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1、锚定PCR(anchored PCR)
通常采用的PCR反应必须知道欲扩增的DNA或RNA片段两侧的序列,而在大多数情况下对某些序列本身或其旁侧序列并不清楚,“锚定PCR”可以帮助克服序列未知或序列完全未知带来的障碍。
基本做法是:分离细胞总RNA或者mRNA,在反转录酶的作用下合成cDNA,通过DNA末端转移酶在cDNA 3’末端加上poly(dG)尾巴。与此poly(dG)相对应的锚定引物poly(dC)为保证扩增特异性,建议此段旁聚(dC)在十二聚以上,5’端可带上某些限制酶序列或其他序列信息。在与基因特异配对的引物参与下,可以扩增出此带同源多聚物尾巴的cDNA序列。
2、不对称PCR(asymmetric PCR)
典型的PCR反应产生一种特定的双链DNA拷贝,不对称PCR可以利用引物浓度的差别,形成单链DNA,便于测序。一般采用50~100:1比例的引物浓度,在zui初的10~15个循环中主要产物还是双链DNA,但当低浓度引物被消耗尽时,高浓度引物介导的PCR反应就会产生大量的单链DNA,分离此扩增产物中的ssDNA可用原引物或第三条内部引物直接测序。
3、反向PCR(inverse PCR)
PCR反应允许扩的DNA片段位于已知序列的两个引物之间。反向PCR的应用则可以对一个已知的DNA片段的两侧未知序列进行扩增和研究。选择已知序列内部没有的限制性内切酶对此段DNA进行酶切,连接成环状DNA分子,选择合适方向和已知序列两末端互补的引物,经PCR后,可以得到未知序列的DNA片段,用此方法可建立基因组步移文库。
4、多重PCR(multiplex PCR)
PCR技术的一个重要应用领域是检测特定序列的存在或缺失。如果待检测的基因片段存在,经PCR可以产生扩增区带,如果缺失则没有扩增带出现。在许多情况下需要检测的基因十分庞大,有的可达数百上千kb。对此有人提出了多重PCR,即在同一个试管中加入多对引物,扩增同一模板的几个区段。如果某一区段缺失则在相应的电泳图谱上这一区带就会消失。多重PCR和southern blotting 一样可靠,但要简便的多。
5、着色互补PCR(color complementation assay)
着色互补PCR又称荧光PCR,可用于区分长短相近的多种基因成分。其原理是用不同的荧光染料,如红色的罗丹明(POX)和绿色的荧光素(FAM)等分别标记于不同的寡核苷酸引物上,同时扩增多个DNA区段,反应完毕后,利用分子筛除去延伸的引物。用紫外线照射扩增产物,就能显示某一种或几种荧光染料颜色的组合,如果某一DNA区带缺失,则会缺乏相应的颜色,据此可以很快诊断出是否某种基因缺失,或者发现某些感染的病毒。
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