植物组织中淀粉含量的测定
【原理】 淀粉是由葡萄糖残基组成的多糖，在酸性条件下加热使其水解成葡萄糖，然后在浓硫酸的作用下，使单糖脱水生成糠醛类化合物，利用苯酚或蒽酮试剂与糠醛化合物的显色反应，即可进行比色测定。 【 仪器 与用具】 电子天平；容量瓶：100ml×4，50ml×2；漏斗；小试管若干支；电炉；刻度吸管0.5ml×1，2.0ml×3，5ml×4；分光光度计；记号笔。 【 试剂 】 （1）浓硫酸（比重1.84）； （2）9.2mol/L HClO 4 ； （3）2%蒽酮 试剂 ：同蒽酮法（或9%苯酚，同方法一）； （4）淀粉标准液：准确称取100mg纯淀粉，放入100ml容量瓶中，加60～70ml热蒸馏水，放入沸水浴中煮沸0.5h，冷却后加蒸馏水稀释至刻度，则每ml含淀粉1mg，吸取此液5.0ml，加蒸馏水稀释至......阅读全文
植物组织小液流法水势测定实验
实验材料小麦 玉米 甘蓝
植物无糖组织培养技术1
植物无糖组培快繁技术（Sugar-free micropropagation）又称为光自养微繁殖技术（Photoautotrophic micropropagation）是指在植物组织培养中改变碳源的种类，以CO2代替糖作为植物体的碳源，通过输入CO2气体作为碳源，并控制影响试管苗生长发育的环境
植物无糖组织培养技术2
3.植物无糖组培快繁技术的限制因素（1）需要相对复杂的微环境（容器内环境）控制的知识和技巧植物无糖组织培养微繁殖的研究和试验已经非常成功，但实际应用还是受到一定的限制，其中的一个主要原因就是需要应用微环境控制方面专业的技术。没有充分理解容器中小植株的生理特性，容器内的环境，容器外的环境，培养容器的物
液氮能将植物组织破碎到什么程度
外观是干燥，粉末状固体，破碎程度很高，各类细胞器肯定是不会完整了，但是这程度怎么形容呢。。。提DNA,RNA时可能会用液氮研磨，也就是说不会对遗传物质造成很大损害
简介植物组织培养的技术原理
植物组织培养即植物无菌培养技术，又称离体培养，是根据植物细胞具有全能性的理论，利用植物体离体的器官(如根、茎、叶、茎尖、花、果实等）、组织（如形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等）或细胞（如大孢子、小孢子、体细胞等）以及原生质体,在无菌和适宜的人工培养基及温度等人工条件下，能诱导出愈伤组织、不定
简介植物组织培养的培养方法
1、非试管微组织快繁 非试管微组织快繁技术是将外植体（一般要求带一叶一芽）放置在室内外普通沙子培养基上进行培养，利用植物腋芽自然倍增达到快速繁殖的目的。一般植物7～15天可以生长出根系。此技术投资低，操作环节少。 2、试管组织培养 试管组织培养是将外植体（即离体组织、器官或细胞）放置在组培
植物组织培养的培养步骤介绍
第一步，将采来的植物材料除去不用的部分，将需要的部分仔细洗干净，如用适当的刷子等刷洗。把材料切割成适当大小，即灭菌容器能放入为宜。置自来水龙头下流水冲洗几分钟至数小时，冲洗时间视材料清洁程度而宜。易漂浮或细小的材料，可装入纱布袋内冲洗。流水冲洗在污染严重时特别有用。洗时可加入洗衣粉清洗，然后再用
植物组织培养的培养优点介绍
占用空间小，不受地区、季节限制。 培养脱毒作物 培养周期短 可用组培中的愈伤组织制取特殊的生化制品 可短时间大量繁殖，用于拯救濒危植物 可诱导之分化成需要的器官，如根和芽 解决有些植物产种子少或无的难题， 不存在变异，可保持原母本的一切遗传特征 投资少，经济效益高 繁殖方式多，
植物组织培养技术的相关介绍
植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论，近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。植物的组织培养广义又叫离体培养，指从植物体分离出符合需要的组织、器官或细胞，原生质体等，通过无菌操作，在无菌条件下接种在含有各种营养物质及植物激素的培养基上进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其
简述植物组织培养技术的特点
1、培养条件可以人为控制 组培采用的植物材料完全是在人为提供的培养基和小气候环境条件下进行生长，摆脱了大自然中四季、昼夜的变化以及灾害性气候的不利影响，且条件均一，对植物生长极为有利，便于稳定地进行周年培养生产。 2、生长周期短，繁殖率高 组培是由于人为控制培养条件，根据不同植物不同部位的
植物组织水势用什么方法测定
植物组织水势测定,原理 将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中,当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时,则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势.因溶液的浓度是已知的,可以根据公式算出其渗透...
