实验方法原理 |
Biacore是基于表面等离子体共振(SPR)技术来实时跟踪在天然状态下生物分子间的相互作用,无需任何标记物。表面等离子体共振(surface plasmonresonance,SPR)是一种光学现象,在传感芯片发生全反射界面上有一层约50nm厚的金属膜,偏振光入射到棱镜的一端,在棱镜与金属膜的界面会产生表面等离子波,当入射光波的传播常数与表面等离子波的传播常数匹配时,金属膜内的自由电子会产生共振,即表面等离子共振体。 分析时,先将一种生物分子即配体(蛋白、抗体等)偶联在生物传感器表面,再将含有另一种能与靶分子产生相互作用的生物分子(分析物)的溶液注入并流经生物传感器表面。生物分子间的结合引起生物传感器表面质量的增加,导致折射率的变化,通过监测SPR的角度变化,可自动获得分析物的动力学结合和解离常数、亲和力及特异性等。生物分子间反应的变化即被观察到。 |
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实验材料 | 蛋白样品 |
试剂、试剂盒 | EDC 氨基乙醇 Extraclean HEPES 缓冲的盐水缓冲液 HCl NHS 小鼠抗-TSH 单克隆抗体 兔抗小鼠-Fc 结构域 TSH TSH 稀释液 |
仪器、耗材 | BIAcore 仪器 CM-5 传感芯片 |
实验步骤 |
第一阶段 捕获表面的制备和结合试验 展开 |
注意事项 |
样本的要求 1. 通过等电聚焦或者使用软件预测,确定待分析蛋白的等电点。对等电点高于7或者小于3的蛋白一般不推荐进行 Biacore 分析,特殊需求可与相关技术人 员进行个例商讨。 2. 固定于传感片上的靶蛋白(例如:受体蛋白)和待分析蛋白,纯度要达到95%以上。 3. 用 PBS(或者用户蛋白所需的特殊缓冲液)对蛋白溶液进行透析,然后浓缩至 200ug/ml~1mg/ml 的浓度。 4. 化合物溶解在含 1‰ DMSO 的 HBS 缓冲液中,并稀释成 10-5M 和 10-6M 两种浓度进行初步分析;初步分析呈阳性的化合物再用含 1‰ DMSO 的缓冲液稀释成 10-5M, 5×10-6M, 2×10-6M, 1×10-6M, 5×10-7M 和 1×10-7M 的浓度梯度进行动力学常数分析。 5. 如果化合物无法溶解在含 1‰ DMSO 的 HBS 缓冲液中,则可以提高 DMSO的浓度,最高可至 1%的浓度。同时配制相应浓度的DMSO 缓冲液作为对照进行实验。
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其他 |
本实验来源于分子克隆实验指南(第三版)下册,作者:〔美〕J. 萨姆布鲁克 D.W. 拉塞尔。
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