我学者证实马传贫病毒可引起线粒体反应导致细胞凋亡
近日，我所兽医生物技术国家重点实验室王晓钧团队首次证明了不同毒力的马慢病毒，即马传染性贫血病毒（马传贫病毒，EIAV），感染细胞后通过引起线粒体不同反应从而产生炎症或细胞凋亡，该发现为解释慢病毒致弱和慢病毒活疫苗安全性提供了重要依据。该研究成果以“Attenuation of Equine Lentivirus Alters Mitochondrial Protein Expression Profile from Inflammation to Apoptosis”为题发表于《病毒学杂志（Journal of Virology）》。 EIAV与艾滋病毒相似，在体内的主要靶细胞是免疫细胞，并且可在马体内长期潜伏感染，给养马业造成了巨大的经济损失。由哈兽研研制的EIAV 弱毒疫苗，是首例经大规模应用证实安全、有效的慢病毒疫苗。阐明该疫苗的作用机理，将为其他慢病毒疫苗的研究提供借鉴。前期研究表明，EIAV强毒株（EIAVDLV......阅读全文
我学者证实马传贫病毒可引起线粒体反应导致细胞凋亡
近日，我所兽医生物技术国家重点实验室王晓钧团队首次证明了不同毒力的马慢病毒，即马传染性贫血病毒（马传贫病毒，EIAV），感染细胞后通过引起线粒体不同反应从而产生炎症或细胞凋亡，该发现为解释慢病毒致弱和慢病毒活疫苗安全性提供了重要依据。该研究成果以“Attenuation of Equine Le
慢病毒转染细胞步骤
一、慢病毒转染 贴壁细胞实验方法1、慢病毒转染 前18-24小时，将贴壁细胞以1×10^5/孔铺到24孔板中。使细胞在慢病毒转染时的数量为2×10^5/孔左右。2、第二天，用含有6 μg/ml polybrene的2ml新鲜培养基替换原培养基，加入适量病毒悬液。37℃孵育。3、(对polybrene
慢病毒转染细胞步骤
一、慢病毒 转染贴壁细胞实验方法 1、慢病毒转染前18-24小时，将贴壁细胞 以1×10^5/孔铺到24孔板中。使细胞在慢病毒转染时的数量为2×10^5/孔左右。 2、第二天，用含有6 μg/ml polybrene的2ml新鲜培养基 替换原培养基，加入适量病毒悬液。37℃孵育。
水貂肠炎病毒可通过线粒体信号通路诱导细胞凋亡
近日，中国农业科学院特产研究所特种动物病原与免疫创新团队首次证明水貂肠炎病毒及其非结构蛋白1通过线粒体信号通路诱导细胞凋亡，该发现为进一步解释该病毒的致病机制提供了理论基础。相关研究成果在线发表于《病毒学杂志(Journal of Virology)》。 水貂肠炎病毒属于细小病毒科成员，该科病
慢病毒转染肝细胞方法
Lentivirus Transduction of Hematopoietic CellsMing-Jie Li and John J. RossiDivision of Molecular Biology, Beckman Research Institute of the City of Ho
马传贫病毒(EIAV)单克隆抗体的制备
材料与方法 1．抗原动物及免疫方法抗原为哈尔滨兽医研究所保存的马传贫病毒株培养物制备的可溶性抗原。免疫动物为6～8周龄的Balb/c鼠。初次免疫用含完全佐剂抗原0.2ml（病毒含量为1.0×108／ml制备的可溶性抗原）腹腔接种，经2周再次免疫接种，应用不完全佐剂抗原0.2ml腹腔接种，再经3周强化
慢病毒转染细胞的操作步骤
相关专题慢病毒包装技术专题一、慢病毒 转染贴壁细胞实验方法1、慢病毒转染前18-24小时，将贴壁细胞 以1×10^5/孔铺到24孔板中。使细胞在慢病毒转染时的数量为2×10^5/孔左右。2、第二天，用含有6 μg/ml polybrene的2ml新鲜培养基 替换原培养基，加入适量病毒悬液。37℃孵育
慢病毒转染细胞的操作步骤
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慢病毒实验程序
含有目的基因的慢病毒 RNAi 干扰载体的构建和质粒纯化，提取慢病毒载体，包装系统共转染病毒包装细胞293T等。 3） 培养 48hrs - 72hrs 左右，收集含有病毒的上清培养液。 4） 病毒的纯化和浓缩。 5） 分装、- 80 ℃保存。 6） 滴度测定目的基因检定，并出具检测报告。
慢病毒包装实验
实验材料 病毒试剂、试剂盒 无血清培养基脂质体胰酶含血清的培养基DMEM仪器、耗材 EP管6孔板CO2培养箱高速离心机-80°C冰箱实验步骤 以六孔板中的1孔为例，每个样品需要1×106个293T细胞。 1. 取1.5ml灭菌EP管，加入1.5μg包装混合质粒和0.5μg表达质粒以及250μl的无血