小液流法测定植物组织水势
实验步骤1.稀释1.00mol/L的蔗糖溶液，配制0.50、0.40、0.30、0.20、0.10、0.051mol/L一系列梯度的蔗糖溶液各10ml，充分摇匀，标号1~6并盖上盖子，从中各取4mL分别加入新的试管中， 对应标号并盖上盖子。2.切取若干萝卜片（约1mm厚度），在1~6号装有4mL蔗糖
植物组织水势的测定小液流法
植物组织水势的测定小液流法如下：植物组织的水分状况可用水势（代表水的能量水平）来表示。植物组织的水势愈低，则吸水能力愈强。反之，水势愈高，则吸水能力愈弱而供水给其它较缺水细胞的能力愈强。不同植物，不同部位，不同年龄及不同时期的组织，水势都有一定差异，土壤条件及大气条件等外界因素对植物组织的水势也有很
植物组织培养的培养分类
1、胚胎培养指以从胚珠中分离出来的成熟或未成熟胚为外植体的离体无菌培养。2、器官培养指以植物的根、茎、叶、花、果等器官为外植体的离体无菌培养，如根的根尖和切段，茎的茎尖、茎节和切段，叶的叶原基、叶片、叶柄、叶鞘和子叶，花器的花瓣、雄蕊（花药、花丝）、胚珠、子房、果实等的离体无菌培养。3、组织培养指以
植物组织培养培养方法的特点
1、培养条件可以人为控制组培采用的植物材料完全是在人为提供的培养基和小气候环境条件下进行生长，摆脱了大自然中四季、昼夜的变化以及灾害性气候的不利影响，且条件均一，对植物生长极为有利，便于稳定地进行周年培养生产。2、生长周期短，繁殖率高组培是由于人为控制培养条件，根据不同植物不同部位的不同要求而提供不
植物组织培养所需仪器试剂
试剂乙醇。吲哚乙酸（IAA）或 2,4 – D（生长素类似物）。氯化汞（升汞）或次氯酸钠。6- 苄基氨基腺嘌呤（6-BA）MS 培养基0.1 mol/L NaOH与 0.1 mol/L HCl配制培养基（1）愈伤组织诱导培养基： MS 培养基（蔗糖含量为 10 g/L ，2,4 – D 含量为 2
植物组织中蔗糖酶活力的测定
一、目的 了解植物 组织中提取蔗糖酶的方法，掌握蔗糖酶活力测定的原理。二、原理 本实验以Nelson 方法测定酶活力，其原理是：蔗糖酶可将非还原性的蔗糖水解为葡萄糖和果糖，而葡萄糖作为还原糖含有的自由醛基，在碱性溶液中将Cu 2+ 还原，还原糖本身被氧化成羟酸；砷钼酸试剂与氧化亚铜生成蓝色复合物（
植物组织水势的测定（小液流法）
一、 原理 将植物 组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。因溶液的浓度是已知的，可以根据公式算出其渗透压，取其负值，为溶液的渗透势（ψπ），即代表植物的水势（ψw）（waterpotential）。 ψw
植物组织水势的测定（小液流法）
一、 原理将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。因溶液的浓度是已知的，可以根据公式算出其渗透压，取其负值，为溶液的渗透势（ψπ），即代表植物的水势（ψw）（waterpotential）。ψw＝ψπ＝
植物组织水势的测定（小液流法）
实验概要水势（water potential）表示水分的化学势,象电流之由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处(代表水的能量水平)。植物体组织之间，细胞之间以及植物体及环境间的水分移动方向都由水势差决定。当植物细胞或组织放在溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势(溶质势)，则组织吸水
植物组织培养中的无菌技术
