实验概要
本文介绍了毕赤酵母PEG1000转化方法。据称PEG比LiCl 方法好,但不如去壁细胞及电转化法,但对没有电转装置的人来说,更方便,效率为102-103/ugDNA。
主要试剂
Buffer A:1M山梨醇,10mM bicine(N-二(羟乙基)甘氨酸)pH8.35,3%(v/v)乙二醇
Buffer B:40%(w/v)聚乙二醇1000,0.2M N-二(羟乙基)甘氨酸pH8.35
Buffer C:0.15M NaCl,10mM N-二(羟乙基)甘氨酸pH8.35
过滤除菌,存于-20 度
新鲜的试剂级DMSO,未打开或刚配制,存于-70 度直至使用。
实验步骤
1. 感受态细胞制备:
1) 在YPD 平板上划线培养毕赤酵母菌,30 度孵育2天。
2) 从平板上挑取单克隆于10mlYPD 中,30度振荡过夜。
3) 早上,在100mlYPD 培养基中接种等量的过夜培养物,至OD600 达0.1,在30 度生长至OD600 为0.5-0.8。
4) 室温3000g离心收集细胞,用50ml Buffer A洗涤细胞1 次。
5) 用4ml Buffer A重悬细胞,分成0.2ml 等份分装至1.5ml离心管中,加11ulDMSO于各管中,混合,并在液氮中快速冷冻细胞。
6) 存于-70度。
2. 转化:
1) 在<20ul 水中加入50ug DNA,将DNA 直接加入仍处于冰冻状态的感受态细胞管中。载体DNA(40ug 变性及超声处理的鲑鱼精DNA)中加入<1ug DNA 样品,检测最大转化效率。
2) 在37 度水浴中孵育各管5min,其间混匀1-2 次。
3) 取出各管,加入1.5ml Buffer B,完全混匀。
4) 在30 度水浴中孵育1 小时。
5) 室温,2000g 离心样品10min,去除上清,用1.5ml Buffer C 重悬细胞。
6) 再次离心,用0.2ml Buffer C 重悬细胞。
7) 将管中内容物全部涂在选择生长平板上,30 度孵育3-4 天,筛选Mut 表型,或筛选遗传霉素高抗性克隆。
注意事项
注意,当细胞溶解后,即使放在冰上,其感受性下降都极快,加入DNA于冰冻的管中很关键。可进行多个转化,建议每次转化6个。
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