A260/280比值较低？或者A260/280比值较高？
参考见解：用水作为洗脱液比较偏低，或者蛋白质残留，但如果操作过程中使用了苯酚，则更可能是苯酚残留。而比较高可能是大量RNA残留，没有使用RNaseA，或RNaseA活性下降。A260 值提示的含量与电泳检测时提示的含量有可见的误差则为苯酚残留。
DNA影响后续酶反应试验？
参考见解：
1、 在洗脱液中有残留的漂洗液GW，可通过再次的离心去除硅胶膜上的GW。
2、 大量RNA残留。
在缓冲液GA GB 中有白色沉淀？
参考见解：白色沉淀可能使由于低温或长时间放置产生，可在使用前在56℃重新加热融解。
在操作中加入缓冲液GB有白色沉淀？
参考见解：在缓冲液GB加入后产生的白色沉淀在70℃温浴时会消失，不会影响下游的操作。
CTAB法提取DNA,CTAB为什么要预热？
参考见解：
1、 CTAB溶液在低于15℃ 时会形成沉淀析出,因此在将其加入冰冷的植物材料之前必须预热,且离心时温度不要低于15℃。
2、 促进CTAB更好的溶解，以提高其释放植物组织中DNA的效率，先达到了反应温度，这样实际作用时间要比不预热短一些。
在用CTAB法提取玉米嫩叶DNA，所取到的DNA为什么是黄色或黑色而不是呈白色？
参考见解：
1、 可能是色素的问题，不同的材料会出现不同的颜色，用这些应当可以P出来东西。
2、 你取样的时候带上了别的东西 ，或者洗涤的时候没有洗干净。
CTAB法抽提DNA，95％的乙醇沉淀后，用1/10体积3mol/L的NaAc（pH5.2）和1体积的76％的乙醇洗涤后，自然晾干后加65度的TE（pH8.0），TE的量并不少，可总是溶的不好，什么原因？
参考见解：不能溶解不要紧，离心机大力离心后取上清，加入无水乙醇沉淀后在用TE重悬，提取的DNA要纯些。也可以吸取溶解了的TE液加入异丙醇再次沉淀。
用CTAB法抽提的，CTAB和DTT（二硫苏糖醇）混合后加入磨碎的叶子中，65度30分，后用氯仿/异戊醇去蛋白，吸上清加异丙醇，但没有看见DNA，叶子的量很多，取的是四叶期最老的叶子。为什么？
参考见解：老叶子破壁困难，DNA难以释放出来。
1、 尽量磨细叶片，最好用液氮反复几次研磨为粉末状；
2、 延长CTAB的作用时间，期间不时摇匀。
也可能由于叶子量太大，而CTAB量少，导致得到的液体粘稠，无法混匀，细胞破裂不完全，DNA少；可试着用大的离心管，多加入CTAB，65度温浴并不时地摇匀。
抽提过程中的现象及可能的原因？
参考见解：
1、 核酸不溶解或者难溶解 – 蛋白质残留 (虽然目前更多的资料强调的是过分干燥所致。)。75% 乙醇洗涤后，如果是空气干燥，几乎不可能过分干燥的，尤其是在南方潮湿的地方。佐证实验：撕取少量 Merck 的丝状CT DNA 到一个离心管中，加入无水乙醇；10 分钟后彻底去除乙醇；待乙醇完全挥发后，加入 TE，10 分钟后溶液就非常均匀而粘稠了。
2、 使用异丙醇沉淀核酸，沉淀为白色 – 多糖残留。
3、 核酸溶解后为乳白色 – 多糖残留。