间接ELISA实验方案

实验概要

需要偶联二抗的 ELISA 测定的一般程序。

实验步骤

1. 将抗原包被到微孔板

    1) 将抗原在 PBS 或其它碳酸盐缓冲液中稀释至 20 μg/ml 的最终浓度。移取 50 μl 抗原稀释液到 PVC 微量滴定板的第一排微孔中，使该微量滴定板的微孔上包被抗原。按需要在微量滴定板上进行梯度稀释。

    2) 用粘合塑料制品覆盖微量滴定板并在室温下孵育 2 小时，或在 4℃下孵育过夜。包被孵育时间可能需要某些优化。

    3) 弃去包被液，并在微孔中加入 200 μl PBS，洗涤微量滴定板三次。在水槽上方轻轻甩动微量滴定板，除去溶液或洗涤液。在纸巾上轻拍微量滴定板，除去剩余液滴。

2. 封闭

    1) 通过每孔添加 200μl 封闭缓冲液（5% 脱脂奶粉或 5% 血清/PBS），封闭包被孔中剩余的蛋白质结合位点。替代封闭剂包括 blockACE 或 BSA。

    2) 用粘合塑料制品覆盖微量滴定板并在室温下孵育至少 2 小时，或如更方便的话，则在 4℃下孵育过夜。

    3) 用 PBS 洗涤微量滴定板两次。

3. 用一抗和二抗孵育

    1) 将 100 μl 已稀释的一抗添加到每个孔。

    2) 用粘合塑料制品覆盖微量滴定板并在室温下孵育 2 小时。此孵育时间可能需要优化。2 小时通常足以获得强信号，但如若获得弱信号，则当在 4℃下孵育过夜时往往会观察到更强的染色。

    3) 用 PBS 洗涤微量滴定板四次。

    4) 添加 100 μl 偶联二抗，其在使用前便已在封闭缓冲液中稀释成最佳浓度（依照制造商说明书。

    5) 用粘合塑料制品覆盖微量滴定板并在室温下孵育 1-2 小时。

    6) 用 PBS 洗涤微量滴定板四次。

4. 检测

虽然有许多不同类型的酶可用作检测，但是辣根过氧化物酶 (HRP) 和碱性磷酸酶 (ALP) 是 ELISA  测定中广泛使用的两种酶。某些生物材料具有高水平内源酶活性（例如肺泡细胞中的高水平  ALP、红细胞中的高水平过氧化物酶），考虑到这一事实是非常重要的，这可能会导致非特异性信号。如有必要，用左旋咪唑（针对 ALP）或用 0.3%  H2O2 的甲醇溶液（针对过氧化物酶）进行另外的阻断处理。

5. ALP 底物
对于大多数应用，pNPP （对硝基苯磷酸盐）是最常用的底物。在室温下孵育 15-30 分钟后，可在 405 nm 处测定硝基苯酚呈现的黄色。（该反应可通过添加等体积的 0.75 M NaOH 终止）。

6. HRP 显色液
HRP 的底物为过氧化氢。过氧化氢的裂解与氢供体的氧化偶联，反应期间氢供体的氧化使颜色发生变化。

7. TMB (3,3’,5,5’-四甲基联苯胺)
将 TMB 溶液添加到每个孔，孵育 15-30 分钟，添加等体积的终止液 (2 M H₂SO₄)，然后在 450 nm 处读取光密度。

8. OPD (邻苯二胺二盐酸盐)
在 492 nm 下测定终产物。注意底物对光敏感，应将它存放在暗处。

9. ABTS (2,2’-联氮-双-[3-乙基]-苯并噻唑啉-6-磺酸) 二铵盐
终产物为绿色，可在 416 nm 处测定光密度。注意：某些酶底物被认为是有害的（潜在致癌物），因此始终要小心处理并佩戴手套。

    1) 使用多道移液器或多档移液器为每孔分配 100 μl（或 50 μl）底物溶液。

    2) 待显色充分后（如有必要），将 100 μl 终止液添加到微孔。

    3) 用酶标仪读取每孔的吸光度（光密度）。

10. 数据分析

由系列稀释液得到的数据绘制标准曲线，浓度标在 X 轴（对数标度）上，而吸光度标在 Y 轴（线性标度）上。通过内插法在此标准曲线上得出样品浓度。