qPCR的英文全名是Real-timeQuantitative PCR Detecting System。即实时荧光定量核酸扩增检测系统,也叫实时定量基因扩增荧光检测系统,简称qPCR。
上世纪八十年代Cetus Corporation公司的化学家Kary Mullis发明了PCR,如今DNA扩增技术俨然已经成为了生物学研究的基础。三十多年以来,人们为了解决研究中出现的新问题新需求,不断对这一经典技术进行改良。从经典PCR、实时定量PCR再到现在的数字PCR,PCR技术在不断蜕变却从未淡出我们的视野。如今PCR技术早已走出实验室,在遗传学鉴定和疾病诊断中发挥着巨大的作用,在越来越广阔的领域里焕发着新的活力。
终点PCR是最原始、最简单的PCR方法,如今仍在被我们广泛使用。使用者只能在PCR反应结束之后,通过凝胶电泳、毛细管电泳等方法对产物进行检测。终点PCR本身是无法定量的,因为该反应产出的DNA量不一定能反映最初情况。举例来说,不同样品和序列的扩增效率是有差异的。
PCR的反应过程:
传统PCR电泳结果:
(图片来源于网络)
因此,研究者们克服了PCR定量分析的挑战——实时定量PCR(qPCR)。qPCR主要是利用插入性染料或荧光探针(比如TaqMan),人们可以通过监控PCR过程中的荧光强度比较多个样品的DNA水平。
在qPCR中使用插入性DNA染料,随着PCR循环的连续进行,这种染料的荧光强度会不断增强,从而可以使人们对反应中的DNA进行定量。利用荧光信号的变化,实时监测PCR扩增反应中的每一个循环扩增产物量的变化,通过Ct值和标准曲线的分析对起始模板进行定量分析。
qPCR的特点
·灵敏度高
·特异性强
·全封闭PCR过程,无需后续处理
·及时反馈扩增过程,摒弃重点数据,更适用于定量
·定量范围宽,可达10个数量级,无需稀释样品
·可实现一管多检
·仪器自动分析,更快获得结果
qPCR的原理
·什么是Ct值?
PCR扩增过程中,扩增产物的荧光信号达到设定的阈值时所经过的扩增循环次数。
·Ct值的重现性
Ct值的特点:相同模板进行96次扩增,终点处产物量不恒定;Ct值则极具重现性。
简单来说,模板DNA量越多,荧光达到阈值的循环次数越少,即Ct值越小;Log浓度与循环数呈线性关系,通过已知拷贝数的标准品可做出标准曲线,根据样品Ct值,就可以计算出样品中所含的模板量。
qPCR定量分析,有绝对定量和相对定量两种。
·绝对定量:精确计算初始反应的模板浓度(DNA/RNA)
——病毒DNA或RNA的拷贝数
——转基因的拷贝数
·相对定量:计算初始反应模板的相对含量
——差异表达分析
——芯片评估
——转基因生物的检测
——基因型检测
qPCR常用的荧光标记
·非特异性荧光标记
——SYBR Green I
——EvaGreen
——LC Green
·特异性荧光标记
——TaqMan
——Molecular Beacon
——Amplisensor
qPCR的应用
·基因扩增
·扩增特异性分析
·基因定量分析
·基因检测
·基因分型
·SNP分析
·RFLP多态性分析
·单/多基因表达研究
·高通量基因表达谱研究
目前qPCR技术广泛应用于生物医药食品等行业,运用于疾病的早期诊断、遗传病的早期诊断、药物研究、肿瘤的诊断与研究、食品病原微生物的检测、转基因食品检测、动物疫病检测等。
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