电泳技术：生物化学实验常用技术3
三．凝胶孔径的调节凝胶孔径、机械性能(弹性)、透明度等在很大程度上取决于Acr和Bis二者的总浓度T%。T%越大，孔径越小，机械强度则增加。凝胶的特性是分子筛效应。在聚合前调节单体的浓度来控制凝胶孔径大小，有利于针对样品分子大小，增加分辨力。为此可以根据分离样品分子大小配制不同孔径的凝胶。一般大孔胶易碎，小孔胶难以取出。另外考虑选择适宜的缓冲液。缓冲液的作用一是用来维持容器内和凝胶外的pH恒定，二是作为在电场中传导电流的电解质。要使缓冲液很好地完成这些作用，必须注意三个条件：第一，缓冲液不与被分离的物质相互作用；第二，缓冲液pH值不能使蛋白质变性，对于分离蛋白质的最大pH限度通常是 pH4.5～9.0；最后还要考虑到缓冲液的离子强度。四．分离蛋白的基本原理聚丙烯酰胺凝胶电泳根据其有无浓缩效应，分为连续系统与不连续系统两大类，前者电泳体系中缓冲液pH值及凝胶浓度相同，带电颗粒在电场作用下，主要靠电荷及分子筛效应；后者电泳体系中......阅读全文
电泳技术：生物化学实验常用技术3
三．凝胶孔径的调节凝胶孔径、机械性能(弹性)、透明度等在很大程度上取决于Acr和Bis二者的总浓度T%。T%越大，孔径越小，机械强度则增加。凝胶的特性是分子筛效应。在聚合前调节单体的浓度来控制凝胶孔径大小，有利于针对样品分子大小，增加分辨力。为此可以根据分离样品分子大小配制不同孔径的凝胶。一般大孔胶
电泳技术：生物化学实验常用技术1
带电颗粒在电场作用下向着与其电性相反的电极移动的现象称为电泳。如带正电荷的粒子向负极移动，带负电荷的粒子向正极移动。电泳技术是生物化学与分子生物学中的重要研究方法之一，利用电泳技术可分离许多生物物质，包括氨基酸、多肽、蛋白质、脂类、核苷、核苷酸及核酸等，并可用于分析物质的纯度和分子量的测定等。电泳的
电泳技术：生物化学实验常用技术2
琼脂糖凝胶电泳琼脂糖凝胶电泳是一种以琼脂糖凝胶为支持物的凝胶电泳，其分析原理与其它支持物电泳的最主要区别是：它兼有“分子筛”和“电泳”的双重作用。琼脂糖凝胶具有网络结构，直接参与带电颗粒的分离过程，在电泳中，物质分子通过空隙时会受到阻力，大分子物质在泳动时受到的阻力比小分子大，因此在凝胶电泳中，带电
层析技术:生物化学实验常用技术(3)
一、基本原理 是指混合物随流动相流经固定相的层析柱时，混合物中各组分按其分子大小不同而被分离的技术。固定相是凝胶。凝胶是一种不带电荷的具有三维空间的多孔网状结构，凝胶的每个颗粒内部都具有很多细微的小孔，如同筛子一样，小的分子可以进入凝胶网孔，而大的分子则被排阻于凝胶颗粒之外
层析技术:生物化学实验常用技术(2)
在分配层析中，大多选用多孔物质作为支持物，利用它对极性溶剂的亲和力，吸附某种极性溶剂作为固定相；用另一种非极性溶剂作为流动相。如果把待分离的混合物样品点在多孔支持物上，在层析过程中，非极性溶剂沿支持物流经样品点时，样品中的各种混合物便会按分配系数大小流动相而向前移动。当遇到前方的固定相时，溶于流动相
层析技术:生物化学实验常用技术(1)
层析技术是近代生物化学最常用的分离技术之一。它是利用混合物中各组分的理化性质（吸附力、分子形状和大小、分子极性、分子亲和力、分配系数等）的差异，在物质经过两相中，不断地进行交换、分配等过程。任何层析都具有两个相，即固定相和流动相。固定相固定不动，流动相对固定相作单相的相对运动，从而推动样品中各组分通
电泳技术(electrophoretic－techniques)简介3
（三）等电聚焦电泳技术等电聚焦（isoelectric focusing，IEF）是60年代中期问世的一种利用有pH梯度的介质分离等电点不同的蛋白质的电泳技术。由于其分辨率可达0.01pH单位，因此特别适合于分离分子量相近而等电点不同的蛋白质组分。⒈IEF的基本原理 在IEF的电泳中，具有pH梯
三种常用免疫电泳技术
免疫电泳技术是电泳分析与沉淀反映的结合产物。这种技术有两大优点，一是加快反应的速度，二是将某些蛋白组分利用其带电荷的不同而将其分开，再分别与抗体反应，以此做更细微的分析。免疫电泳技术的种类有很多，这里仅将常用的技术介绍如下： 一、放射免疫电泳技术 将放射性元素标记的抗体（或抗原）与相应的抗原（或抗体
电泳分析常用方法其他电泳技术
⒈IEF/SDS-PAGE双向电泳法 1975年O′Farrall等人根据不同组份之间的等电点差异和分子量差异建立了 IEF/SD S-PAGE双向电泳。其中IEF电泳(管柱状)为**向,SDS-PAGE 为第二向(平板)。在进行**向IEF电泳时,电泳体系中应加入高浓度尿素、适量非离子型去污剂NP
生化实验讲义－－电泳技术
电泳技术发展简史 1809年俄国物理学家Рейсе首次发现电泳现象。他在湿粘土中插上带玻璃管的正负两个电极，加电压后发现正极玻璃管中原有的水层变混浊，即带负电荷的粘土颗粒向正极移动，这就是电泳现象。 1909年Michaelis首次将胶体离子在电场中的移动称为电泳。他用不同pH的溶液在U形管中测
