标本的早期采集时间
标本的早期采集时间是检验主管技师考试辅导的部分内容，以下是医学教育网对这块内容的整理，希望对考生有所帮助： 早期采集：采集时间最好是病程早期、急性期或症状典型时，而且必须在使用抗生素或其他抗菌药物之前采集。......阅读全文
标本的采集与处理原则
采集原则 ①在最适宜的时间收集标本，最好在使用抗生素之前或感染急性期采集。②采集标本要有代表性和针对性，不同情况应区别对待，适宜地采取相应的方法收集标本，如尿液标本疑为厌氧菌感染时，应行耻骨上缘穿刺术取膀胱尿培养。③采集标本必须来自实际感染的部位，严格无菌操作尽可能避免外源性污染。④收集标本应当使用
尿液标本的采集与处理
1、目的 有效地指导尿液标本的采集、接收及保存，使标本中的待测成分不受影响，保证检测结果准确可靠。2、检验项目 2.1尿液常规检测：尿常规化学分析(包括pH、比重、蛋白、葡萄糖、潜血、白细胞酯酶、胆红素、尿胆原、酮体、亚硝酸盐)、尿沉渣镜检、尿有形成分分析。 2.2尿液生化检测：淀粉酶
粪便标本的采集和送检
粪便检验是临床常规检测中最常用的项目之一。它提供临床医生肉眼所不能看到的病人状况，对了解是否有肠道致病菌感染、肝脏、胆道、胰腺、胃肠道及附属腺体的消化吸收功能、是否有炎症、出血、溃疡及寄生虫感染、消化道肿瘤的筛查及黄疸的诊断与鉴别诊断均有重要的临床价值。自从它的诞生就存在着诸多问题，提高大便检验质量
痰标本的采集和处理
一、检查项目 痰液的细菌培养、真菌培养、结核菌培养、真菌涂片、结核菌涂片。 二、标本采集 【标本采集前的注意事项】 应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。 【标本送检指征】 1.咳嗽、咳痰：痰液可为脓性、血性、铁锈色或红棕色胶胨样痰。2.咯2.血：肺结核病
实验动物标本的采集方法
实验概要本文介绍了实验动物标本(脑脊液、骨髓、消化液、腹水、胸水、尿液等)的采集方法。实验步骤1. 脑脊液的采集 1) 脊髓穿刺法狗、兔脑脊液的采集通常采取脊髓穿刺法。穿刺部位在两髂连线中点稍下方第七腰椎间隙。动物轻度麻醉后，侧卧位固定，使头部及尾部向腰部尽量弯曲，剪去第七腰椎周围的被毛。消毒
正确的血标本采集顺序
血液标本的采集包括静脉血标本采集和动脉血标本的采集。下面介绍静脉血标本采集顺序，真空采血管是目前最佳的静脉血采集方法。采血顺序是:核对医嘱、检验申请单、标签无误后，将标签贴于标本容器上，床旁核对病人，选择合适的静脉进行抽血，常规消毒皮肤，直径不少于5cm，系止血带，二次核对病人，取下真空采血针护针帽
血液标本的采集方法分为
血液检验标本分为全血、血浆、血清等。全血标本主要用于临床血液学检查,例如血细胞计数和分类、形态学检查等;血浆标本适合内分泌激素、血栓和止血检测血清标本多适合于临床化学和免疫学的检测。按照血标本采集部位的不同，分为静脉血、动脉血和毛细血管血三种。绝大多数检查采用静脉血,少数检查如血气分析、乳酸和丙酮酸
动脉血气标本采集
一、抗凝剂的配制首先推荐使用市场上有售的专用采血针，愿意自己配制抗凝采血针的用户，可以用0.9%NS50ml+肝素钠针剂2支（12500U）配制成肝素稀释液备用，并做好无菌储藏。每抽血气前，用2ml注射器抽取肝素稀释液2ml，完全湿润整个针管后弃去肝素液，残留在针头及针管头部死腔内的肝素液即可起到抗
脑脊液检查之标本采集
脑脊液由临床医师进行腰椎穿刺采集，必要时可从小脑延脑池或侧脑室穿刺获得。穿刺后应由医师用压力测定，正常人脑脊液压力卧位为0.78-1.76kpa（80-180mmH 2O），儿童为0.4-1.0kpa（40-100mmH2O）。任何病变使脑组织体积或脑脊液量增加时，脑脊液压力均可升高。待压力测定后将
血液标本采集和处理
