
 

4.  传数代后细胞增殖缓慢，经过一段停滞期后，才又呈旺盛生长状态，形成稳定生长的肿瘤传代细胞系。
 

以上现象说明肿瘤细胞对体外生存条件有较高的要求，并需经过对新环境的适应才能生长，因此欲获得好的培养效果，不能局限于一般培养法，必须采用一些特殊的措施。
 

1.  适宜底物
 

把经过纯化的细胞接种在不同的底物上，如鼠尾胶原底层、饲细胞层等。
 

2.  生长因子
 

应用促细胞生长因子，向培养液中增加一种或几种促细胞生长因子。根据细胞种类不同选用不同的促生长物，常用有胰岛素、氢化可的松、雌激素以及其它生长因子。
 

为提高肿瘤细胞对体外培养环境的适应力和增加有活力癌细胞（干细胞）的数量，可采用动物体转嫁接种成瘤后，再从动物体内取出进行培养，能提高体外培养的成功率。受体动物以裸鼠最好。
 

3、动物体媒介培养方法
 

（1）瘤块接种：取新鲜瘤组织，用 Hanks液洗净血污，切成 1～3毫米小块，用穿刺针头吸一小瘤块，用酒精棉球擦拭动物腹部后，直接刺入皮下，注入瘤块。
 

（2）饲养观察，待肿瘤生长达较大体积后，剥取出瘤组织。
 

（3）进行体外培养。
 

（4）为防止失败，仍取部分瘤组织继续在裸鼠体内传代。通过裸鼠媒介接种，有活力的肿瘤细胞数量增多，细胞培养易于成功。