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上样量根据树脂饱和吸附量换算，上样液的浓度当然是自己算了......阅读全文
以20cm*20cm*1mm规格为例：若上样带宽是0.5cm，板两边空出0.5cm边际,其中1mm厚的硅胶板负载量不要超过5mg/cm3，上样量约为0.5*19*5=47.5mg，以此类推。
>这要根据你做的蛋白表达量多少，一般是用DAB显色要50-100μg，用ecl曝光上样量为20-40μg。但根据你蛋白表达量的不同目标蛋白绝对量DAB法至少50pg，ecl法至少20pg。我也用组织作过western，蛋白浓度的确很高。通常我上50-100ug，足够了。如果蛋白浓度太高导致上样过小，
在做层析实验的时候可能时常会遇到一个问题：一次实验可以上多少样品呢？多也不是少也不是，上样多了会造成一部分样品损失或者达不到预期的分离效果，上样少了无法充分使用层析柱还要增加重复实验或者使用更大层析柱，真是件纠结的事情。我们今天要来给大家介绍的就是不同的层析柱应该如何确定上样量。 层析柱上样量由
上样量根据树脂饱和吸附量换算，上样液的浓度当然是自己算了
上样量和样品有关。样品内蛋白种类多的上样量要大些，这样每个点才有足够的量被检测到。一般的全细胞裂解体系，上样量大概在 100 微克（银染）到 500 微克（考染）之间。
western blot 要保证上样量一致关键就是保证每个泳道样品的蛋白量一致可以先进行浓度检测，通过浓度检测得出样品总蛋白量。根据总蛋白量调整SDS PAGE的上样体积，保证上样量一致或者先行将SDS PAGE染色，根据条带大小调整上样体积也能保证上样量一致
进样量根据需要而定，一般10ul,20ul。当然跟浓度有关 分析测试百科网乐意为你解答实验中碰到的各种问题，祝你实验顺利，有问题可找我，百度上搜下就有。与你进样器量程有关 与样品浓度,柱子填料的量有关系.柱子体积越大,相对上样量也就大些.只要能够分开就行了.....
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目的蛋白在样品中的含量，如果含量高，那么样品上样量要少一点，避免因条带过亮，印象分子量的确定以及微弱的修饰等。一般细胞裂解液样品，义翘的上样量大致在30µg/泳道。