火箭电泳技术

(一)原理抗原在含有抗体的凝胶中进行电泳,在电场作用下,抗原向一个方向移动,在移动的过程中,逐步与凝胶中的抗体结合而沉淀呈火箭状。沉淀峰面积越大,说明抗原量越多,二者呈正相关,因此可用于抗原的定量测定。此法具有敏感性高、快速等优点。(二)材料与试剂1.0.05mol/L pH8.6巴比妥缓冲液配成2%的琼脂。2.抗原与抗体3.其它材料同免疫电泳。(三)操作方法1.将2%琼脂煮沸溶化后,放入60℃水浴箱中。2.将适量的抗体用0.05mol/L pH8.6巴比妥缓冲液稀释至琼脂同样的体积量,放入60℃水浴。3.将两者充分混合,立即倒成平板。4.琼脂板冷却后在一侧打孔,孔径3mm,孔距6mm。5.于孔内分别加入不同浓度的定量抗原。6.电泳 孔端接负板。电流强度3mA/cm(或电压10V/cm),电泳时间2h~10h。7.停止电泳,将琼脂板于生理盐水中浸泡24h,中间换液数次。8.染色、脱色、干燥同免疫电泳。9.抗体最适量的测定 将已知......阅读全文

电泳技术的研究历史

电泳(Electrophoresis)是指带电荷的粒子或分子在电场中移动的现象称为电泳。大分子的蛋白质,多肽,病毒粒子,甚至细胞或小分子的氨基酸,核苷等在电场中都可作定向泳动。1937年Tiselius成功地研制了界面电泳仪进行血清蛋白电泳,它是在一U型管的自由溶液中进行的,电泳后用光学系统使各种蛋

双向凝胶电泳技术

  双向凝胶电泳的原理是第一向基于蛋白质的等电点不同用等电聚焦分离,第二向则按分子量的不同用SDS-PAGE分离,把复杂蛋白混合物中的蛋白质在二维平面上分开。近年来经过多方面改进已成为研究蛋白质组的最有使用价值的核心方法。   分离蛋白质组所有蛋白的两个关键参数是其分辨率和可重复性。在目前情况下,

电泳技术的过程介绍

电泳是电泳涂料在阴阳两极,施加于电压作用下,带电荷的涂料离子移动到阴极,并与阴极表面所产生的碱性物质作用形成不溶解物,沉积于工件表面。它包括四个过程:电解(分解)在阴极反应最初为电解反应,生成氢气及氢氧根离子OH-,此反应造成阴极面形成一高碱性边界层,当阳离子与氢氧根作用成为不溶于水的物质,涂膜沉积

电泳技术的应用介绍

过程如何运作有机分子通常带有正电荷或负电荷,这会使它们对电流作出响应。带正电荷的分子向电场的负极迁移,带负电荷的分子向正极迁移。电荷较大的分子在施加电荷时趋向于更快地移动并传播更远。但是,它们也会因摩擦而减慢,而摩擦又受分子的大小和形状以及测试所用介质的影响。通过控制电流和测试介质提供的摩擦力,研究

电泳技术的应用介绍

1.聚丙烯酰胺凝胶电泳可用做蛋白质纯度的鉴定。聚丙烯酰胺凝胶电泳同时具有电荷效应和分子筛效应,可以将分子大小相同而带不同数量电荷的物质分离开,并且还可以将带相同数量电荷而分子大小不同的物质分离开。其分辨率远远高于一般层析方法和电泳方法,可以检出10-9~10-12g的样品,且重复性好,没有电渗作用。

酶免疫电泳技术

一,酶免疫电泳技术的原理抗原与抗体在琼脂糖凝胶中电泳时,在碱性缓冲液的条件下,抗原带负电,向正极移动。不同分子量或还不同电荷的抗原,在相同条件下,移动距离不等。这些在不同部位的抗原,再与相关抗体经扩散形成免疫沉淀线。酶免疫电泳技术中的抗原与抗体就是酶和它的相应抗体球蛋白。酶抗原与酶抗体形成的免疫复合

电泳技术的影响因素

1.电泳介质的pH值溶液的pH值决定带电物质的解离程度,也决定物质所带净电荷的多少。对蛋白质,氨基酸等类似两性电解质,pH值离等电点越远,粒子所带电荷越多,泳动速度越快,反之越慢。因此,当分离某一种混合物时,应选择一种能扩大各种蛋白质所带电荷量差别的pH值,以利于各种蛋白质的有效分离。为了保证电泳过

