电泳技术RNA电泳操作步骤
试剂： 琼脂糖（Agarose）、甲醛、甲酰胺、MOPS、EDTA、DEPC水。 步骤 一 、5 x MOPS-EDTA Buffer的配制（0.1 M MOPS pH7； 5mM EDTA； 10mM NaAc） 1. 称量20.9g的MOPS，置于1L烧杯中。 2. 加700mL DEPC水溶解。 3. 用2N NaOH调节pH**7.0 4. 在上述溶液中加入10mL的1M的NaAC 5. 溶液中加入10mL的0.5M的EDTA pH=8.0 6. 加DEPC水定容**1L 7. 用0.45um滤膜过滤后避光保存 二、RNA样品处理方法 混合均匀后，70°C加热5min，迅速冷却**室温。（PCR仪操作） 三、甲醛变性琼脂糖凝胶的制备 加1g琼脂糖到31mL DEPC水中，另加10mL 5 x MOPS-EDTA Buffer煮沸溶解。加入DEPC水定容**41mL。将溶液冷却**60°C左......阅读全文
电泳技术RNA电泳操作步骤
试剂： 琼脂糖（Agarose）、甲醛、甲酰胺、MOPS、EDTA、DEPC水。 步骤 一 、5 x MOPS-EDTA Buffer的配制（0.1 M MOPS pH7； 5mM EDTA； 10mM NaAc） 1. 称量20.9g的MOPS，置于1L烧杯中。 2. 加700mL
RNA电泳操作步骤
试剂: 琼脂糖(Agarose)、甲醛、甲酰胺、MOPS、EDTA、DEPC水。 步骤 一 、5 x MOPS-EDTA Buffer的配制(0.1 M MOPS pH7; 5mM EDTA; 10mM NaAc) 1、称量20.9g的MOPS,置于1L烧杯中。 2. 加700mL DEPC水溶解
双向凝胶电泳技术的操作步骤
样品要求1、建议使用的蛋白质溶解体系为8M尿素/4%CHAPS /40mMTris（Base）/65mM DTT；2、样品浓度大于2 μg/ μl；样品制备双向电泳成功的关键在于建立一套有效的、可重复的样品制备方法。样品制备的影响因素包括蛋白质的溶解性、分子量、电荷数及等电点等。对于不同的样品性质及
血清蛋白质电泳技术操作步骤
1. 点样 将醋酸纤维薄膜 (2.5cm×8cm) 一条，浸于巴比妥缓冲液，待完全浸透后，取出轻轻夹于滤纸中，吸去多余的溶液，再于薄膜的无光泽面的一端 2.0cm 处，用小玻片蘸取少许血清，垂直印于膜上，待血清渗入薄膜后，以无光泽面向下，两端用数层浸湿的滤纸 ( 或纱布 ) 贴紧，加盖，平衡 2 ～
RNA凝胶电泳试验操作步骤
1、将制胶用具用70%乙醇冲洗一遍，晾干备用。 2、制胶：称取0.5g琼脂糖粉末，加入放有36.5mL的DEPC水（蒸馏水40ml）的锥形瓶中，加热使琼脂糖完全溶解。稍冷（60~70°）却后加入5ml的10x电泳缓冲液、8.5（9）ml的甲醛（+0.5μl溴化乙锭）。然后在胶槽中灌制凝胶，插好
RNA电泳鉴定步骤
一，准备工作 1，实验器具与材料: (1)移液枪:10ul (2)吸头:20ul (3)吸头台:放置 200ul 和 20ul 的吸头一个 (4)三角烧瓶:50ml 一个 (5)琼脂糖 2，实验器具的处理与准备 (1) 塑料制品:(包括吸头等) 送至
双向电泳操作步骤——双向电泳操作步骤
实验方法原理双向电泳（two-dimensional electrophoresis）是等电聚焦电泳和SDS-PAGE的组合，即先进行等电聚焦电泳（按照pI分离），然后再进行SDS-PAGE（按照分子大小），经染色得到的电泳图是个二维分布的蛋白质图。实验材料细胞样品试剂、试剂盒ddH2O溴酚蓝指示剂
电泳技术
电泳是指带粒子在电场中向与自身带相反电荷的电极移动的现象。例如蛋白质具 有两性电离性质。当蛋白质溶液的pH在蛋白质等电点的碱侧时，该蛋白质带负电荷， 在电场中向正极移动，相反则带正电荷，在电场中向负极移动，只有蛋白质溶液pH在 蛋白质的等电点时静电荷是零，在电场中不向任何一极移动。 电泳现象早在1
电泳技术
