血细胞分析仪是目前医学实验室最常用的仪器之一，经过半个多世纪的发展，血细胞分析仪从对白细胞、红细胞、血小板、血红蛋白等的单项目检测，发展为具有同时进行多项目联合检测功能的两分群、三分群和五分类血细胞分析仪，某些仪器还具有对网织红细胞、有核红细胞，甚至是C反应蛋白的检测功能。血细胞分析仪采用的分类技术也由单一的通过库尔特原理（阻抗法）检测细胞体积大小区分细胞种类，发展为整合阻抗法、流式细胞、射频、细胞化学染色等技术对细胞体积、细胞内颗粒复杂度、核酸物质含量等进行检测，大大提高了对异常细胞的分类和识别能力[1]。
我国血细胞分析仪研发和生产取得了很大成就。以深圳迈瑞生物医疗电子股份有限公司为例，其研发的BC-6800型血细胞分析仪采用了SF-Cube技术，即激光散射结合荧光染色多维分析技术。在SF-Cube技术中，细胞体积大小差异通过低角度散射光信号（Forward Scattering，FS）表征，细胞内部颗粒复杂程度差异通过高角度散射光信号（Side Scattering，SS）表征，荧光信号（Fluorescence，FL）强度则反映了细胞内核酸物质被染色的程度。仪器通过识别试剂处理过细胞这三个信号，在三维空间（Cube）中实现了主要白细胞亚群（淋巴细胞、单核细胞、中性粒细胞、嗜酸性粒细胞）、网织红细胞、有核红细胞的区分，并就幼稚粒细胞、异常淋巴细胞、原始细胞、异型淋巴细胞等异常细胞，以及红细胞碎片、脂质颗粒等进行识别和报警[2]。
2017年，第二代激光散射结合荧光染色多维分析技术（SF-Cube 2.0）问世，并应用于新一代BC-6X系列血细胞分析仪上。和第一代SF-Cube分析技术相比，SF-Cube 2.0在贫血患者样本的诊断和鉴别诊断、识别高有核红细胞样本、提高原始细胞和幼稚细胞报警准确性和灵敏度、低值白细胞和低值血小板的计数、避免红细胞和白细胞碎片对血小板计数的干扰等方面，呈现出优异的特性。
本文就SF-Cube 2.0技术要点在临床样本检测中的运用进行介绍。
一、WNB通道白细胞分类原理：
在SF-Cube 2.0中，迈瑞采用了全新的WNB通道，在一个通道里面同时检测嗜碱性粒细胞和有核红细胞，有核红细胞因此变为血常规的常规报告参数，而不增加额外的试剂消耗。
WNB通道具有很强的抗干扰性能，能有效避免由于高荧光大细胞和脂质颗粒导致嗜碱性粒细胞出现假阳性结果[3]。
在WNB通道中，试剂对白细胞的处理效果较同类产品更加中性化，使白细胞各粒子群发生一定程度的皱缩，白细胞仍保持一定的体积大小而非“裸核化状态”。嗜碱性粒细胞位于WNB散点图的中部偏左上，体积比幼稚细胞和大的异淋细胞小，在FS方向上散射光信号强度弱，在FL方向上荧光强度略小，因此在FS-FL散点图上与幼稚细胞、大的异淋细胞彻底分离，从而避免了高荧光强度的大细胞和嗜碱性粒细胞之间的干扰，避免了嗜碱性粒细胞出现假阳性结果（图1、图2）。
由于白细胞不是“裸核化状态”，保持了一定的体积大小，使得脂质颗粒和白细胞体积大小有显著的差异，因此在FS方向上嗜碱性粒细胞与脂质颗粒彻底分离，也避免了嗜碱性粒细胞出现假阳性结果[4]（图1、图3）。
图1. WNB二维散点图示意图
图2. 实测样本，仪器BASO%：11.4%，镜检：12.5%
图3. WNB通道脂质颗粒样本检测三维散点图
WNB通道采用粒子群动态捕捉算法识别高有核红细胞样本，避免出现有核红细胞假阴性的结果[5]。荧光染料对有核红细胞的RNA染色，但有核红细胞的荧光强度显著弱于其他白细胞，使有核红细胞和白细胞 在FL方向上通过荧光信号区分开。
绝大部分的五分类血细胞分析仪采用的是与细胞主团位置相关的半浮动算法，先要确定白细胞主团的位置，才能确定有核红细胞的空间位置[6]。而白细胞的数量往往远多于有核红细胞，因此对于有核红细胞增高的样本来说，容易将此类样本的大团的有核红细胞识别为白细胞主团，从而造成有核红细胞的假阳性结果。
SF-Cube 2.0采用了区别于传统的半浮动算法的粒子群动态捕捉算法，不需要通过白细胞主团位置来定位包括有核红细胞和嗜碱性粒细胞等在内的其他细胞粒子团，而是先捕捉出散点图上所有的细胞粒子团，通过细胞粒子团的相对空间位置来进行动态划分和动态识别，即使在有核红细胞粒子团占绝对优势的高有核红细胞样本上，也依然能够准确划分有核红细胞和其他细胞（图4）。
图4. 有核红细胞增高样本实测，
仪器NRBC：30.4%，镜检：32%
二、红细胞的检测技术：
