引物溶剂量如何计算？
一般默认是每条引物合成2个OD，分装为2管，所以每管中有1个OD的引物。由于引物分子量的不同，每个OD所对应的物质的量（即n mol数）都是不同的。在管壁标签上我们都会标明这个管里有多少个OD、多少n mol。可以根据这个数据，来算出你需要在管子里加多少体积的溶剂来进行溶解。通常直接用于PCR加样的引物浓度（即工作浓度）是10 p mol/ul（也即10 uM）。而用于长期存储一般是10倍浓度，即100 p mol/ul（也即100 uM）。 这里有个“简单粗暴”的算法：管壁上的n mol数乘以100，就是你要加水的ul数。比如管壁上写着4.5 n mol，那么你向这个管中加450 ul水即可，得到的溶液浓度就是10 p mol/ul（即10 uM），可以直接用于PCR加样了。......阅读全文
引物溶剂量如何计算？
一般默认是每条引物合成2个OD，分装为2管，所以每管中有1个OD的引物。由于引物分子量的不同，每个OD所对应的物质的量（即n mol数）都是不同的。在管壁标签上我们都会标明这个管里有多少个OD、多少n mol。可以根据这个数据，来算出你需要在管子里加多少体积的溶剂来进行溶解。通常直接用于PCR加样的
如何计算引物的Tm值？
引物设计软件都可以给出Tm，与引物长度、碱基组成及所使用缓冲夜的离子强度有关。长度为25base以下的引物，Tm计算公式为：Tm = 4℃(G + C)+ 2℃(A + T)对于更长的寡聚核苷酸，Tm计算公式为：Tm = 81.5 + 16.6 x Log10[Na+] + 0.41 (GC%) –
如何计算引物的Tm值？
引物设计软件都可以给出Tm，与引物长度、碱基组成及所使用缓冲夜的离子强度有关。 长度为25base以下的引物，Tm计算公式为：Tm = 4℃(G + C)+ 2℃(A + T) 对于更长的寡聚核苷酸，Tm计算公式为： Tm = 81.5 + 16.6 x Log10[Na+]
引物的TM值如何计算
Tm值就是DNA熔解温度，指把DNA的双螺旋结构在热变性过程中紫外吸收值达到最大值的1/2时的温度。不同序列的DNA，Tm值不同。DNA中G－C含量越高，Tm值越高，成正比关系。核酸Tm值（解链温度）计算评价标准是核酸所吸收的光线量达到其所增加吸收260nm光线的量的两倍达到的温度，当核酸达到Tm值
引物需要合成多少OD数？如何计算引物的浓度？
根据实验目的确定。一般PCR扩增，2 OD引物，可以做500-1000次50ul标准PCR反应。如果是做基因拼接或退火后做连接，1 OD就足够了。引物保存在高浓度的状况下比较稳定。一般情况下，我们建议将引物的浓度配制成100pmol/ul，称为保存浓度，而引物的工作浓度一般配制成10-50pmol/
如何计算水中的溶氧量
1803年亨利(Henry)在研究一定温度下气体在液体中的溶解度时,发现一定温度下气体在液体中的溶解度和该气体的平衡分压成正比,正比例常数(即亨利系数)的数值决定于温度、压力以及溶质和溶剂的性质.亨利定律的一种表达式为:P(氧气)=K*X(氧气)上式中P(氧气)为氧在水上空的分压,K为亨利系数,X(
引物参数计算
Simple javascript Oligo CalculatorOligo CalculatorEnter Oligo Sequence in BoxLength Melting Temperature (Tm) °C%GC contentMolecular Weight: daltons
辐照剂量的计算方法
1、辐照是指高能粒子流（射线）。2、辐照剂量是指每单位物质质量所接受的辐射能量，称为剂量。3、辐照剂量常用“rad”做计量单位，读作拉德，或者“gray”作为计量单位，读作戈瑞。4、辐照剂量与其它常用能量单位之间的关系为：1rad=100erg/g=6.24×1013ev/g，1gray=1j/kg
溶出量怎么计算
