电泳法
| 实验方法原理 |
DNA琼脂糖凝胶电泳的基本原理是利用DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时具有的电荷效应和分子筛效应。 电荷效应是指DNA分子在高于等电点的pH溶液中带负电,在电场中向正极移动,且相同数量的双链DNA几乎具有等量的净电荷,能以相同速率移动。通常,DNA泳动速率随DNA片段长度的增加而减少,与电场强度成正比。 分子筛效应是指作为支持介质的琼脂糖,具有网络结构,使大分子物质在通过时收到较大阻力,依此分离不同大小的DNA片段。一般,DNA琼脂糖凝胶电泳可分离50bp到百万bp长度的DNA片段,视实际需求配制不同浓度和构型的琼脂糖凝胶。 |
|---|---|
| 实验材料 | DNA片段 |
| 试剂、试剂盒 | 琼脂糖 电泳缓冲液(1XTAE或0.5XTBE) 载样缓冲液 荧光插入染料(溴化乙锭或SYBR Gold) DNA大小标准品(DNA Marker) |
| 仪器、耗材 | 琼脂糖凝胶电泳仪 紫外透射仪或紫外凝胶成像仪 微波炉 移液器 水浴锅 |
| 实验步骤 |
1. 用胶带将洗净、干燥的制胶板的两端封好,水平放置在工作台上; pUC185祃+ddH2O3祃+溴酚蓝2祃共10祃于0.5 ml tube中混合后点样;
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| 注意事项 |
1. 影响DNA在琼脂糖凝胶中迁移速率的因素:
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| 其他 |
常见问题原因分析 1. 跑出的DNA带模糊? (1)DNA降解:避免核酸酶污染。 (2)电泳缓冲液不新鲜:电泳缓冲液多次使用后,离子强度降低,pH值上升,缓冲能力减弱,从而影响电泳效果。建议经常更换电泳缓冲液。 (3)所用电泳条件不合适:电泳时电压不应超过20V/cm,温度<30℃;巨大DNA链电泳,温度应<15℃;核查所用电泳缓冲液是否有足够的缓冲能力。 (4)DNA上样量过多:减少凝胶中的DNA上样量。 (5)DNA样含盐过高:电泳前通过乙醇沉淀去除过多的盐。 (6)有蛋白污染:电泳前酚抽提去除蛋白。 (7)DNA变性:电泳前勿加热,用20mM NaCl缓冲液稀释DNA。 2. 有不规则DNA带迁移? (1)对于λ/Hind III片段cos位点复性:电泳前于65℃加热DNA 5分钟,然后在冰上冷却5分钟。 (2)电泳条件不合适:电泳时电压不应超过20V/cm,温度<30℃;经常更换电泳缓冲液。 (3)DNA变性:电泳前勿加热,用20mM NaCl缓冲液稀释DNA。 3. 跑出的DNA条带弱或无条带? (1)DNA的上样量不够:增加DNA的上样量。 (2)DNA降解:避免DNA的核酸酶污染。 (3)DNA走出凝胶:正确连接电极方向避免插反的情况,缩短电泳时间,降低电压,增强凝胶浓度。 (4)所用光源不合适:对于用EB染色的DNA应用短波长(254nm)紫外光源。 4. 跑出的DNA带缺失不完整? (1)如果是小DNA带,可能跑出凝胶,可以缩短电泳时间或降低电压或增强凝胶浓度。 (2)分子大小相近的DNA带不易分辨,应延长电泳时间,并核准正确的凝胶浓度。 (3)DNA变性:电泳前勿加热,用20mM NaCl缓冲液稀释DNA。
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