凝胶电泳技术介绍

一般琼脂糖凝胶电泳只能分离小于20kb的DNA。这是因为在琼脂糖凝胶中,DNA分子的有效直径超过凝胶孔径时,在电场作用下,迫使DNA变形挤过筛孔,而沿着泳动方向伸直,因而分子大小对迁移率影响不大。如此时改变电场方向,则DNA分子必须改变其构象,沿新的泳动方面伸直,而转向时间与DNA分子大小关系极为密

火箭免疫电泳

实验概要本文介绍了火箭免疫电泳的基本原理和主要操作流程。实验原理火箭免疫电泳(rocket  immunoelectrophoresis,RIEP)是将单向免疫扩散和电泳相结合的一种定量检测技术。电泳时,含于琼脂凝胶中的抗体不发生移动,而在电场的作用下促使样品中的抗原向正极泳动。当抗原与抗体分子达到

长征火箭创新纪录-中国新型火箭研制进展如何

中新社北京8月20日电 (马帅莎)8月20日,长征二号丁运载火箭成功发射遥感三十五号04组卫星。长征系列运载火箭仅用830余天,创造连续103次成功发射的新纪录。其间,中国长征系列火箭取得了哪些突破?新型火箭研制进展如何?未来如何规划?中国航天科技集团新闻发言人郝长峰作出解答。 北京时间2022

免疫电泳技术的基本类型

免疫电泳技术是电泳分析与沉淀反映的结合产物。这种技术有两大优点,一是加快反应的速度,二脸皮是将某些蛋白组分利用其带电荷的不同而将其分开,再分别与抗体反应,以此做更细微的分析。免疫电泳技术的种类有很多,基本类型有:1、免疫电泳2、放射免疫电泳3、对流免疫电泳4、 火箭免疫电泳 5、免疫固定电泳

什么是对流免疫电泳?

对流免疫电泳是免疫电泳技术中的一种,还包括免疫电泳、火箭电泳等方法。

电泳技术基本原理和类型

基本原理:免疫扩散与电泳技术相结合。类型:对流免疫电泳、火箭免疫电泳、免疫电泳、双向免疫电泳(交叉免疫电泳)

火箭总师与香港青年聊火箭和“上过太空的种子”

  也许是少年时代农村生活的经历,让龙乐豪院士多了一份与土地的亲近。这位从牛背上走下来的火箭总师,除了爱聊火箭,还爱聊“上过太空的种子”。  6月24日上午,香港大学百年讲堂陆佑堂里一场题为《长征火箭与中国航天》的报告会拉开帷幕。这是“时代精神耀香江”主题活动之一。台上开讲的是83岁白发苍苍的长征系

免疫分析法相关

  电泳技术  基本原理:免疫扩散与电泳技术相结合。  类型:对流免疫电泳、火箭免疫电泳、免疫电泳、双向免疫电泳(交叉免疫电泳)  对流免疫电泳  基本原理:多数蛋白质抗原在碱性缓冲液中带负电荷,在电泳时从负极向正极移动。抗体在碱性缓冲液只带微弱的负电 荷,且相对分子质量较大,电泳力较小,在琼脂电渗

凝胶电泳技术的特点

以淀粉胶、琼脂或琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶等作为支持介质的区带电泳法称为凝胶电泳。聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)除了浓缩效应、电荷效应外,还包括分子筛效应,普遍用于分离蛋白质及较小分子核酸。琼脂糖凝胶电泳适用于分离同工酶及其亚型、大分子核酸等。

凝胶电泳技术的特点

  以淀粉胶、琼脂或琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶等作为支持介质的区带电泳法称为凝胶电泳。  聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)除了浓缩效应、电荷效应外,还包括分子筛效应,普遍用于分离蛋白质及较小分子核酸。  琼脂糖凝胶电泳适用于分离同工酶及其亚型、大分子核酸等。

电泳技术(electrophoretic-techniques)简介1

电泳法,是指带电荷的供试品(蛋白质、核苷酸等)在惰性支持介质(如纸、醋酸纤维素、琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶等)中,于电场的作用下,向其对应的电极方向按各自的速度进行泳动,使组分分离成狭窄的区带,用适宜的检测方法记录其电泳区带图谱或计算其百分含量的方法。电泳技术的基本原理和分类在电场中,推动带电质点运

影响电泳技术的因素介绍

1.电泳介质的pH值溶液的pH值决定带电物质的解离程度,也决定物质所带净电荷的多少。对蛋白质,氨基酸等类似两性电解质,pH值离等电点越远,粒子所带电荷越多,泳动速度越快,反之越慢。因此,当分离某一种混合物时,应选择一种能扩大各种蛋白质所带电荷量差别的pH值,以利于各种蛋白质的有效分离。为了保证电泳过