1、溶出度：是指药物从片剂等固体制剂在规定溶剂中溶出的速度和程度。溶出度是片剂质量控制的一个重要指标，对难溶性的药物一般都应作溶出度的检查。凡检查溶出度的制剂，不再进行崩解时限的检查。2、计算公式：溶出度%=(Ai×Mr× Xr%×n)/(Ar×0.1)。
溶出量怎么计算
1、溶出度：是指药物从片剂等固体制剂在规定溶剂中溶出的速度和程度。溶出度是片剂质量控制的一个重要指标，对难溶性的药物一般都应作溶出度的检查。凡检查溶出度的制剂，不再进行崩解时限的检查。2、计算公式：溶出度%=(Ai×Mr× Xr%×n)/(Ar×0.1)。
如何溶解引物？
干燥后的引物质地非常疏松，开盖前最好离心一下，或管垂直向上在桌面上敲敲，将引物粉末收集到管底。根据计算出的体积加入去离子无菌水或10mM Tris pH7.5缓冲液，室温放置几分钟，振荡助溶，离心将溶液收集到管底。溶解引物用的水一般不要用蒸馏水，因为有些蒸馏水的pH值比较低（pH4-5）,引物在这种
如何保存引物？
引物合成后，经过一系列处理和纯化步骤，旋转干燥而成无色或白色絮状干粉。干 粉：运输时常温运输，-20℃可以保存一年。储存液：配好后分装成几管，避免反复冻融，-20℃可以保存半年。工作液：常规使用，4℃保存，也可-20℃保存，但应避免反复冻融。修饰荧光引物：需要避光保存，尽快使用为宜。
引物如何保存？
拿到手的引物一般已分装为两管。我们建议先溶解其中一管用于实验，另一管干粉保存备用，以备不时之需。干粉状态的引物非常稳定。-20℃可保存2年以上。常见的做法是将引物溶解至10倍的存储度，-20℃长期保存。使用时取出稀释至1倍的工作液。工作液保存于4℃即可。在4℃下引物溶液是比较稳定的，保存一周以上仍可
计算物质的溶出速率怎么计算
定时测定被溶出物质在溶液中的浓度，将两次溶出的浓度差比上时间差，就是溶出速率。例如时间（分）0510152025时间差55555浓度c1c2c3c4c5c6浓度差c2-c1c3-c2c4-c3c5-c4c6-c5速率(c2-c1)/5.................................
计算物质的溶出速率怎么计算
定时测定被溶出物质在溶液中的浓度，将两次溶出的浓度差比上时间差，就是溶出速率。例如时间（分）0510152025时间差55555浓度c1c2c3c4c5c6浓度差c2-c1c3-c2c4-c3c5-c4c6-c5速率(c2-c1)/5.................................
溶出度怎么计算
计算方法：溶出度%=(Ai×Mr× Xr%×n)/(Ar×0.1)计算公式一： 溶出度%=（Ai×Mr× Xr%×n）/（Ar×0.25） 计算公式二： 溶出度%=（Ai×Mr×n）/（Ar×平均片重）
溶出度怎么计算
计算方法：溶出度%=(Ai×Mr× Xr%×n)/(Ar×0.1)计算公式一： 溶出度%=（Ai×Mr× Xr%×n）/（Ar×0.25） 计算公式二： 溶出度%=（Ai×Mr×n）/（Ar×平均片重）
溶出度怎么计算
计算方法：溶出度%=(Ai×Mr× Xr%×n)/(Ar×0.1)计算公式一： 溶出度%=（Ai×Mr× Xr%×n）/（Ar×0.25） 计算公式二： 溶出度%=（Ai×Mr×n）/（Ar×平均片重）
如何设计引物（一）
Primers:i) Oligonucleotide primers are generally supplied as "so many OD units/ml" - but what does this mean, in terms of mg/ml, or mmol/ml, etc?Given
如何设计引物（二）
Nucleotides:Stocks of nucleotides for PCR (or other procedure) are NEARLY ALWAYS dNTPs (deoxynucleotides), and concentrations is almost always given i