生化实验讲义－－电泳技术
电泳技术发展简史 1809年俄国物理学家Рейсе首次发现电泳现象。他在湿粘土中插上带玻璃管的正负两个电极，加电压后发现正极玻璃管中原有的水层变混浊，即带负电荷的粘土颗粒向正极移动，这就是电泳现象。 1909年Michaelis首次将胶体离子在电场中的移动称为电泳。他用不同pH的溶液在U形管中
生物化学实验常用试剂的配制方法
1、0.5mol/L氢氧化钠溶液 □组份浓度 0.5mol/L □配制量 2L □配置方法 1.准确称取氢氧化钠40g。 2.用去离子水溶解并稀释至2L。 2、0.5mol/L盐酸溶液 □组份浓度 0.5mol/L □配制量 2L □配置方法 1.准确量取盐酸83.4mL。 2.用去离
生物化学实验基本技术：破碎技术
除了某些细胞外的多肽激素和某些蛋白质与酶以外，对于细胞内或多细胞生物组织中的各种生物大分子的分离纯化，都需要事先将细胞和组织破碎，使生物大分子充分释放到溶液中，并不丢失生物活性。不同的生物体或同一生物体的不同部位的组织，其细胞破碎的难易不一，使用的方法也不相同，如动物脏器的细胞膜较脆弱，容易破碎，植
生物化学实验基本技术：破碎技术
除了某些细胞外的多肽激素和某些蛋白质与酶以外，对于细胞内或多细胞生物组织中的各种生物大分子的分离纯化，都需要事先将细胞和组织破碎，使生物大分子充分释放到溶液中，并不丢失生物活性。不同的生物体或同一生物体的不同部位的组织，其细胞破碎的难易不一，使用的方法也不相同，如动物脏器的细胞膜较脆弱，容易破碎，植
生物化学实验基本技术—破碎技术
除了某些细胞外的多肽激素和某些蛋白质与酶以外，对于细胞内或多细胞生物组织中的各种生物大分子的分离纯化，都需要事先将细胞和组织破碎，使生物大分子充分释放到溶液中，并不丢失生物活性。不同的生物体或同一生物体的不同部位的组织，其细胞破碎的难易不一，使用的方法也不相同，如动物脏器的细胞膜较脆弱，容易破碎，植
生物化学实验基本技术：破碎技术
除了某些细胞外的多肽激素和某些蛋白质与酶以外，对于细胞内或多细胞生物组织中的各种生物大分子的分离纯化，都需要事先将细胞和组织破碎，使生物大分子充分释放到溶液中，并不丢失生物活性。不同的生物体或同一生物体的不同部位的组织，其细胞破碎的难易不一，使用的方法也不相同，如动物脏器的细胞膜较脆弱，容易破碎，植
常用实验动物介绍3
28.NOD/Lt：(1)遗传背景：①起源：在对ICR/Jcl小鼠进行近交培育的第6代时， 从白内障易感亚系分离出非肥胖糖尿病品系(nod)和非肥胖正常品系(NON)。在近交第20代时，首先发现NOD雌鼠有胰岛素依赖性糖尿病。1988年从JAX引到IMLAS。②毛色和毛色基因：白化，AA、BB、c
生物化学实验常用试剂的配制方法四
31、Locke氏溶液 □配制量 2L □配置方法 称取18g氯化钠，0.84g氯化钾，0.48g氯化钙，0.3g碳酸氢钠，2g葡萄糖，用去离子水溶解定容至2000mL。 32、0.2mol/L的丁酸溶液 □组份浓度 0.2mol/L □配制量 1L □配置方法 1.量取18mL正丁酸试剂。 2.用
生物化学实验常用试剂的配制方法一
1、0.5mol/L氢氧化钠溶液 □组份浓度 0.5mol/L □配制量 2L □配置方法 1.准确称取氢氧化钠40g。 2.用去离子水溶解并稀释至2L。 2、0.5mol/L盐酸溶液 □组份浓度 0.5mol/L □配制量 2L □配置方法 1.准确量取盐酸83.4mL。 2.用去离子水稀释至2L
生物化学实验常用试剂的配制方法三
21、45％乙醇溶液 □组份浓度 45％ □配制量 1L □配置方法 量取无水乙醇450mL，加入去离子水550mL，混匀。 22、5％的十二烷基硫酸钠溶液 (W/V) □组份浓度 5％ □配制量 0.1L □配置方法 称取5.0g十二烷基硫酸钠，溶于100mL4％的乙醇溶液中。 23、三氯甲烷-异
生物化学实验常用试剂的配制方法二
11、20％乙酸溶液 □组份浓度 20％ □配制量 1.2L □配置方法 量取冰乙酸300mL，用去离子水稀释至1200mL。 12、30％(W/V)Acrylamide □组份浓度 30％(W/V)Acrylamide 0.05％ □配制量 1L □配置方法 1.称量下列试剂，置于1L烧杯中
实验室常用技术参数资料（一）3
六、常用凝胶的技术参数 1．葡聚糖凝胶的某些技术数据,种类干颗粒直径（μ）分子量分级范围床体积毫升/克干分子筛得水值溶胀最少平衡时间（h）柱头压力（kPa）(2.5cm直径柱)肽及球形蛋白质葡聚糖（线性分子）室温沸水浴Sephadex G-1040～ 120～700～7002～ 31.0±0.
