细胞培养技术
| 实验方法原理 |
将小鼠的肝细胞从机体中取出,经胰酶、螯合剂(常用EDTA)处理,分散成单细胞,置合适的培养基中培养,使细胞得以生存、生长和繁殖。 |
|---|---|
| 实验材料 | 雄性 SD 大鼠 |
| 试剂、试剂盒 | 戊巴比妥钠 小牛血清 DMEM 酶消化液I、Ⅱ Nycodenz D-Hanks’液 HBSS 台盼兰 |
| 仪器、耗材 | 手术器械 尼龙网 相差显微镜 荧光显微镜 |
| 实验步骤 |
一、实验步骤
1. 大鼠腹腔麻醉后在超净台上剖腹,进行门静脉插管。
2. 以D-Hanks‘液灌注,同时剪开下腔静脉,冲掉血液后,改灌以100 ml 酶消化液I(0.05% IV 型胶原酶)。
3. 待肝脏变软后,离体肝脏并剪碎,继续以酶消化液II(含20U/ml DNase I 的0.05% IV 型胶原酶)消化15 min,尼龙网过滤后以450 g 离心5 min(4℃,下同)。
4. 以HBSS 重悬沉淀至10 ml,再混以20 ml Nycodenz 液,分置于离心管中,并分别覆以2-3 ml HBSS,1450 g 离心16 min 后取界面细胞。
5. 以HBSS重悬后再次离心收集细胞,以DMEM重悬后进行细胞计数,并判断存活率和产量,最后按照常规方法接种(105 细胞/cm2 ),次日换液,以后每2-3 天换液一次。
6. 传代方法:弃去培液后以D-Hanks’液洗两次,加0.125%胰酶(原代最好加0.05% EDTA)消化,镜下观察细胞突起回缩(2-5 min左右),以完全培液(DMEM+10% NBS)终止反应(若不用EDTA,可以不需离心), 充分吹打后以 1:2-1:3 接种,然后继续培养(5% CO2,37℃)。 接种次日,光镜下可见细胞呈星芒状,胞质内有脂滴,荧光镜下328 nm 处见自发荧光。附照片(图 1)。
图 1. 原代培养第 2 天的大鼠肝星状细胞
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| 注意事项 |
1. 进一步鉴别需要做免疫组化:Desmin和α-SMA;后者在细胞激活后才表达。 2. 采用无须原位消化的方案,完全可行,只不过消化时间更难控制!实验采用原代培养的或传代后9代内的细胞(最好5代以内)。
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| 其他 |
电镜观察:接种次日,光镜下可见细胞呈星芒状,胞质内有脂滴,荧光镜下328 nm处见自发荧光。 1. 袁桃霞,张锦生,张月娥,等. 大鼠肝 Ito 细胞的体外培养及肝素对其抑制作用的观察. 上海医科大学 学报,1996,23(2):90-93.
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