1. NaBr 梯度液的配置:
● 必须用极干燥的分析纯NaBr。NaBr晶体使用前在210℃烘箱中过夜,取出后储存在干燥器中
● 配置密度:1.006g /ml,9g/l
1.016g /ml,27g/l
1.063g /ml,95g/l
1.210g /ml,283.4g/l
1.368g /ml,524.8g/l
● 配置NaBr用溶剂0.05%EDTA(PH7.0),使用前EDTA必须过滤,储存在褐色瓶中,4℃,使用前要析测密度(用阿贝折射仪或其他恒温折射仪(浓度-密度配置表见后)
2. 分离步骤:
Ⅰ. 去除血细胞:1000xg,20分
Ⅱ. 去除乳糜粒(见技术讲座文献)
Ⅲ. 用血清/1.386g/m溶液=1:4的比例混合分离用样品液
(例:P40ST水平转头用0.2ml血清加0.8ml 1.386g/ml,NaBr液;P35ZT区带离心转头用200ml血清加800ml 1.386g/ml NaBr液)
Ⅳ. 梯度铺设:如果用13ml离心管,则底部加1ml混合样品液,然后依次向上分层铺设:3.2ml,1.21g/ml NaBr;3.8ml 1.063g/ml NaBr液;3.3ml,1.016g/ml NaBr液;1.2ml 1.006g/ml NaBr液。
如果用P35ZT区带转头则先从转头外测从低密度到高密度依次加入1.006,1.016,1.063,1.21梯度液最后加入样品混合液,参考容量依次为74ml,193ml,228ml,195ml及1000ml。
3. 离心工艺:
● P40ST转头:38,500rpm(263,000xg),24hrs,14℃,加速“8”,减速“7”
● P35ZT区带转头:35,000rpm(122,000xg),49hrs,14℃
4. 样品收集:
● P40ST转头:离心后可以用手工收集也可以用日立DGF-U(密度梯度制备-收集仪),手工收集每管(13ml)收集或40管,分别测O.D.值(280mm及260mm)绘出O.D.-管数值曲线。根据各峰顶对应位置可以找到各种密度脂蛋白所在管。
用DGF-U收集时将抽出管联接到带流动池的分光光度计,流动池连续测量O.D.,并在记录仪上绘出O.D.-管数的连续曲线。再根据O.D.峰对应位置找到各种密度脂蛋白所在管。
● P35ZT转头:用Masterflex管道泵将40%w/w NaBr液体从转头外测连续泵入转头,中心管接到分光光度计流动池,从中心管排出的样品连续测定O.D.,并在记录仪上绘出O.D.-管数曲线,一般根据需要可以收集成50-100管,和P40ST同样方法决定各种不同密度脂蛋白所在管。
5. 结果:用P40ST转头分离纯化收集后各种密度脂蛋白分布如下:
脂蛋白分类 | 管序数 | 从管上液面向下计算的毫升数 |
VLDL | 1-5 | 0.5-1.0 |
IDL | 6-9 | 1.5-2.0 |
LDL | 10-18 | 2.5-4.5 |
HDL1 | 20-24 | 5.0-6.0 |
HDL2 | 25-34 | 6.8-8.5 |
HDL3 | 35-38 | 9.0-10.0 |
用P35ZT分离的结果可根据峰位置决定管序数
6. 讨论:可分别测A260与A280,根据A280/A260比值可估计蛋白质纯度,如果某个峰值A280/A260≈1.8,说明蛋白质较纯。
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