聚合酶链式反应是一种用于放大扩增特定的DNA片段的分子生物学技术,它可看作是生物体外的特殊DNA复制,PCR的最大特点,是能将微量的DNA大幅增加。因此,无论是化石中的古生物、历史人物的残骸,还是几十年前凶杀案中凶手所遗留的毛发、皮肤或血液,只要能分离出一丁点的DNA,就能用PCR加以放大,进行比对。这也是“微量证据”的威力之所在。由1983年美国Mullis首先提出设想,1985年由其发明了聚合酶链反应,即简易DNA扩增法,意味着PCR技术的真正诞生。到如今2013年,PCR已发展到第三代技术。1973 年,台湾科学家钱嘉韵,发现了稳定的Taq DNA聚合酶,为PCR技术发展也做出了基础性贡献。
PCR仪常见问题及回答
1. cDNA产量的很低
可能的原因:
RNA模板质量低
对mRNA浓度估计过高
反应体系中存在反转录酶抑制剂或反转录酶量不足
同位素磷32过期
反应体积过大,不应超过50μL
2. 扩增产物在电泳分析时没有条带或条带很浅
最常见的原因在于您的反应体系是PCR的反应体系而不是RT-PCR的反应体系
与反应起始时RNA的总量及纯度有关
建议在试验中加入对照RNA
第一链的反应产物在进行PCR扩增时,在总的反应体系中的含量不要超过1/10
建议用Oligo(dT)或随机引物代替基因特异性引物(GSP)用于第一链合成。由于RNA模板存在二级结构,如环状结果,有可能导致GSP无法与模板退火;或SSⅡ反转录酶无法从此引物进行有效延伸。
目的mRNA中含有强的转录中止位点,可以试用以下方法解决:
a.将第一链的反应温度提高至50℃。
b.使用随机六聚体代替Oligo(dT)进行第一链反应。
3.产生非特异性条带
用RT阴性对照检测是否被基因组DNA污染。如果RT阴性对照的PCR结果也显示同样条带,则需要用DNase I重新处理样品。
在PCR反应中,非特异的起始扩增将导致产生非特异性结果。在低于引物Tm 2至5℃的温度下进行退火,降低镁离子或是目的DNA的量将减少非特异性结果的产生。
由于mRNA剪切方式的不同,根据选择引物的不同将导致产生不同的RT-PCR结果。
4. 产生弥散(smear)条带
在PCR反应体系中第一链产物的含量过高
减少引物的用量
优化PCR反应条件/减少PCR的循环次数
在用DNase处理被DNA污染的RNA样品时,其产生的寡核苷酸片段会产生非特异性扩增,一般会显示为弥散背景。
5. 产生大分子量的弥散条带
大多数情况下是由于退火温度过低而导致的非特异性的起始及延伸产生的
对于长片段的PCR,建议将反应体系中cDNA的浓度稀释至1:10(或1:100-1:200)
6. 在无反转录酶的情况下,对照RNA获得扩增结果
通常是由于对照RNA中含有痕量DNA而导致的。由于进行体外转录时不可能将所有的DNA模板消除。建议可将第一链cDNA稀释1:10、1:100、1:1000倍以消除DNA污染所造成的影响。
有可能是引物二聚体的条带
7. 扩增产物滞留在加样孔中
有可能是由于模板量过高而导致PCR结果产生了高分子量的DNA胶状物。建议将第一链结果至少稀释100倍再进行二次扩增。另外,在二次PCR时使用的退火温度如果比引物的Tm值低5℃,可以将退火温度适当增高或进行热启动以提高特异性。
8. SSⅢ与SSⅡ有何不同?
具有更高的热稳定性(达50℃)
具有更长的半衰期(达220分钟)
对PCR无抑制
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