在SF-Cube 2.0中，传统的RET通道和PLT-O/F通道融合为ERP通道，即红细胞（Erythrocyte）、网织红细胞（Reticulocyte）、血小板（Platelet）检测通道。对红细胞、血小板和网织红细胞的检测是由能够染色RNA的荧光染色液和具有球形化、促染功能的稀释液共同实现。
血液经稀释液作用后，使自然状态下双凹盘状扁平圆形的红细胞成为球形并固定，其目的是使红细胞无论以何种方位通过测量区时，获得的散射光和荧光信息都是相同的，不影响体积、血红蛋白浓度和核酸物质含量的检测；另外使红细胞在形态上趋于球形，增强了体积的均一性，在体积特征上与血小板的区分度增加；同时试剂中可以染色RNA的阳离子菁类荧光染料对网织红细胞中的RNA进行标记，通过荧光强度的检测，实现了红细胞和网织红细胞的区分。采用SF-Cube 2.0技术的血细胞分析仪能够检测细胞粒子的前向散射光、侧向散射光和荧光信号，根据Mie散射理论，通过对细胞前向散射光和侧向散射光的分析，便可获得单个红细胞的体积和血红蛋白浓度[7]。ERP通道可准确测量MCHr（网织红细胞平均血红蛋白含量）、MCVr（网织红细胞平均体积）、HDW（血红蛋白浓度分布宽度）、MPC（平均血小板颗粒度浓度）、MPM（血小板的平均颗粒物含量）、HYPER%（高色素红细胞占的百分比）、HYPO%（低色素红细胞占的百分比）等其他仪器无法直接或间接测量的结果，这些参数对于贫血的诊断、疗效观察非常重要。
在此基础上可得到红细胞散点图、红细胞体积&血红蛋白浓度二维散点图（红细胞二维九分图）、红细胞体积&血红蛋白浓度&核酸荧光强度三维散点图（红细胞三维九分图）、网织红细胞三维散点图（图5）。而其他仪器在红细胞测量中绝大部分都采用阻抗法，即使采用光学法检测也是间接测量以上参数[8]。当白细胞严重升高，大血小板、小红细胞都会严重影响红细胞计数[9]。
图5. 从左到右依次为：红细胞散点图ERP-RBC Scattergram、红细胞VHF散点图ERPRBC-
VHF Scattergram、红细胞VHF三维散点图ERP-RBC-VHF（3D）Scattergram
相关研究表明，红细胞九分图解决了如何区分缺铁性贫血和地中海贫血的问题[10]。这两种贫血的血细胞分析仪检测结果均提示为小细胞低色素性贫血。传统的鉴别手段是通过检查铁代谢和血红蛋白电泳。但由于缺铁性贫血的发生率在中国人群为10%，属常见疾病，所以在我国，当患者的血常规报告结果为小细胞低色素贫血时，一般都会首先以缺铁性贫血治疗。而只有在反复补铁，而贫血仍旧无法根治时，才会考虑检查血红蛋白电泳和铁代谢予以区分。另外，血红蛋白电泳的出报告周期较长，也影响了它的使用，从而导致地中海贫血的漏检率非常高，地中海贫血病人延误了最佳治疗时机将存在生命危险。
国外研究表明，根据红细胞九分图所提供的小红细胞和低色素红细胞在全部红细胞中所占比例（小红细胞比例Micro%，低色素红细胞Hypo%），在出现小细胞低色素贫血时，通过计算Micro%和 Hypo%的比值就可以鉴别这两种贫血[11]。
三、血小板的检测技术：
在ERP通道中，血小板的检测灵敏度、准确性和重复性均得到大幅提升。新的光学系统使仪器可以检测体积更小的血小板，大幅提高了血小板检测灵敏度（图6）；新的染料对血小板RNA的特异性更强，去除了红细胞碎片、白细胞碎片对PLT的干扰，未成熟血小板比例的结果更佳，大幅提高了血小板检测的准确性（图7）；申请ZL保护的低值血小板8倍统计功能，既可以根据PLT-I结果自动触发，也提供了专用的“PLT-O 8×”检测模式，大幅提高了血小板检测的精密度（图8）。
图6. 右图为ERP通道光学法血小板散点图，左图为其他光学法或荧光法对比
图7. 左图为ERP通道光学法血小板散点图白细胞碎片样本，右图为红细胞碎片样本
图8. 右图为ERP通道光学法血小板8倍统计量计数散点图，左图为正常计数对比
四、网织红细胞的检测技术：
网织红细胞是尚未完全成熟的红细胞，它由骨髓释放到外周血后，成熟过程中，细胞内的RNA含量逐渐减少，直至完全消失[12]。网织红细胞内RNA的含量体现其成熟程度，由于血小板中也含有RNA物质，通过球形化处理的血小板在体积上和网织红细胞有较大区别，从而将两者加以区分；同时，FR荧光染料对网织红细胞和血小板中的RNA进行标记，试剂成分中的促染剂对染色作用进行了有效的加速，使荧光染料可以快速的与网织红细胞内的RNA结合。通过荧光强度的检测，实现对成熟红细胞和网织红细胞的区分（图9）。