一、目的要求 通过实验掌握植物组织培养中的无菌操作技术。学习培养基的配制及灭菌，掌握植物外植体表面消毒的常规方法。 二、基本原理近年来，植物组织培养作为一种研究技术已被广泛。植物组织培养是应用无菌操作方法培养植物器官或组织地任何一部分，甚至单个细胞的观察。植物组织培养中的无菌
植物组织小液流法水势测定实验
实验材料 小麦玉米甘蓝棉花叶片马铃薯块茎甜菜块根试剂、试剂盒 CaCl2溶液亚甲蓝粉末仪器、耗材 试管架解剖针指形试管具塞刻度试管移液管毛细滴管实验步骤 一、材料与设备材料：小麦、玉米、甘蓝、棉花叶片或马铃薯块茎、甜菜块根每组：10 ml 指形试管7支、10ｍｌ具塞刻度试管7支、5 ml 移液管1
植物组织和细胞显微化学染色_检测植物细胞中核酸方法
实验步骤(1)脱氧核糖核酸：孚尔根染色法是检定细胞中 DNA 的一种常用方法，主要染色液为希夫试剂。切片材料加入蒸馏水后，在盐酸 (1 mol/L) 中 60℃下保温 5-15 min, 转入室温的盐酸中1min, 蒸馏水清洗，希夫试剂染色 1-5 h, 漂洗液中漂洗 3 次，每次 2-10min,
植物组织培养基成分有哪些？
植物组织培养基成分主要有5类，分别是无机营养物、碳源、维生素、有机附加物、生长调节物质。 1、无机营养物 无机营养物主要由大量元素和微量元素两部分组成。大量元素中，氮源通常有硝态氮或铵态氮，但在培养基中用硝态氮的较多，也有将硝态氮和铵态氮混合使用的。磷和硫则常用磷酸盐和硫酸盐来提供。钾是培养基中
植物组织培养基成分有哪些？
植物组织培养基大致由6种成分组成：（1）糖类，（2）多种无机盐类，（3）微量元素，（4）氨基酸、酰胺、嘌呤：（5）维生素、生长素。此外，有些培养基还可添加天然的汁液，如椰子汁、酵母提取液、水解酪蛋白、麦芽浸出液等，培养基中如加入0．5～1%的琼脂即为静止培养的固体培养基，否则为悬浮培养的液体培养
植物组织中自由水含量的测定实验
实验方法原理植物组织在与高浓度的糖液接触时，束缚水因被原生质胶体颗粒吸附而留在组织中；自由水则因未被原生质胶体颗粒吸附而顺着水势梯度外渗到糖液中，使糖液的浓度降低。组织浸泡在糖液中一定时间后，根据糖液浓度降低的情况可算出组织中自由水的含量，而束缚水含量则可通过烘干植物组织计算出总含水量，再减去自由水
植物组织总含水量的测定实验
实验步骤一、烘干称重法1. 取称量瓶3个，依次编号，分别称取空瓶重。2. 取上述相同的植物材料，用打孔器钻取圆片。立即放入称量瓶中（每瓶随机取样放50片），加盖，准确称出被测样品鲜重（如果被测植物是块茎，切成约1㎜ 厚度圆片，准确称取1 g样品测定）。3. 把3瓶称重后的样品放入烘箱100-105℃
植物组织培养苗之污染与检测
一、在组织培养中污染来源1. 植物本身具有：（1）植物病原菌 有些作物的病害已被透彻研究，因此在大量繁殖时，可立即检查出来，但有些则否，造成若有污染时，不知来源为何。（2）和植物有关的菌类 有修植物本身便会和一些菌种共生，或是寄生于植物内部。 2. 植物所带入的污染：内在污染源许多植物表面或大气中生
植物组织培养与新品种复制
组织培养是克隆细胞和组织的过程。迄今，植物组织培养已取得了许多卓越的成果，并被广泛推广和利用。通过植物组织培养，我们可以从植物体的一部分体细胞快速培育出大量和母体植物相同的植株。另一方面，植物组织培养技术也为我们快速开发和培育新品种创造了条件。一、组织培养与植物快速繁殖组织培养是一种利用人工培养基（
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植物无糖组培快繁技术（Sugar-free micropropagation）又称为光自养微繁衍技术（Photoautotrophic micropropagation）是指在植物组织培育中改动碳源的品种，以CO2替代糖作为植物体的碳源，经过输入CO2气体作为碳源，并控制影响试管苗生长发育的环境