植物成熟组织观察实验（四）
四、输导组织 1. 木质部中的输导组织取南瓜茎纵切片置低倍镜下观察，切片中央两侧有一些细胞壁被染成红色具有各种加厚花纹的成中管状细胞，它们是多种类型的导管（组织）。每个导管分子，均以端壁形成的穿孔相互连接，上下贯通。仔细观察，臂径较小，其壁具有螺旋形加厚并木质化的为螺纹导管，管径较大，具有网状加厚并木质化的为网纹导管（注意切片中有些导管或导管一段，因为只切到导管腔中间一部分，因而只看到导管两边侧壁和中间空腔，而看不到导管壁上加厚的花纹）。偶尔也可以在切片中看到管径很小；管壁上有环状加厚并木质化的环纹导管。导管是输导水分的管状结构，它们成列纵向排列于木质部内。观察时注意导管的结构特点，不同类型导管的区别。也可观察薄荷、苹果等植物茎的纵切制片。2. 韧皮部中的输导组织观察南瓜茎纵切片，分布在木质部内外两侧染成绿色的主要是韧皮部，在此处可见一些口径较大的长管状细胞(每个细胞即为一个筛管分子)上下相连而......阅读全文
植物成熟组织观察实验
实验方法原理1. 掌握植物各种成熟组织的形态、位置、结构及功能。 2. 了解不同组织间的相互联系，维管束的结构与类型，植物组织离析法。实验材料番薯叶片 楝树枝条
植物成熟组织观察实验
实验方法原理1. 掌握植物各种成熟组织的形态、位置、结构及功能。2. 了解不同组织间的相互联系，维管束的结构与类型，植物组织离析法。实验材料番薯叶片楝树枝条萝卜根尖马铃薯块茎横切片南瓜茎纵横切片椴树茎切片梨果实玉米茎横切片试剂、试剂盒蒸馏水番红间苯三酚盐酸仪器、耗材显微镜载玻片盖玻片镊子刀片纱布
植物成熟组织观察实验（一）
实验方法原理 1. 掌握植物各种成熟组织的形态、位置、结构及功能。2. 了解不同组织间的相互联系，维管束的结构与类型，植物组织离析法。实验材料 番薯叶片楝树枝条萝卜根尖马铃薯块茎横切片南瓜茎纵横切片椴树茎切片梨果实玉米茎横切片试剂、试剂盒 蒸馏水番红间苯三酚盐酸仪器、耗材 显微镜载玻片盖玻片镊子
植物成熟组织观察实验（四）
四、输导组织 1. 木质部中的输导组织取南瓜茎纵切片置低倍镜下观察，切片中央两侧有一些细胞壁被染成红色具有各种加厚花纹的成中管状细胞，它们是多种类型的导管（组织）。每个导管分子，均以端壁形成的穿孔相互连接，上下贯通。仔细观察，臂径较小，其壁具有螺旋形加厚并木质化的为螺纹导管，管径较大，具有网状加厚
植物成熟组织观察实验（五）
五、维管束结构和类型1. 双子叶植物的的无限维管束（开放维管束）取南瓜(或其他双于叶植物)茎横切片对光肉眼观察，可见南瓜茎切片中央为星状的髓腔，围绕髓腔的薄壁组织内有五个较大和五个较小的维管束彼此相间排列。在低倍镜下选一个大而清晰的维管束观察，可见维管束由外(靠茎外方)到内分为外韧皮部、形成层、木
植物成熟组织观察实验（二）
二、薄壁组织1. 吸收组织取萝卜根尖制作压片，置显微镜下观察根毛的形态和结构特点。2. 贮藏组织取马铃薯块茎一小块，用双面刀片进行徒手切片，选取较薄的切片放在载玻片上，加1滴蒸馏水后盖上盖玻片置显微镜下观察淀粉贮藏细胞的结构特点。3. 同化组织取夹竹桃叶片做徒手横切片，制成临时切片标本，置显微
植物成熟组织观察实验（三）
三、机械组织1. 厚角组织取南瓜（或薄荷、苹果、椴树）茎横切片，先在低倍镜下观察，找到棱角处，再换高倍镜由外而内观察，最外一层排列整齐的扁平细胞为表皮，其上具多细胞表皮毛，紧靠表皮内方的皮层中，有几层染成绿色的细胞，其细胞壁在角隅处加厚、是生活细胞，有时还可看到细胞内的叶绿体，为厚角组织。2.
