植物组织中纤维素含量的测定
纤维素是植物 细胞壁的主要成分之一，纤维素含量的多少，关系到植物细胞机械组织发达与否。因而影响作物的抗倒伏，抗病虫害能力的强弱。测定粮食、蔬菜及纤维作物产品中纤维素含量是鉴定其品质好坏的重要指标。 一、原理 纤维素（Cell ulose）为β－葡萄糖残基组成的多糖，在酸性条件下加热能分解成β－葡萄糖。β－葡萄糖在强酸作用下，可脱水生成β－糠醛类化合物。β－糠醛类化合物与蒽酮脱水缩合，生成黄色的糠醛衍生物。颜色的深浅可间接定量测定纤维素含量。 二．材料、仪器设备 及试剂 （一）材料：烘干的米、面粉或风干的棉、麻纤维。 （二）仪器设备：1. 小试管；2. 量筒；3. 烧杯；4. 移液管；5. 容量瓶；6. 布氏漏斗；7. 分析天平；8. 水浴锅；9. 电炉；10. 分光光度计。 （三）试剂：1. 60％H2SO4溶液；2. 浓H2SO4（AR）；3. 2％蒽酮试剂：将2g蒽酮溶解于10......阅读全文
植物成熟组织观察实验（四）
四、输导组织 1. 木质部中的输导组织取南瓜茎纵切片置低倍镜下观察，切片中央两侧有一些细胞壁被染成红色具有各种加厚花纹的成中管状细胞，它们是多种类型的导管（组织）。每个导管分子，均以端壁形成的穿孔相互连接，上下贯通。仔细观察，臂径较小，其壁具有螺旋形加厚并木质化的为螺纹导管，管径较大，具有网状加厚
植物的组织培养技术
一． 实验目的： 1. 学习固体培养基的配制； 2. 掌握胡萝卜愈伤组织的诱导方法。 二． 实验原理： 植物组织培养理论依据是植物细胞具有全能性。 植物组织培养是指用无菌培养的方法，在人工制备的培养基上培养植物体的一个离体器官、离体的一种组织，或单个细胞
植物细胞分裂和植物分生组织实验
实验方法原理1. 了解植物细胞分裂的三种方式；认识分生组织在植物体上的位置及其类型。2. 掌握植物细胞有丝分裂和减数分裂各时期的特征；掌握分生组织的结构特点。实验材料洋葱根尖鸭跖草大蒜苗永久制片油菜茎尖新鲜茎段胡桃刺槐枝条小麦幼茎试剂、试剂盒冰醋酸醋酸洋红龙胆紫醋酸碘化钾番红水仪器、耗材显微镜水
植物细胞分裂和植物分生组织实验
实验方法原理1. 了解植物细胞分裂的三种方式；认识分生组织在植物体上的位置及其类型。 2. 掌握植物细胞有丝分裂和减数分裂各时期的特征；掌握分生组织的结构特点。实验材料洋葱根尖
高通量组织研磨仪对植物组织的研磨步骤
测定植物组织的成分含量是植物生理学研究中的重要部分。为什么这么讲呢？植物的基本组成物质如蛋白质、糖、脂肪和核酸以及它们的代谢都与其他生物大同小异。但是，植物本身又有一些独特的地方，如：植物的生长没有定限，虽然部分组织或细胞死亡，仍可以再生或更新，不断地生长；植物的体细胞具全能性，在适宜的条件
各种组织特殊染色法—纤维素染色法
纤维素又称纤维蛋白，在正常的情况下，它是血液内的纤维蛋白原分子聚合而形成的一种特殊蛋白质。正常的组织是见不到纤维素的。但是，当组织受损，血管内皮受到了较为严重的损害，血管通透性随之升高，则可导致大量纤维蛋白的漏出。纤维素性炎症就是以纤维素渗出为主[6]的一种抗损害的症状。在HE感染时于镜下可见到大量
植物细胞分裂和植物分生组织实验（二）
观察植物细胞减数分裂时二分体和四分体时期的永久装片，了解植物细胞减数分裂的现象。二、植物分生组织分生组织是由具有旺盛的分裂机能的细胞所组成的，见于植物体生长的幼嫩部位。依其在植物体中的位置不同可分为顶端分生组织、侧生分生组织和居间分生组织三种类型。1. 顶端分生组织的观察剪取2 mm长的一段洋葱根
植物细胞分裂和植物分生组织实验（一）
实验方法原理 1. 了解植物细胞分裂的三种方式；认识分生组织在植物体上的位置及其类型。2. 掌握植物细胞有丝分裂和减数分裂各时期的特征；掌握分生组织的结构特点。实验材料 洋葱根尖鸭跖草大蒜苗永久制片油菜茎尖新鲜茎段胡桃刺槐枝条小麦幼茎试剂、试剂盒 冰醋酸醋酸洋红龙胆紫醋酸碘化钾番红水仪器、耗材
关于羟丙基甲基纤维素的含量测定介绍
1、甲氧基 照甲氧基、乙氧基与羟丙氧基测定法（2010年版药典二部附录ⅦF）测定。如采用第二法（容量法），取本品，精密称定，依法测定，测得的甲氧基量（%）扣除羟丙氧基量（%）与（31/75×0.93）的乘积，即得。 2、羟丙氧基 照甲氧基、乙氧基与羟丙氧基测定法（2010年版药典二部附录Ⅶ