血液标本的采集是分析前质量控制的重在环节，可分为毛细血管采血法和静脉采血法。需要血量较少的检验，如手工法或半自动血细胞分析仪血细胞计数，常用毛细管采血法。需血量较多检验，如红细胞比积、临床生化检验、全自动血细胞分析血细胞计数一般用静脉采血法。特别是全自动血细胞分析仪，无论仪器进样品多少，为防止血样中
常见尿标本采集类型
1.晨尿：即清晨起床后第一次排尿时收集的尿标本，即为首次晨尿。这种标本尿较为浓缩，可用于肾脏浓缩能力评价。首次晨尿常偏酸性，其中的血细胞、上皮细胞、病理细胞、管形或管形等有形成分，以及如人绒毛膜促性腺激素（HCG）等的浓度较高。但夜尿在膀胱内停留时间过长，硝酸盐及葡萄糖易被分解，不利于检出在酸性环
动脉血气标本采集
一、抗凝剂的配制 首先推荐使用市场上有售的专用采血针，愿意自己配制抗凝采血针的用户，可以用0.9%NS50ml+肝素钠针剂2支（12500U）配制成肝素稀释液备用，并做好无菌储藏。每抽血气前，用2ml注射器抽取肝素稀释液2ml，完全湿润整个针管后弃去肝素液，残留在针头及针管头部死腔内的肝素液即可
检验标本采集手册（四）
三、标本保存和运送标本保存和运送是检验质量保证的重要环节之一。由于采集的标本受各种因素的影响，可能使检验结果受或大或小的误差，因此必须正确掌握标本保存和运送。(1) 采样后须立即送检的常规项目：血氨、血沉、血气分析、酸性磷酸酶、乳酸以及各种细菌培养，特别是厌氧菌培养。(2) 采样后0.5h内送检的常
检验标本采集手册（二）
二、标本采集 标本采集是直接关系检验结果的基本要素，如果标本采集不当，即使最好的仪器设备也难以弥补在采集标本时引入的误差和错误。现将各种标本的采集要点分述如下： (一) 血液标本 采血管分普通管、抗凝管和促凝管三类。常用抗凝剂有草酸钾、草酸钠、枸橼酸钠、EDTA-K2或EDTA-Na2、肝素、
脑脊液标本采集与处理
留取脑脊液标本于3个无菌试管中，每个试管1～2ml。第一管做病原生物学检验；第二管做化学和免疫学检验；第三管做理学和细胞学检验。标本采集后应立即送检，并于1h内检验完毕。标本放置过久，可造成细胞破坏、葡萄糖等物质分解、细菌溶解等，影响检验结果。
检验标本采集手册（一）
一、病人准备 1．病人状态 一般需在安静状态下采集标本，因运动能影响许多项目的测定结果。活动的影响可分暂时和持续性两类。暂时性影响如使血浆脂肪酸含量减少；丙氨酸、乳酸含量增高。持续性影响，如激烈运动后使CK、LDH、ALT、AST和GLU等的测定值升高，有些恢复较慢，如ALT在停止运动1h后测定
痰培养标本采集须知
痰培养的目的事检查痰液中的致病菌。可根据需要进行需氧菌培养、厌氧菌培养、结核杆菌培养、或真菌培养，用于呼吸道感染的病因诊断。痰培养的理论依据是致病菌应高于污染菌，据此，对痰液进行定量培养和半定量培养。常与药物敏感试验一起进行。标本采集须知：1、自然咳痰法：患者早上起床后用清水漱口，不要刷牙，立即从下
脑脊液检查之标本采集
脑脊液由 临床医师进行腰椎穿刺采集，必要时可从小脑延脑池或侧脑室穿刺获得。穿刺后应由医师用压力测定，正常人脑脊液压力卧位为0.78-1.76kpa（80-180mmH 2O），儿童为0.4-1.0kpa（40-100mmH2O）。任何病变使脑组织体积或脑脊液量增加时，脑脊液压力均可升高。待压力测定
标本采集常见错误分析
送检标本的质量控制包括分析前、分析中、分析后三个主要过程的质量管理。大多数不满意的检验报告单可溯源到标本质量不符合要求，而分析前标本的质量控制对检验结果的可靠性有至关重要的影响，标本采集是影响标本质量最重要的因素之一。我们在加强与临床、护理沟通的同时，坚持标本的核实验收和不合格标本退回制
尿液标本采集及保存
一、尿液标本采集为保证尿液检查结果的准确性，必须正确留取标本：①避免阴道分泌物、月经血、 粪便等污染；②无干扰化学物质 （如表面活性剂、消毒剂） 混入；③尿标本收集后及时 送检及检查 （2h 内），以免发生细菌繁殖、蛋白变性、细胞溶解等；④尿标本采集后应 避免强光照射，以免尿胆原等物质因光照分解或氧
