原理
吲哚乙酸在吲哚乙酸氧化酶的作用下,被氧化破坏失去活性。植物体内吲哚乙酸氧化酶活力的大小,对调节体内吲哚乙酸的水平,起着重要的作用,而影响植物的生长。酶活力的大小可以其破坏吲哚乙酸的速度表示之。吲哚乙酸的含量可用比色法测定。
仪器药品
研钵 试管
移液管 烧杯
20mmol/L磷酸缓冲液,pH6.0。
1mmol/L2,4—二氯酚:称取二氯酚16.3mg用蒸馏水配制成100ml。
1mmol/L氯化锰:称取MnCl2 ·4H2 O 19.8mg用蒸馏水配制成100ml。
1mmol/L吲哚乙酸:称取IAA 17.5mg用少量乙醇溶解,然后将其倒于盛有约90ml蒸馏水的容量瓶中(100ml),稀释至刻度。
吲哚乙酸试剂A或B(任备其中之一):
试剂A:15ml 0.5mol/L FeCl3,300ml浓硫酸(比重为1.84),500ml蒸馏水,使用前混合之即成,避光保存。用时1ml样品中加入试剂4ml。
试剂B:10ml 0.5mol/L FeCl3,500ml 35%过氯酸,使用前混合之即成,避光保存。用时于样品中加入试剂。试剂B较试剂A灵敏。
操作步骤
1.将大豆或绿豆种子于30℃温箱中萌发3梍4天,选取生长一致的幼苗,除去子叶,留下胚轴作材料。
2.取20株胚轴,称得重量,置研钵中,加入预冷的磷酸缓冲液5ml,石英砂少许,置冰浴中研磨成匀浆。再按100mg鲜重材料加1ml提取液的比例,用磷酸缓冲液稀释之。离心(4000r/min)20分钟,所得上清液即为粗酶液。
3.取试管2支,于一试管中加入氯化锰1ml,二氯酚1ml,IAA2ml,酶液1ml,磷酸缓冲液5ml,混合均匀。另一试管中除酶液用磷酸缓冲液代替外,其余成分相同。一起置于30℃恒温水浴中,保温30分钟。
4.吸取反应混合液2ml,加入吲哚乙酸试剂B4ml,摇匀,置于30℃的黑暗处保温30分钟,使显色。
5.将显色后呈现红色的反应液于分光光度计中测定吸光度,测定时用波长530nm。
6.根据读数从标准曲线上查出相应的吲哚乙酸残留量(或从直线方程式计算反应液中IAA的残留量)。
7.从开始时加入的吲哚乙酸量减去酶作用后残留的吲哚乙酸量,即得被酶所分解破坏的吲哚乙酸量。以每ml酶液在1小时内分解破坏吲哚乙酸量(μg)表示酶活力的大小。
8.配制浓度从0梍25μg/ml的IAA溶液,分别测得吸光度A,然后绘制标准曲线,或计算直线回归方程。
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