夹心法ELISA和竞争法ELISA操作步骤比较
竞争法ELISA操作步骤实验开始前，各试剂和样本均应平衡至室温；样本复融后需再次离心，取上清检测；试剂或样本配制时，需充分混匀并尽量避免起泡；标曲和样本建议做复孔检测。1.加样：将标准品工作液依次加入到前两列孔中，每个浓度的工作液并列加两孔，每孔50 μL。待测样品加入到其他孔，每孔50 μL(若样本浓度高于检测范围，需用标准品&样本稀释液稀释后取样)。立即每孔加入配好的生物素化抗体工作液50 μL。混匀，给酶标板覆膜，37℃孵育45分钟。提示：加样时将样品加于酶标板底部，尽量不触及孔壁，轻轻晃动混匀，避免产生气泡。加样时间宜控制在10分钟内。2.洗涤：甩尽孔内液体，每孔加洗涤液350 μL，浸泡1-2分钟，吸去或甩掉酶标板内的液体，在厚的吸水纸上拍干。重复此洗板步骤3次。提示：此处与其他洗板步骤都可用洗板机。每一步洗涤充分是实验的根本。3.HRP酶结合物：每孔加酶结合物工作液100 μL，混匀，加上覆膜，3......阅读全文
差速离心法
差速离心法指分步改变离心转速或向速崎低速离心交替进行，选用大小不向的离心力使具备不同质量、不同沉降系数的微小颗粒(粒子或大分子)从混合的悬浮液中分批沉降而进行分离的力法。该方法适用于在悬浮液中的样品颗粒之间重量存在较大差别，更准确地说是沉降系数的差别在一个到几个数量级的混合样品的分离。重量或S值的差
超速离心法纯化病毒实验——差速离心法
实验方法原理不同大小和比重的粒子在沉降速度上存在差别，沉降速度差别（相差）在一个或几个数量级的粒子，可用本法分离提取。实验材料待纯化的病毒试剂、试剂盒无仪器、耗材差速离心机实验步骤将被分离的样品交替进行低速离心与高速（或超速）离心。差速离心适用于从组织培养液、鸡胚尿囊液或经过红细胞吸附－释放的病毒悬
夹纸试验检查作用
夹纸试验对尺神经麻痹有较高的诊断价值。手指间夹持物品的力量来源于手内部的骨间肌，其神经支配为尺神经。尺神经麻痹，骨间肌弛缓无力，所以夹持纸片不易抽出提示患有尺神经麻痹。
试管夹的参数简介
一般为木制（也有竹制的），表面平整、挺直、无毛刺、无节疤、无裂纹、木身经脱脂干燥处理，含水率≤18%。 长度不小于180mm，宽度20mm，厚度10mm。试管夹闭口缝不大于1mm，最大开口距不小于25mm。 闭口时两块夹片相合无明显不齐。 试管夹所附毡块应粘接牢固，不得脱落。 试管夹弹簧
指夹式血氧仪
通过依次驱动一个红光LED(660nm)和一个红外光LED(910nm)，蓝色线条表示血红蛋白不带氧分子的时候接收管对还原血红蛋白感应曲线，从曲线图中可以看下还原血红蛋白对660nm红光的吸收比较强,而对910nm红外光的吸收长度比较弱。红色线条表示血红蛋白并带有氧分子的血红细胞时接收管对氧合血
什么是夹纸试验阳性
夹纸试验阳性对尺神经麻痹有较高的诊断价值。手指间夹持物品的力量来源于手内部的骨间肌，其神经支配为尺神经。尺神经麻痹，骨间肌迟缓无力，所以夹持纸片很易抽出，即为夹纸试验阳性。夹纸试验是尺神经麻痹的主要检查方法之一。 夹纸试验检查方法：检查者将一纸片放在病人手指间（如中指和无名指间），让病人用力夹紧
双抗体夹心法简介
双抗体夹心法，是将含有已知抗体的抗血清吸附在微量滴定板上的小孔里，洗涤一次；加待测抗原，如两者是特异的，则发生结合，然后把多余抗体洗除；加入与待测抗原呈特异反应的酶联抗体，使形成“夹心”；加入该酶的底物，若看到有色的酶解产物产生，说明在孔壁上存在相应的抗原。
差速离心法使用介绍
差速离心法指分步改变离心转速或向速崎低速离心交替进行，选用巨细不向的离心力使具备不同质量、不同沉降系数的细小颗粒(粒子或大分子)从混合的悬浮液中分批沉降而进行别离的力法。该办法适用于在悬浮液中的样品颗粒之间重量存在较大差别，更精确地说是沉降系数的差别在一个到几个数量级的混合样品的别离。重量或S值的差
ELISA双抗体夹心法
操作步骤 1.包被：用0.05M PH9.牰碳酸盐包被缓冲液将抗体稀释至蛋白质含量为1～10μg/ml。在每个聚苯乙烯板的反应孔中加0.1ml，4℃过夜。次日，弃去孔内溶液，用洗涤缓冲液洗3次，每次3分钟。（简称洗涤，下同）。2.加样：加一定稀释的待检样品0.1ml于上述已包被之反应孔中，置37℃孵
双抗体夹心法介绍
双抗体夹心法适用于测定二价或二价以上的大分子抗原，但不适用于测定半抗原及小分子单价抗原，因其不能形成两位点夹心。那么，为什么双抗体夹心法是检测抗原*常用的方法?1、将特异性抗体与固相载体联结，形成固相抗体。洗涤除去未结合的抗体及杂质。 2、加受检标本，保温反应。标本中的抗原与固相抗体结合，形成固相抗