植物组织pcr
直接PCR（Direct PCR）使用未纯化的样本进行PCR扩增，无需核酸纯化步骤，为DNA扩增带来前所未有的便捷。如果您研究领域涉及基因分型、转基因、质粒检测、基因敲除分析、DNA来源鉴定、物种鉴定、SNP分析等，请看完下面的介绍吧。 直接PCR需要的试剂 样本裂解液 样本裂解液可自
植物组织直接PCR
实验概要本实验以拟南芥叶片为试材介绍了一个不用提取DNA直接进行PCR的简单方法。主要试剂0.25N NaOH0.25N HClNP-40缓冲液：0.5N Tris-HCI， pH8.0 ，25% NP-40实验步骤1. 取面积约为lmm2的植物叶片放在500ul离心管中，加入40ul的0
植物组织和细胞显微化学染色_植物组织中酶检测方法
实验步骤植物组织中酶的组织化学鉴定，其基本原理是以某些物质为基屈，在专一酶的作用下，产生 种有颜色的化合物来表示某种酶的存在。为保持酶的活性，通常要采用冰冻切片法来得到切片，有时也可用徒手切片法。(1)细胞色素氧化酶：将切片放人磷酸缓冲液 (pH 值 5.8) 中，室温下放置 5-10min, 然后
植物组织培养和植物快速繁殖
组织培养是一种利用人工培养基（液）使细胞在体外发育和繁殖的技术。除了能够为许多实验提供大量的动植物细胞材料之外，它也是一项克隆植物细胞和个体的实用技术。实际上，在日常生活中必不可少的蔬菜、花卉及粮食作物中，许多种类都是克隆植物，例如，脱病毒马铃薯和红薯、百合和兰花、水稻等等。病毒是威胁园艺和蔬菜种植
植物所揭示果实成熟的转录后调控机制
成熟是果实发育的重要阶段，伴随着颜色、香气及硬度等一系列变化。这一过程受到内外因素的共同调控，机制非常复杂。对果实成熟调控的有关机制开展研究，对于提高果实品质、优化贮藏保鲜技术具有很大的指导意义。近年来，有关果实成熟的转录调控已有较多报道，鉴定到多个重要的转录因子，对它们的作用机制也进行了较多研
植物组织的培养方法
1、非试管微组织快繁 非试管微组织快繁技术是将外植体（一般要求带一叶一芽）放置在室内外普通沙子培养基上进行培养，利用植物腋芽自然倍增达到快速繁殖的目的。一般植物7～15天可以生长出根系。此技术投资低，操作环节少。 2、试管组织培养 试管组织培养是将外植体（即离体组织、器官或细胞）放置在组培
植物组织培养过程
一、培养材料的采集组织培养所用的材料非常广泛，可采取根、茎、叶、花、芽和种子的子叶，有时也利用花粉粒和花药，其中根尖不易灭菌，一般很少采用。对于木本花卉来说，阔叶树可在一、二年生的枝条上采集，针叶树种多采种子内的子叶或胚轴，草本植物多采集茎尖。在快速繁殖中，最常用的培养材料是茎尖，通常切块在0.5厘
植物组织的观察实验
[目的要求] 1.掌握植物细胞有丝分裂和减数分裂各时期的特征。 2.掌握植物分生组织和各种成熟组织的形态、位置、结构及功能。 3.学习简单地离析组织的方法。 [材料用品] 材料：蚕豆叶、烟草叶、玉米叶、小麦叶、水稻叶、椴树茎横切片
植物组织培养简介
植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论，近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。植物的组织培养广义又叫离体培养，指从植物体分离出符合需要的组织、器官或细胞，原生质体等，通过无菌操作，在无菌条件下接种在含有各种营养物质及植物激素的培养基上进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其
植物组织水势的测定
植物水势的测定先用折射仪法再用小液流法。折射仪测定法会因为植物的细胞壁而产生一定的误差，只能得到一个不准确的值。根据这个值，就可以缩小蔗糖浓度梯度的阈值范围，从而更快速准确的测得水势。《植物生理学实验》分7个部分，有28个实验，涉及植物生理学相关实验的基本原理、基础知识、基本实验技能和拓展应用，内容
植物组织水势的测定
植物水势的测定先用折射仪法再用小液流法。折射仪测定法会因为植物的细胞壁而产生一定的误差，只能得到一个不准确的值。根据这个值，就可以缩小蔗糖浓度梯度的阈值范围，从而更快速准确的测得水势。《植物生理学实验》分7个部分，有28个实验，涉及植物生理学相关实验的基本原理、基础知识、基本实验技能和拓展应用，内容
