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不太可能，Invitrogen的商业化毕赤酵母表达系统属于甲醇酵母表达系统，用的是毕赤酵母独有的AOX1启动子，由甲醇诱导；酿酒酵母用的启动子大多用的是GAPDH或Gal启动子等，由葡萄糖和半乳糖诱导。虽然两种菌株有很多基因具有较高的同源性，但不能通用。建议使用毕赤酵母表达系统，酿酒酵母表达量低，诱导不严谨，表达产物的糖基化程度相对也较高。......阅读全文
实验概要本实验介绍了毕赤酵母的转化方法。主要试剂1. 转化当天，配制下列试剂：存于4度5% SDS溶液RD(Regeneration Dextrose) 融化琼脂100ml2. 溶液：转化试剂40%PEG：用水配制40%(w/v)PEG3350(试剂纯)CaT：20mMTris pH7.5，20mM
实验概要本实验介绍了毕赤酵母电转化方法。该方法无需产生去壁细胞，是产生毕赤酵母重组子的简便方法。与去壁细胞效率相似。实验步骤1. 细胞准备： 1) 在含5mlYPD 的50ml 离心管中，培养毕赤酵母，30 度过夜。 2) 取0.1-0.5ml 过夜培养物，接种含500ml 新鲜培养基的2L
实验概要本文介绍了重组毕赤酵母目的基因表达的方法及条件，为毕赤酵母表达因素给予指导，但对于任何表达系统，最优化条件因表达蛋白的特征而不同。实验步骤1. Mut 胞内或分泌表达：为检测表达条件是否有效，可培养GS115β-gal (Mut )(胞内表达-半乳糖苷酶)。亲代载体转化GS115 或KM71
实验概要本文介绍了毕赤酵母LiCl 转化方法。该程序是电转化的替代方法。转化效率为102-103cfu/ug线性化DNA。主要试剂溶液准备：不能用醋酸锂，一定要用氯化锂1. 用无菌去离子蒸馏水配制1M LiCl，过滤除菌，用无菌水稀释2. 用无菌去离子蒸馏水配制50%PEG(3350)，过滤除菌，存
Pichia.pastoris酵母菌体内无天然质粒，所以表达载体需与宿主染色体发生同源重组，将外源基因表达框架整合于染色体中以实现外源基因的表达。包括启动子、外源基因克隆位点、终止序列、筛选标记等。表达载体都是穿梭质粒，先在大肠杆菌复制扩增，然后被导入宿主酵母细胞。为使产物分泌胞外，表达载体还需带有
自从1987年Cregg等首次用巴斯德毕赤酵母（Pichia pastoris）作为宿主表达外源蛋白以来,作为一种新的高效的表达系统，毕赤酵母越来越引起人们的重视，到1995年，已有四十多种外源蛋白在该宿主菌中获得表达。而最近几年每年报道的在毕赤酵母中表达的外源基因就有几十种，且一年比一年多，与其它
实验概要本实验介绍了用LiCl法将重组质粒导入毕赤酵母菌X-33的转化方法。主要试剂甘油，YPD培养基，50% PEG，1 mol/L LiCl，Sac I主要设备摇床，高速离心机，1.5 ml微量离心管，水浴锅实验材料重组质粒pPIC6αA-APC，毕赤酵母菌X-33实验步骤1. 取毕赤酵母甘油种
毕赤酵母高效转化实验方案1.收集菌体取1mlGS115过夜培养物(OD约6-10) 分装到1.5ml EP管中，4℃、10000g 离心1min，弃上清，沉淀用无菌水(4℃)洗涤，同样条件下离心，弃上清。2.菌体处理加入1ml处理液，室温下放置20min。处理液：10mM LiAc10mM DTT0
十年代巴斯德毕赤酵母曾被用于生产单细胞蛋白（SCP），有很好的发酵基础，菌体密度可达100g/L干重。其生长培养液的组分包括无机盐、微量元素、生物素、氮源和碳源，廉价而无毒。它能在以甲醇为唯一碳源的培养基中快速生长，其中醇氧化酶AOX——甲醇代谢途径的关键酶可达细胞可溶性蛋白的30%。而在葡萄糖、甘
不太可能，Invitrogen的商业化毕赤酵母表达系统属于甲醇酵母表达系统，用的是毕赤酵母独有的AOX1启动子，由甲醇诱导；酿酒酵母用的启动子大多用的是GAPDH或Gal启动子等，由葡萄糖和半乳糖诱导。虽然两种菌株有很多基因具有较高的同源性，但不能通用。建议使用毕赤酵母表达系统，酿酒酵母表达量低，诱