双向电泳样品缓冲液(samplebuffer)选用的基本原则
1、蛋白质样品的特征：复杂，含盐或其他污染物易被蛋白酶降解动态范围宽（>X106）溶解性不均一（疏水性/亲水性）分子量、等电点的范围宽（10-500KDa，pH2-14）2、样品分离的基本要求：高灵敏度和分辨率宽动态范围小样品体积高通量合适的温度和pH避免蛋白酶降解适合与高灵敏度的质谱联用尽量少的操作步骤减少污染和损失3、样品缓冲液的组成：3.1 尿素：一种中性变性剂，破坏氨基酸残基之间的非共价键和离子键而不影响等电聚焦，浓度范围5-9.8mol/L，溶液不稳定，降解生成的氰酸根离子与蛋白质的氨基结合改变蛋白质的等电点。加精胺能降低影响。3.2 硫尿：与尿素一起，能增加疏水膜蛋白的溶解性，缺点是在平衡液里与蛋白的半胱氨酸竞争结合碘代乙酰胺，会使蛋白的烷基化不完全，硫尿还有抑制SDS与蛋白质结合的作用，也可能增加脂类的溶解性，影响二向的效果。一般是2mol/L的硫尿与5-7mol/L尿素结合使用。3.3 去污剂：蛋白质在......阅读全文
Tricine－SDSPAGE实用方案
Tricine-SDS-PAGE是用于分离分子量在1-10kD的肽类用的。一、 试剂配制：1． Low Bis acrylamide（49.5% T, 3% C）Acylamide 48.0gBis 1.5gWater make up to 100ml2. High Bis acrylamide (
分离纯化核酸的基本原则
碱的作用时间不能太长 作用过久的话容易使DNA断裂 其他 就是提取核酸的速度要快，不能磨洋工 动作该轻柔的步骤一定要轻柔（如碱作用过程的混匀过程）
工业污水的处理基本原则
处理的基本原则1、优先选用无毒生产工艺替代或变革落后生产工艺,尽可能在生产过程中根绝或削减有毒有害废水的发生。2、在运用有毒质料以及发生有毒中间产品和产品过程中,应严格操作、监督,消除滴漏,削减丢失,尽可能选用合理流程和设备。3、含有毒物质废水,如含有一些重金属、放射性物质、高浓度酚、氰废水应与其它
抗原肽设计的基本原则
为了使生产抗体获得最佳效果，仔细地设计抗原肽是很有必要的，设计应满足一个基本条件：在免疫过程中，该抗原既不会产生过强的免疫反应，同时又能产生出对感兴趣的蛋白有结合能力的抗体。尽管抗原肽设计是一个很复杂的课题，但是有几点关键的基本设计原则可以提供给大家参考：1、确定抗体的用途（应用）新开展一个研究项目
分离纯化核酸的基本原则
碱的作用时间不能太长 作用过久的话容易使DNA断裂 其他 就是提取核酸的速度要快，不能磨洋工 动作该轻柔的步骤一定要轻柔（如碱作用过程的混匀过程）
空气釆样的基本原则
一．环境空气样品采集过程中的基本要求(1) 每次采样前，应对采样系统的气密性进行检查，符合要求方可采样。(2) 空白样品数量应按照项目监测方法标准规定执行；如方法标准中无规定，每个项目在同一批次内至少采集1个空白样品。(3) 平行样的采集及要求按照各项目监测方法标准执行。(4) 多点采样时，各采样点
抗原多肽设计的基本原则
为了使产生的抗体获得最佳效果，仔细地设计抗原多肽是很有必要的，设计应满足一个基本条件：在免疫过程中，该抗原既不会产生过强的免疫反应，同时又能产生出对感兴趣的蛋白有结合能力的抗体。抗原设计是一个很复杂的课题，有诸多需要注意的细节。根据我们所积累的经验，有几点关键的基本设计原则可供大家参考： 确定抗体
空气釆样的基本原则
一．环境空气样品采集过程中的基本要求(1) 每次采样前，应对采样系统的气密性进行检查，符合要求方可采样。(2) 空白样品数量应按照项目监测方法标准规定执行；如方法标准中无规定，每个项目在同一批次内至少采集1个空白样品。(3) 平行样的采集及要求按照各项目监测方法标准执行。(4) 多点采样时，各采样点
食品检验的基本原则
1严格按照标准中规定的分析步骤进行检验，对实验中不安全因素(中毒、爆炸、腐蚀、烧伤等)应有防护措施。2理化检验实验室实行分析质量控制理化检验实验室在建立良好技术规范的基础上，测定方法应有检出限、精密度、准确度、绘制标准曲线的数据等技术参数。3检验人员应填写好检验记录。
TaqMan探针设计的基本原则
