发布时间:2010-05-03 10:31 原文链接: 实验方法篇组织切片免疫荧光

组织切片免疫荧光实验步骤 徐索文 1.切片自然晾干
2.复水5-10min
3.PBS 5min 3次 4.4%PFA 4度固定30分钟或者冷丙酮4度固定10分钟 5. PBS 5min 3次 6. 滤纸吸干,用免疫组化笔在切片周围画圈
7.1% triton X-100透膜 10min
8. PBS 5min 3次
9.血清封闭30min
10.倾去血清(勿洗),湿盒内37度孵育1小时或4度过夜 11.室温复温1h(防止掉片)
12. PBS 5min 3次
13.湿盒内37度孵育1小时(避光) 14. PBS 5min 3次 15.DAPI或Hoechest复染细胞核10分钟,PBS漂洗两次,5分钟/次
15.甘油封片,指甲油封固,移荧光显微镜或Confocol观察   Notes: 1.      切完片后,室温下放置30分钟,然后冷丙酮固定,4度,10分 钟。让切片充分贴片,而不至于脱片。一般发生脱片,背景会很重。 2.      片厚小于10um,越薄越好,否则激发光都消耗在片子的底部,而物镜观察的上部激发不明显。 3.      血清封闭10-30分钟,阻断非特异结合点。具体阻断时间,可根据预实验的结果来调整。 4.      注意调节一抗、二抗的浓度和孵育时间,做好预实验。 5.      孵育后,PBS充分洗涤,5-10分钟,3次。 6.      最好选择单抗,如果是多克隆抗体,很可能会有较多的非特异着色点。 7.      二抗孵育及后续洗涤过程过程中,注意避光。

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