植物组织培养有哪些特点？
1、培养条件可以人为控制 组培采用的植物材料完全是在人为提供的培养基和小气候环境条件下进行生长，摆脱了大自然中四季、昼夜的变化以及灾害性气候的不利影响，且条件均一，对植物生长极为有利，便于稳定地进行周年培养生产。 2、生长周期短，繁殖率高 组培是由于人为控制培养条件，根据不同植物不同部位的
植物组织培养的相关介绍
1、试剂 乙醇。 吲哚乙酸（ IAA） 或 2 ，4 – D （生长素类似物）。 氯化汞（升汞）或次氯酸钠。 6 -苄基氨基腺嘌呤（ 6-BA ） MS 培养基 0.1 mol/L NaOH与 0.1 mol/L HCl 2、配制培养基 （1）愈伤组织诱导培养基： MS 培养基（
植物组织培养材料与方法
从低等的藻类到苔藓、蕨类、种子植物等高等植物的各类、各部分都可采用作为组织培养的材料，一般裸子植物多采用幼苗、芽、韧皮部细胞，被子植物采用胚、胚乳、子叶、幼苗、茎尖、根、茎、叶、花药、花粉、子房和胚珠等各个部分。由于植物在自然条件下，表面常被霉菌和细菌污染，故材料必须进行灭菌处理。一般用漂白粉溶液（
植物组织的渗透势测定实验
实验方法原理 将植物组织放入一系列浓度递增的蔗糖或甘露醇溶液中，经过一定的时间使达到渗透平衡后，细胞在其中发生临界质壁分离的溶液渗透势即等于细胞液的渗透势。此溶液称为等渗溶液，其浓度称为等渗浓度。实际测定时，根据引起临界质壁分离的溶液浓度与相邻的不引起质壁分离的溶液浓度的平均值，求出等渗浓度，并计算
植物组织蛋白质提取方法
1、植物组织蛋白质提取方法（summer）1、根据样品重量（1g样品加入3.5ml提取液，可根据材料不同适当加入），准备提取液放在冰上。2、把样品放在研钵中用液氮研磨，研磨后加入提取液中在冰上静置（3-4小时）。3、用离心机离心8000rpm40min4℃或11100rpm20min4℃4、提取上清
植物组织培养的培养条件
（一）温度： 对大多数植物组织20～28℃即可满足生长所需，其中26～27℃最适合。 （二）光： 组织培养通常在散射光线下进行。光的影响可导致不同的结果。有些植物组织在暗处生长较好，而另一些植物组织在光亮处生长较好，但由愈伤组织分化成器官时，则每日必须要有一定时间的光照才能形成芽和
植物组织的渗透势测定实验
实验方法原理将植物组织放入一系列浓度递增的蔗糖或甘露醇溶液中，经过一定的时间使达到渗透平衡后，细胞在其中发生临界质壁分离的溶液渗透势即等于细胞液的渗透势。此溶液称为等渗溶液，其浓度称为等渗浓度。实际测定时，根据引起临界质壁分离的溶液浓度与相邻的不引起质壁分离的溶液浓度的平均值，求出等渗浓度，并计算出
植物组织培养技术的应用
1、良种快繁 将植物组织培养技术用于新育成的、新引进的、一些短期内大量急需生产的良种快繁，可在最短时间内获得最多的植株，较普通营养生殖快成千上万倍，对新优良品种的推广应用尤为便利。 2、大批量营养繁殖 一些生产用苗量大的、需进行无性系繁殖的品种，尤其对一些繁殖系数低，特别是不能用种子进行繁殖
植物无糖组织培养技术
植物无糖组培快繁技术（Sugar-free micropropagation）又称为光自养微繁殖技术（Photoautotrophic micropropagation）是指在植物组织培养中改变碳源的种类，以CO2代替糖作为植物体的碳源，通过输入CO2气体作为碳源，并控制影响试管苗生长发育的环境因子
植物组织的渗透势测定实验
将植物组织放入一系列浓度递增的蔗糖或甘露醇溶液中，经过一定的时间使达到渗透平衡后，细胞在其中发生临界质壁分离的溶液渗透势即等于细胞液的渗透势。此溶液称为等渗溶液，其浓度称为等渗浓度。实际测定时，根据引起临界质壁分离的溶液浓度与相邻的不引起质壁分离的溶液浓度的平均值，求出等渗浓度，并计算出此溶液的渗透
植物组织培养的培养方法
1、非试管微组织快繁非试管微组织快繁技术是将外植体（一般要求带一叶一芽）放置在室内外普通沙子培养基上进行培养，利用植物腋芽自然倍增达到快速繁殖的目的。一般植物7～15天可以生长出根系。此技术投资低，操作环节少。2、试管组织培养试管组织培养是将外植体（即离体组织、器官或细胞）放置在组培瓶等器皿中在无菌