溶出度计算公式
溶出度%=(Ai×Mr× Xr%×n)/(Ar×0.1)举例一：测头孢拉定片的溶出度测定：方法：取本品，以0.12mol/L盐酸溶液900ml为溶出介质，转速为每分钟75转，依法操作，60分钟时，取溶液适量，滤过，精密量取续滤液适量，用溶出介质稀释成每1ml中约含头孢拉定25ug的溶液，在255nm
引物是如何合成的？
目前引物合成基本采用固相亚磷酰胺三酯法。DNA合成仪有很多种, 主要都是由ABI/PE 公司生产，无论采用什么机器合成，合成的原理都相同，主要差别在于合成产率的高低，试剂消耗量的不同和单个循环用时的多少。亚磷酰胺三酯法合成DNA片段，具有高效、快速的偶联以及起始反应物比较稳定的特点。亚磷酰胺三酯法是
引物是如何合成的？
目前引物合成基本采用固相亚磷酰胺三酯法。DNA合成仪有很多种,无论采用什么机器合成，合成的原理都相同，主要差别在于合成产率的高低，试剂消耗量的不同和单个循环用时的多少。(1) 去保护：加入Deblocking脱去碱基上5'- OH的保护基团DMT，获得游离的5'- OH；(2)
如何设计PCR引物(二)
上回说到如何寻找保守序列，经过隆地熊我一番罗嗦，七七八八也该知道了些。当然，要想做到炉火纯青，各位小白还得勤加练习。本回隆地熊我就要进入正题了，不然对不起这图文题目。在做PCR引物设计前，首先得了解引物设计的基本原则。根据网上资料汇总（主要来自生物谷、生物秀、小木虫、百度文库等，特此一并感谢，具体不
引物合成如何处理？
切割与脱保护基：将合成好的寡核苷酸链从支持物上化学切割下来。常用新鲜的浓氨水来裂解CPG与初始核苷之间的酯键。断裂下来的寡核苷酸带有自由的3’羟基。纯化：根据所合成寡核苷酸的组成和应用来选定纯化的方法。常用的纯化方法有：C18、OPC、PAGE和HPLC。定量：根据寡核苷酸在260nm处的紫外吸收来
如何溶解和保存引物？
如何溶解引物？干燥后的引物质地非常疏松，开盖前最好瞬时离心一下，或管垂直向上在桌面上敲敲，将引物粉末收集到管底。根据计算出的体积加入去离子无菌水或TE(pH8.0)缓冲液，室温放置几分钟，振荡助溶，离心将溶液收集到管底。溶解引物用的水一般不要用蒸馏水，因为有些蒸馏水的pH值比较低（pH4-5）,引物
如何设计PCR引物（一）
“如何设计PCR引物”看到这个题目后肯定有问“什么是PCR”的。对于这个问题，连小白都知道，您不知道，就只好去找百度哥咯。虽然百度哥肚子里其他的信息乱七八糟的，但是这个问题的答案还是蛮统一的，不会有误导性，但问无妨。另外，也可以看看下图老外给的简介，英文不好请有道。跟“服装设计”类似，设计PCR引物
如何检测引物的纯度？
实验室方便的作法是用PAGE方法。使用加有7M尿素的一定浓度的聚丙烯酰胺凝胶进行电泳，60个碱基的引物用12%的胶，取0.2OD左右的引物，用尿素饱和液溶解或引物溶液中加入尿素干粉直到饱和，上样前加热变性（95℃，2 min）。加入尿素的目的一是变性，二是增加样品比重，容易加样。600 V 电压进行
如何检测引物的纯度？
实验室方便的做法是用PAGE方法。使用加有7M尿素的16%的聚丙烯酰胺凝胶进行电泳。取0.2-0.5OD的引物，用尿素饱和液溶解或引物溶液中加入尿素干粉直到饱和，上样前加热变性(95℃,2mins)。加入尿素的目的一是变性，二是增加样品比重，容易加样。600V电压进行电泳，一定时间后(约2-3小时)
如何利用LAMP引物设计平台设计IMSA引物？2
6. 更改ParameterCondition中默认的Normal至AT rich。默认显示Normal说明我们所上传VP1 gene的序列中GC含量位于40%-65%的正常范围内。高于65%属于GC rich；低于40%属于AT rich。7. 再次点击Generate时平台显示有1000或高于1