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试剂: 琼脂糖(Agarose)、甲醛、甲酰胺、MOPS、EDTA、DEPC水。 步骤 一 、5 x MOPS-EDTA Buffer的配制(0.1 M MOPS pH7; 5mM EDTA; 10mM NaAc) 1、称量20.9g的MOPS,置于1L烧杯中。 2. 加700mL DEPC水溶解。 3. 用2N NaOH调节pH**7.0 4. 在上述溶液中加入10mL的1M的NaAC 5. 溶液中加入10mL的0.5M的EDTA pH=8.0 6. 加DEPC水定容**1L 7. 用0.45um滤膜过滤后避光保存 二 、RNA样品处理方法混合均匀后,70°C加热5min,迅速冷却**室温。(PCR仪操作) 三 、甲醛变性琼脂糖凝胶的制备 加1g琼脂糖到31mL DEPC水中,另加10mL 5 x MOPS-ED......阅读全文
试剂: 琼脂糖(Agarose)、甲醛、甲酰胺、MOPS、EDTA、DEPC水。 步骤 一 、5 x MOPS-EDTA Buffer的配制(0.1 M MOPS pH7; 5mM EDTA; 10mM NaAc) 1、称量20.9g的MOPS,置于1L烧杯中。 2. 加700mL DEPC水溶解
试剂： 琼脂糖（Agarose）、甲醛、甲酰胺、MOPS、EDTA、DEPC水。 步骤 一 、5 x MOPS-EDTA Buffer的配制（0.1 M MOPS pH7； 5mM EDTA； 10mM NaAc） 1. 称量20.9g的MOPS，置于1L烧杯中。 2. 加700mL
1、将制胶用具用70%乙醇冲洗一遍，晾干备用。 2、制胶：称取0.5g琼脂糖粉末，加入放有36.5mL的DEPC水（蒸馏水40ml）的锥形瓶中，加热使琼脂糖完全溶解。稍冷（60~70°）却后加入5ml的10x电泳缓冲液、8.5（9）ml的甲醛（+0.5μl溴化乙锭）。然后在胶槽中灌制凝胶，插好
实验方法原理 双向电泳（two-dimensional electrophoresis）是等电聚焦电泳和SDS-PAGE的组合，即先进行等电聚焦电泳（按照pI分离），然后再进行SDS-PAGE（按照分子大小），经染色得到的电泳图是个二维分布的蛋白质图。 实验材料 细胞样品
一、等电聚焦 1. 从冰箱中取-20℃冷冻保存的水化上样缓冲液（I）（不含DTT，不含Bio-Lyte）一小管（1ml/管），置室温溶解。 2. 在小管中加入0.01g DTT， Bio-Lyte 4-6、5-7各2.5ml，充分混匀。 3. 从小管中取出400ml水化上样缓冲
双向电泳操作步骤 第一向凝胶 第二向凝胶 组织来源的蛋白质样品的溶解和制备 实验方法原理
实验材料 细胞样品 试剂、试剂盒 ddH2O溴酚蓝指示剂矿物油丙烯酰胺乙醇MilliQ 水饱和正丁醇SDS琼脂糖 仪器、耗材 样品水化盘冰箱厚滤纸摇床电泳槽电泳仪镊子二向电泳制冷仪手套 实验步骤 1. 样品制备。 2. 第一向等电聚焦。 3. 第二向SDS电泳。
水化上样( 被动上样) 1. 从冰箱中取出 IPG 胶条，室温放置 10min。 2. 沿水化盘槽的边缘从左向右线性加入样品，槽两端各 1cm 左右不加样，中间的样品液一定要连贯。注意：不要产生气泡，否则会影响胶条中蛋白质的分布。 3. 用镊子轻轻撕去 IPG 胶条上的保护层。注意：碱性端较
一、实验目的学习RNA琼脂糖凝胶电泳的使用技术。二、实验原理RNA可以使用非变性或变性凝胶电泳进行检测。在非变性电泳中，可以分离混合物中不同分子量的RNA分子，凡是无法确定分子量。只有在变性情况下，RNA分子完全伸展，其泳动率才与分子量成正比。判断RNA提取物的完整性是进行电泳的主要目的之一。完整的
实验方法原理RNA可以使用非变性或变性凝胶电泳进行检测。在非变性电泳中，可以分离混合物中不同分子量的RNA分子，凡是无法确定分子量。只有在变性情况下，RNA分子完全伸展，其泳动率才与分子量成正比。判断RNA提取物的完整性是进行电泳的主要目的之一。完整的未降解的RNA制品的电泳图谱应可清晰看到18s