怎样采集痰培养标本？
医生开出痰标本培养的目的是了解下呼吸道细菌感染的情况，因此采集下呼吸道标本，防止污染是关键，如果采集不当，培养了非感染细菌，则不但失去了培养的价值，反而延误治疗。 一. 痰标本的来源：下呼吸道痰、气管抽吸物（TA）、支气管肺灌洗吸出液、支气管刷子、气管内管、肺穿刺或活组织等。 二. 使用
检验标本采集手册（三）
(二) 尿液标本 根据采集时间可分为清晨空腹尿、随机尿、计时尿(2h、3h、12h、24h等)、午后尿、餐后尿、症状典型时尿等。(1) 晨尿为住院病人留尿的主要方法，早晨起床后收集第一次尿，可用尿常规检验。(2) 随机尿多为门诊就诊病人的留尿检验方法。(3) 餐后尿为收集进餐后2h尿，主要用于
脑脊液标本采集及处理
腰椎穿刺成功后立即测定脑脊液压力，然后留取脑脊液标本于3个无菌试管中，每个试管1～2ml。第一管做病原生物学检验，第二管做化学和免疫学检验，第三管做理学和细胞学检验。标本采集后应立即送检，并于1h内检验完毕。因标本放置过久，可造成细胞破坏、葡萄糖等物质分解、细菌溶解等，影响检验结果。脑脊液标本应尽量
尿液标本采集标本容器准备有哪些要求？
一般应能容纳50ml以上尿的容积；必须干燥、清洁，无污染物、无渗漏、无化学物质。尿液常规检验每次留取尿标本的量不应少于15ml
植物标本的采集和制作实验——其他标本的制作
实验材料植物材料试剂、试剂盒防腐剂仪器、耗材标本盒实验步骤有些不宜制作或腊叶标本上台纸的植物种类或器官，可以按以下方法制或标本：1 常绿、针叶带球果的标本，如油松，可待其干燥后托以棉花放入标本盒内。地衣、苔鲜或过小的标本，也可采用同样方法剖成标本。2 不宜压制的果实、花及含水分高的枝叶或地下部分（如
实验动物实验标本的采集实验——实验动物脑脊液采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 狗、兔脑脊液的采集：通常采取脊髓穿刺法，穿刺部位在两髂连线中点稍下方第七腰椎间隙。动物麻醉后侧卧位固定，头尾部尽量弯向腰部，去被毛。消毒后一手固定穿刺部位的皮肤，腰穿针垂直刺入，当有落空感及动物的后肢跳动时，针已达椎管内，抽去针芯，即
实验动物实验标本的采集实验——实验动物尿液采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒水仪器、耗材收集器实验步骤尿液的采集 常用的采集方法较多，一般在实验前需给动物灌服一定量的水。(1) 代谢笼法：此法较常用，适用于大、小鼠。将动物放在特制的笼内。一般需收集 5 小时以上的尿液，最后取平均值。(2) 导尿法：常用于雄性兔、狗。动物轻度麻醉后，固定于手术台上
痰液标本采集的常用方法
留取痰标本的方法有自然咯痰，气管穿刺吸取、经支气管镜抽取等。采二者操作复杂且有一定的痛苦，故仍发自然咯痰为主要留取方法：但痰液要求新鲜，尤其以做细胞学检查者更为重要。留痰时患者先用清水漱口数次，然后用力咯出气管深处痰，留于玻璃、塑料小杯内或涂蜡的纸盒中。医学教育网|搜集整理对于无痰或少痰患者可用经4
酶标本的采集、处理与贮存
采取血液标本时最容易引起实验室误差的是抽血不当，或者实验室急于分离血清，因此体外溶血。由于大部分酶在细胞内外浓度差异明显，少量血细胞的破坏就有可能引起血清中酶明显升高。最明显例子是LD，红细胞中LD约为血清的100倍，这样，只要有轻度溶血，如1/100红细胞破坏，就足以使血清中LD升高一倍，常使原
酶标本的采集、处理与贮存
采取血液标本时最容易引起实验室误差的是抽血不当，或者实验室急于分离血清，因此体外溶血。由于大部分酶在细胞内外浓度差异明显，少量血细胞的破坏就有可能引起血清中酶明显升高。最明显例子是LD，红细胞中LD约为血清的100倍，这样，只要有轻度溶血，如1/100红细胞破坏，就足以使血清中LD升高一倍，常使原为