生物化学与分子生物学最常用的实验技术
分子细胞生物学研究所用的实验技术有哪些分子诊断学的研究范畴包括：利用遗传学、病理学、免疫学、生物化学、基因组学、蛋白质组学和分子生物学的理论和方法探讨疾病发生和发展的分子机制。为整个疾病过程寻求特异的分子诊断指标，以及利用分子生物学技术为这些分子诊断指标建立临床实用的检测方法。细胞培养技术指的是细胞
电泳分析常用方法等电聚焦电泳技术
等电聚焦(isoelectric focusing,IEF)是60年代中期问世的一种利用有pH 梯度的介质分离等电点不同的蛋白质的电泳技术。由于其分辨率可达0.01pH单位,因此特别适合于分离分子量相近而等电点不同的蛋白质组分。⒈IEF的基本原理 在IEF的电泳中,具有pH梯度的介质其分布是从阳极到
电泳技术
电泳是指带粒子在电场中向与自身带相反电荷的电极移动的现象。例如蛋白质具 有两性电离性质。当蛋白质溶液的pH在蛋白质等电点的碱侧时，该蛋白质带负电荷， 在电场中向正极移动，相反则带正电荷，在电场中向负极移动，只有蛋白质溶液pH在 蛋白质的等电点时静电荷是零，在电场中不向任何一极移动。 电泳现象早在1
电泳技术
电泳技术简介 电泳法，是指带电荷的供试品（蛋白质、核苷酸等）在惰性支持介质（如纸、醋酸纤维素、琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶等）中，于电场的作用下，向其对应的电极方向按各自的速度进行泳动，使组分分离成狭窄的区带，用适宜的检测方法记录其电泳区带图谱或计算其百分含量的方法。 电泳技术的基本原理和分类
电泳技术
电泳法，是指带电荷的供试品（蛋白质、核苷酸等）在惰性支持介质（如纸、醋酸纤维素、琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶等）中，于电场的作用下，向其对应的电极方向按各自的速度进行泳动，使组分分离成狭窄的区带，用适宜的检测方法记录其电泳区带图谱或计算其百分含量的方法。 电泳技术的基本原理和分类 在电场中，推
分子生物学常用实验技术（page－3)
分子杂交技术 互补的核苷酸序列通过Walson-Crick 碱基配对形成稳定的杂合双链分子DNA 分子的过程称为杂交。杂交过程是高度特异性的,可以根据所使用的探针已知序列进行特异性的靶序列检测。杂交的双方是所使用探针和要检测的核酸。该检测对象可以是克隆化的基因组DNA,也可以是细胞总DN
生化实验讲义(理论部分)——电泳技术（二）
4.9 梯度凝胶电泳梯度凝胶电泳也通常采用聚丙烯酰胺凝胶，但不是在单一浓度（孔径）的凝胶上进行，而是形成梯度凝胶。从凝胶顶部到底部丙烯酰胺的浓度呈梯度变化，如通常顶部凝胶浓度为5％，底部凝胶浓度为25％。凝胶梯度是通过梯度混合器形成的，高浓度的丙烯酰胺溶液首先加入到玻璃平板中，而后溶液浓度呈梯度下降
生化实验讲义(理论部分)四——电泳技术
4.1 电泳技术发展简史 1809年俄国物理学家Рейсе首次发现电泳现象。他在湿粘土中插上带玻璃管的正负两个电极，加电压后发现正极玻璃管中原有的水层变混浊，即带负电荷的粘土颗粒向正极移动，这就是电泳现象。 1909年Michaelis首次将胶体离子在电场中的移动称为电泳。他用不同pH的溶液在U