电泳技术(electrophoretic-techniques)简介3

(三)等电聚焦电泳技术等电聚焦(isoelectric focusing,IEF)是60年代中期问世的一种利用有pH梯度的介质分离等电点不同的蛋白质的电泳技术。由于其分辨率可达0.01pH单位,因此特别适合于分离分子量相近而等电点不同的蛋白质组分。⒈IEF的基本原理 在IEF的电泳中,具有pH梯

电泳技术(electrophoretic-techniques)简介2

⒈材料与试剂 醋酸纤维素膜一般使用市售商品,常用的电泳缓冲液为pH8.6的巴比妥缓冲液,浓度在0.05-0.09mol/L。⒉操作要点⑴膜的预处理:必须于电泳前将膜片浸泡于缓冲液,浸透后,取出膜片并用滤纸吸去多余的缓冲液,不可吸得过干。⑵加样:样品用量依样品浓度、本身性质、染色方法及检测方法等因素决

蛋白质电泳技术2

Decrease toxicity of destain even more!The destain procedure can be made even less toxic by replacing the destaining solution completely with MilliQ w

凝胶电泳技术的特点

以淀粉胶、琼脂或琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶等作为支持介质的区带电泳法称为凝胶电泳。聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)除了浓缩效应、电荷效应外,还包括分子筛效应,普遍用于分离蛋白质及较小分子核酸。琼脂糖凝胶电泳适用于分离同工酶及其亚型、大分子核酸等。

电泳技术(electrophoretic-techniques)简介5

三、琼脂糖凝胶电泳法1.仪器装置电泳室及直流电源同纸电泳。2.试剂(1)醋酸-锂盐缓冲液(pH3.0)取冰醋酸50ml,加水800ml混合后,用氢氧化锂调节pH至3.0,再加水至1000ml。(2)甲苯胺蓝溶液取甲苯胺蓝0.1g,加水100ml使溶解。3.操作法(1)制胶取琼脂糖约0.2g,加水10

关于电泳技术的应用介绍

1.聚丙烯酰胺凝胶电泳可用做蛋白质纯度的鉴定。聚丙烯酰胺凝胶电泳同时具有电荷效应和分子筛效应,可以将分子大小相同而带不同数量电荷的物质分离开,并且还可以将带相同数量电荷而分子大小不同的物质分离开。其分辨率远远高于一般层析方法和电泳方法,可以检出10-9~10-12g的样品,且重复性好,没有电渗作用。

免疫电泳技术的优点

  (一)加快了沉淀反应的速度;  (二)电场规定了抗原抗体的扩散方向,使其集中,提高了灵敏度;  (三)可将某些蛋白组分根据其带电荷的不同而将其分开,再分别与抗体反应。

电泳技术的现状和发展

   早期的电泳技术是由瑞典Uppsala大学物理化学系Svedberg教授提出了荷电的胶体颗粒在电场中移动的现象称其为电泳(electrophoresis)。于1937年,收Arne Tiselius教授---诺贝尔奖金获得者,利用些电泳现象,发明了最早期的界面电泳(moving

电泳技术(electrophoretic-techniques)简介4

各电泳法,除另有规定外,照下述方法操作。一、纸电泳法1.仪器装置包括电泳室及直流电源两部分。常用的水平式电泳室装置如图,包括两个电泳槽A和一个可以密封的玻璃(或相应材料)盖B;两侧的电泳槽均用有机玻璃(或相应材料)板C分成两部分;外格装有铂电极(直径0.5~0.8cm)D;里格为可放滤纸E的有机玻璃

电泳技术RNA电泳操作步骤

  试剂:  琼脂糖(Agarose)、甲醛、甲酰胺、MOPS、EDTA、DEPC水。  步骤  一 、5 x MOPS-EDTA Buffer的配制(0.1 M MOPS pH7; 5mM EDTA; 10mM NaAc)  1. 称量20.9g的MOPS,置于1L烧杯中。  2. 加700mL

双向凝胶电泳技术应用

凝胶中蛋白的检测凝胶染色的目的是使其中的蛋白质能够被观察到。目前还没有通用的染色方法,只能在考虑多种因素如需要的灵敏度、线性范围、方便程度、费用、以及成像设备类型等基础上,结合实际进行选择。有时也可以将蛋白转膜后通过免疫印迹的方法来进行检测。图像采集和分析成像设备可以摄人图像,对凝胶图像以数字形式保