电泳技术简介 电泳法，是指带电荷的供试品（蛋白质、核苷酸等）在惰性支持介质（如纸、醋酸纤维素、琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶等）中，于电场的作用下，向其对应的电极方向按各自的速度进行泳动，使组分分离成狭窄的区带，用适宜的检测方法记录其电泳区带图谱或计算其百分含量的方法。 电泳技术的基本原理和分类
电泳技术
电泳法，是指带电荷的供试品（蛋白质、核苷酸等）在惰性支持介质（如纸、醋酸纤维素、琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶等）中，于电场的作用下，向其对应的电极方向按各自的速度进行泳动，使组分分离成狭窄的区带，用适宜的检测方法记录其电泳区带图谱或计算其百分含量的方法。 电泳技术的基本原理和分类 在电场中，推
单细胞凝胶电泳技术的试验步骤
试剂及材料：1）PBS2）0.8%正常熔点凝胶（PBS配制）3）0.6％低熔点凝胶（PBS配制）4）毛玻璃片5）盖玻片6）碱性裂解液（2.5mol/L NaCl;100mmol/L Na2EDTA;10mmol/L Tris;1%肌氨酸钠），临用前加10％DNMSO，1％Triton X-1007）
关于单细胞凝胶电泳技术的步骤介绍
1、单细胞凝胶电泳技术— 制备第一层胶：100ml 0.8%正常熔点胶，加盖盖玻片，4℃固化10min； 2、单细胞凝胶电泳技术— 制备第二层胶：轻轻地去除盖玻片，在第一层胶上滴加75ul含1×10000个细胞的0.6%低熔点胶（cell与凝胶比例为1：5），加盖盖玻片，4℃固化10min；
火箭电泳技术
（一）原理抗原在含有抗体的凝胶中进行电泳，在电场作用下，抗原向一个方向移动，在移动的过程中，逐步与凝胶中的抗体结合而沉淀呈火箭状。沉淀峰面积越大，说明抗原量越多，二者呈正相关，因此可用于抗原的定量测定。此法具有敏感性高、快速等优点。（二）材料与试剂1．0.05mol/L pH8.6巴比妥缓冲液配成2
电泳技术概述
电泳是指带电颗粒在电场的作用下发生迁移的过程。许多重要的生物分子，如氨基酸、多肽、蛋白质、核苷酸、核酸等都具有可电离基团，它们在某个特定的pH值下可以带正电或负电，在电场的作用下，这些带电分子会向着与其所带电荷极性相反的电极方向移动。电泳技术就是利用在电场的作用下，由于待分离样品中各种分子带电性质以
火箭电泳技术
（一）原理 抗原在含有抗体的凝胶中进行电泳，在电场作用下，抗原向一个方向移动，在移动的过程中，逐步与凝胶中的抗体结合而沉淀呈火箭状。沉淀峰面积越大，说明抗原量越多，二者呈正相关，因此可用于抗原的定量测定。此法具有敏感性高、快速等优点。 （二）材料与试剂1．0.05mol/L pH8.6巴比妥缓
电泳技术概述
电泳是指带电颗粒在电场的作用下发生迁移的过程。许多重要的生物分子，如氨基酸、多肽、蛋白质、核苷酸、核酸等都具有可电离基团，它们在某个特定的pH值下可以带正电或负电，在电场的作用下，这些带电分子会向着与其所带电荷极性相反的电极方向移动。电泳技术就是利用在电场的作用下，由于待分离样品中各种分子带电性质以
双向电泳操作步骤
水化上样( 被动上样)1. 从冰箱中取出 IPG 胶条，室温放置 10min。2. 沿水化盘槽的边缘从左向右线性加入样品，槽两端各 1cm 左右不加样，中间的样品液一定要连贯。注意：不要产生气泡，否则会影响胶条中蛋白质的分布。3. 用镊子轻轻撕去 IPG 胶条上的保护层。注意：碱性端较脆弱，应小心操
双向电泳操作步骤
实验材料 细胞样品试剂、试剂盒 ddH2O溴酚蓝指示剂矿物油丙烯酰胺乙醇MilliQ 水饱和正丁醇SDS琼脂糖仪器、耗材 样品水化盘冰箱厚滤纸摇床电泳槽电泳仪镊子二向电泳制冷仪手套实验步骤 1. 样品制备。2. 第一向等电聚焦。3. 第二向SDS电泳。4. 凝胶的染色。5. 凝胶扫描和分析
双向电泳操作步骤
一、等电聚焦 1. 从冰箱中取-20℃冷冻保存的水化上样缓冲液（I）（不含DTT，不含Bio-Lyte）一小管（1ml/管），置室温溶解。 2. 在小管中加入0.01g DTT， Bio-Lyte 4-6、5-7各2.5ml，充分混匀。 3. 从小管中取出400ml水化上样缓冲