利用组织工程技术获取成熟卵的方法介绍
首先将鞘膜细胞贴壁在中空纤维上培养，然后将裸卵或卵丘细胞复合物置入，模仿卵泡液环境培养，使卵母细胞成熟。
植物组织培养的应用
快速繁殖优良植物株系 组织培养具有时间短、增殖率高和全年生产等优点，比大田生产快得多。加上培养材料和 试管 苗的小型化，这就可使有限的空间培养出大量个体。例如兰花（Cymbidium）、桉树（Eucalyptus）、杨树、秋海棠等植物，用一个茎尖或一小块叶片为基数，
植物组织水势的测定实验
实验方法原理水势表示水分的化学势。象电流是由高电位向低电位处移动一样，水从水势高处流向水势低处。植物体细胞之间以及植物体有环境间的水分移动方向都由水势差决定。当植物细胞或组织放在溶液中时，如果植物细胞的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而使溶液浓度变大，反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度
植物组织培养应用介绍
植物组织培养指的是在特定条件下用人工手段是植物细胞分裂增殖的生物学技术。
植物细胞组织培养
实验目的 植物细胞和组织培养的技术性强，要求无菌操作，通过本实验可初步掌握常规的组织培养技术，加深对无菌操作的了解。 二．实验原理 植物的全能性：植物体的任何一个细胞都具有生长分化成为一个完整植株的能力，称为植物的全能性。 植物组织培养就是利用植物的全能性进行离
植物组织mRNA的提取方法
实验概要本实验介绍了植物组织mRNA的提取方法。实验原理由于mRNA末端含有多poly（A） ,当总RNA流径oligo（dT）纤维素时，在高盐缓冲液作用下，mRNA被特异的吸附在oligo（dT）纤维素柱上，在低盐浓度或蒸馏水中，mRNA可被洗下，经过两次oligo（dT）纤维素柱，可得到较纯的m
植物组织培养技术简介
上世纪30年代white首次由番茄根建立了第一个活跃生长的无性繁殖系，验证了l902年Haberlandt提出的植物细胞全能性的理论。所谓植物细胞全能性就是每个植物细胞就像一粒种子，在适宜条件下具有发育成完整植株的潜力。20世纪50年代——诱导培养银胶菊愈伤组织得到天然橡胶从胡萝卜体 细胞培养
植物组织总RNA的提取
实验概要由于RNA分子的结构特点，容易受RNA酶的攻击反应而降解，加上RNA酶极为稳定且广泛存在，因而在提取过程中要严格防止RNA酶的污染，并设法抑制其活性，这是本实验成败的关键。所有的组织中均存在RNA酶，人的皮肤、手指、试剂、容器等均可能被污染，因此全部实验过程中均需戴手套操作并经常更换（使用一
植物的组织培养技术
一． 实验目的： 1. 学习固体培养基的配制； 2. 掌握胡萝卜愈伤组织的诱导方法。 二． 实验原理： 植物组织培养理论依据是植物细胞具有全能性。 植物组织培养是指用无菌培养的方法，在人工制备的培养基上培养植物体的一个离体器官、离体的一种组织，或单个细胞
植物组织汁液浓度的测定
植物 细胞汁液的浓度与植物的水分代谢、生长、抗性及果蔬品质等有关。当植物缺水时，叶肉细胞汁液浓度增高，因此可作为灌溉生理指标。细胞汁液浓度大时，植物生长速度减慢而且抗性增强。果实、蔬菜中糖酸等溶质的含量也可用细胞汁液浓度表示，称为可溶性固形物，是果蔬品质的重要指标。本实验采用折射仪或手持糖量计
植物组织水势的测定实验
实验方法原理水势表示水分的化学势。象电流是由高电位向低电位处移动一样，水从水势高处流向水势低处。植物体细胞之间以及植物体有环境间的水分移动方向都由水势差决定。当植物细胞或组织放在溶液中时，如果植物细胞的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而使溶液浓度变大，反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度
植物组织培养的流程
植物组织培养的流程：第一步，将采来的植物材料除去不用的部分，将需要的部分仔细洗干净，如用适当的刷子等刷洗。把材料切割成适当大小，即灭菌容器能放入为宜。置自来水龙头下流水冲洗几分钟至数小时，冲洗时间视材料清洁程度而宜。易漂浮或细小的材料，可装入纱布袋内冲洗。流水冲洗在污染严重时特别有用。洗时可加入洗衣