植物组织培养技术的分类
1、胚胎培养 指以从胚珠中分离出来的成熟或未成熟胚为外植体的离体无菌培养。 2、器官培养 指以植物的根、茎、叶、花、果等器官为外植体的离体无菌培养，如根的根尖和切段，茎的茎尖、茎节和切段，叶的叶原基、叶片、叶柄、叶鞘和子叶，花器的花瓣、雄蕊（花药、花丝）、胚珠、子房、果实等的离体无菌培养。
植物的组织培养的概念
植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论，近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。植物的组织培养广义又叫离体培养，指从植物体分离出符合需要的组织、器官或细胞，原生质体等，通过无菌操作，在无菌条件下接种在含有各种营养物质及植物激素的培养基上进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产
植物组织培养需要哪些设备
1.实验室的准备：（1）化学实验室：组培时的洗涤、干燥、保存；培养基的配制和分装；高压灭菌；处理大型植物材料，以及进行生理、生化分析都在化学实验室进行。其要求与一般化学实验室的要求相同。（2）接种室（无菌室）：设有超净工作台或接种箱，用于无菌接种。要求室内光滑平整，地面平坦无缝，避免灰尘积累。室内要
细胞组织植物方面的应用
微繁殖技术 通过茎尖培养或微嫁接技术，可以脱去植物体内的病毒，获得无病毒苗木，如苹果、草莓等。另外，在组织培养过程中，如愈伤组织培养、细胞悬浮培养、原生质体培养等，通过pH值、温度、离子浓度等条件的变化，可增加其变异，从中可筛选出优良的突变体，从而为新品种的选育开辟一条崭新的途径。 愈伤组织
植物组织培养的培养条件
植物组织培养即植物无菌培养技术，又称离体培养，是根据植物细胞具有全能性的理论，利用植物体离体的器官(如根、茎、叶、茎尖、花、果实等）、组织（如形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等）或细胞（如大孢子、小孢子、体细胞等）以及原生质体,在无菌和适宜的人工培养基及温度等人工条件下，能诱导出愈伤组织、不定芽、
植物无糖组织培养技术
植物无糖组培快繁技术（Sugar-free micropropagation）又称为光自养微繁殖技术（Photoautotrophic micropropagation）是指在植物组织培养中改变碳源的种类，以CO2代替糖作为植物体的碳源，通过输入CO2气体作为碳源，并控制影响试管苗生长发育的环境因子
植物组织培养的培养步骤
第一步，将采来的植物材料除去不用的部分，将需要的部分仔细洗干净，如用适当的刷子等刷洗。把材料切割成适当大小，即灭菌容器能放入为宜。置自来水龙头下流水冲洗几分钟至数小时，冲洗时间视材料清洁程度而宜。易漂浮或细小的材料，可装入纱布袋内冲洗。流水冲洗在污染严重时特别有用。洗时可加入洗衣粉清洗，然后再用自来
植物组织含水量的测定
植物 组织含水量是表示植物组织水分状况的一个常用指标。对于正常生长的组织，含水量的多少直接影响植物的生长状况；对于水果、蔬菜，含水量的多少对品质有着很大的影响；对于贮藏中的种子，含水量的多少对于能否安全贮藏起着决定性的作用。所以，对植物组织含水量进行测定，不仅具有理论意义，而且具有重要的实践意义。
植物组织培养基成分
1. 培养基的配制注意事项 植物组织培养最常用到MS培养基，包含十几种化合物。因为有些化合物相遇会发生化学反应产生沉淀，影响培养基的营养成分，准备MS培养基需要配制多种高倍母液。且配制母液时，尤其涉及大量元素的母液时，一定要等一种成分溶解之后，再缓慢的添加另一种成分，切记“一锅煮”，即不能将各
植物组织培养的技术原理
植物组织培养即植物无菌培养技术，又称离体培养，是根据植物细胞具有全能性的理论，利用植物体离体的器官（如根、茎、叶、茎尖、花、果实等）、组织（如形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等）或细胞（如大孢子、小孢子、体细胞等）以及原生质体，在无菌和适宜的人工培养基及温度等人工条件下，能诱导出愈伤组织、不定芽、