双向电泳操作步骤
双向电泳操作步骤 第一向凝胶 第二向凝胶 组织来源的蛋白质样品的溶解和制备 实验方法原理 双向电泳（two-dimensiona
双向凝胶电泳操作步骤
样品要求1、建议使用的蛋白质溶解体系为8M尿素/4%CHAPS /40mMTris（Base）/65mM DTT；2、样品浓度大于2 μg/ μl；样品制备双向电泳成功的关键在于建立一套有效的、可重复的样品制备方法。样品制备的影响因素包括蛋白质的溶解性、分子量、电荷数及等电点等。对于不同的样品性质及
双向电泳完整操作步骤
（一）第一向等电聚焦1. 从冰箱中取-20℃冷冻保存的水化上样缓冲液（I）（不含DTT，不含Bio-Lyte）一小管（1ml/管），置室温溶解。2. 在小管中加入0.01g DTT， Bio-Lyte 4-6、5-7各2.5ml，充分混匀。3. 从小管中取出400ml水化上样缓冲液，加入100ml样
双向电泳的操作步骤
第一向等电聚焦⒈ 从冰箱中取-20℃冷冻保存的水化上样缓冲液（I）（不含DTT，不含IPG buffer）一小管（1ml/管），置室温溶解。⒉ 在小管中加入0.01g DTT， 0.5% 对应胶条pH范围的IPG buffer，充分混匀。⒊ 从小管中取出400微升水化上样缓冲液，加入100微升样品（
双向电泳的操作步骤
第一向等电聚焦⒈ 从冰箱中取-20℃冷冻保存的水化上样缓冲液（I）（不含DTT，不含IPG buffer）一小管（1ml/管），置室温溶解。⒉ 在小管中加入0.01g DTT， 0.5% 对应胶条pH范围的IPG buffer，充分混匀。⒊ 从小管中取出400微升水化上样缓冲液，加入100微升样品（
双向电泳完整操作步骤
（一）第一向等电聚焦1. 从冰箱中取-20℃冷冻保存的水化上样缓冲液（I）（不含DTT，不含Bio-Lyte）一小管（1ml/管），置室温溶解。2. 在小管中加入0.01g DTT， Bio-Lyte 4-6、5-7各2.5ml，充分混匀。3. 从小管中取出400ml水化上样缓冲液，加入100ml样
免疫火箭电泳技术
一、原理 定量的抗原加入到含有一定量的相应抗体的琼脂糖凝胶中，在电场作用下，引起抗原抗体的迁移和相互反应，当比例合适时形成肉眼可见的沉淀峰，由于电泳继续进行，样品孔不断有抗原移向抗原抗体复合物的沉淀峰，因抗原过剩使沉淀溶解而在前面又形成新的抗原抗体复合物的沉淀峰。如此反复向前，直到再无游离抗原而反应
电泳技术简单介绍
电泳技术原理（以琼脂糖凝胶电泳为例） 1、首先介绍使用的载体--琼脂糖。 琼脂糖是线性的多聚物，基本结构是1,3连结的β-D-半乳呋喃糖和1,4连结的3,6-脱水α-L-半乳呋喃糖。琼脂果胶是由许多更小的分子组成的异质混合物。琼脂糖在水中一般加热到90℃以上溶解，温度下降到35-40℃时形
蛋白电泳技术手册
在蛋白电泳过程中，配胶麻烦、电泳耗时长、需要反复调试凝胶浓度是我们面临的三个棘手问题。EZ Protein系列蛋白电泳产品的克服了上述问题。2-5分钟配胶，浓缩胶、分离胶一次成型；25分钟恒压完成电泳；10-250KD蛋白质一块胶即可分离，免去了反复调整胶浓度的麻烦。独有配方，本产品不添加T
转移电泳技术介绍
生物化学与分子生物学的研究工作经常需要对电泳分离后的DNA进行分子杂交，但琼脂糖不适合于进行杂交操作，1975年，Southern创造了将DNA区带原位转移到硝酸基纤维素膜（NC膜）上，再进行杂交的方法，被称为Southern印迹法。随后，Alwine等将类似方法用于RNA印迹，被戏称为Northe
免疫火箭电泳技术
一、原理定量的抗原加入到含有一定量的相应抗体的琼脂糖凝胶中，在电场作用下，引起抗原抗体的迁移和相互反应，当比例合适时形成肉眼可见的沉淀峰，由于电泳继续进行，样品孔不断有抗原移向抗原抗体复合物的沉淀峰，因抗原过剩使沉淀溶解而在前面又形成新的抗原抗体复合物的沉淀峰。如此反复向前，直到再无游离抗原而反应终