1、TaqMan探针位置尽可能靠近扩增引物，但不能与引物重叠。 2、长度一般为18～40碱基。 3、G+C含量控制在40%～80%左右。 4、避免连续相同碱基的出现，特别是要避免GGGG或更多G出现。 5、在引物的5'端避免使用G。 6、选用比较多的碱基C。 7、退火温度Tm
PCR引物设计的基本原则
PCR反应中有两条引物，即5′端引物和3′引物。设计引物时以一条DNA单链为基准（常以信息链为基准），5′端引物与位于待扩增片段5′端上的一小段DNA序列相同；3′端引物与位于待扩增片段3′端的一小段DNA序列互补。 引物设计的基本原则 ①引物长度：15-30bp，常用为20bp左右。 ②
Leaf－GUS－Assay
一、实验试剂 GUS Buffer (500 ml) 2.0478 g Na2HPO4 1.2688 g NaH2PO4 (=50 mM NaPi pH7.0) 10 ml 0.5 M EDTA (=10 mM) 0.5 g Triton X-100 0.5 g N-L
了解pH缓冲液，征服pH缓冲液
正常人血浆的pH值为7.35~7.40。血浆PH值的相对恒定性有赖于血液内的缓冲物质以及正常的肺、肾功能。血浆的缓冲物质包括NaHCO3/H2CO3、蛋白质钠盐/蛋白质和Na2HPO4/NaH2PO4三个主要的缓冲对，其中以NaHCO3/H2CO3重要。红细胞内还有血红蛋白钾盐/血红蛋白、氧红血红蛋
DNA－Extraction－from－Blood
实验概要The ChargeSwitch® gDNA Purification Kits allow rapid and efficient purification of genomic DNA from small volumes of human blood. After preparin
GST－Activity－Fluorometric－Assay
实验概要 The experiment provides a simple, fluorescence-based in vitro assay for detecting the GST activity using a fluorescence plate reader. The ass
缓冲液的种类
一、缓冲液的含义：当往某些溶液中加入一定量的酸和碱时，有阻碍溶液pH变化的作用，称为缓冲作用，这样的溶液叫做缓冲溶液。弱酸及其盐的混合溶液（如HOAc与NaOAc），弱碱及其盐的混合溶液（如NH3·H2O与NH4Cl）等都是缓冲溶液。 二、缓冲液的种类 1、弱酸及其盐（弱酸及其共轭碱）体系p
双向电泳原理及操作步骤
实验概要本文介绍了双向电泳原理及操作步骤（第一向等电聚焦和第二向SDS-PAGE电泳）。实验原理二维聚丙烯酰胺凝胶电泳技术结合了等电聚焦技术（根据蛋白质等电点进行分离）以及SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳技术（根据蛋白质的大小进行分离）。这两项技术结合形成的二维电泳是分离分析蛋白质最有效的一种电泳手段。通
蛋白质技术——双向电泳
实验概要蛋白质组研究的发展以双向电泳技术作为核心. 双向电泳由O’Farrell’s于1975年首次建立并成功地分离约1000个E.coli蛋白，并表明蛋白质谱不是稳定的，而是随环境而变化. 双向电泳原理简明，第一向进行等电聚焦，蛋白质沿pH梯度分离，至各自的等电点；随后，再沿垂直的方向进行分子
蛋白质的双向电泳实验_等电聚焦法
蛋白质的双向电泳的第一向为等电聚焦( Isoelect rofocusing, IEF) , 根据蛋白质的等电点不同进行分离; 第二向为SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳( SDS-PAGE ) , 按亚基分子量大小进行分离。经过电荷和分子量两次分离后, 可以得到蛋白质分子的等电点和分子量信息。本实验目的是
Leaf－GUS－Assay
实验概要a protocol for Leaf GUS Assay This protocol is for small samples (usually single leaf from 21DAI plants), scale up for larger samplesAs there are
Jacobs:Protocol－Total－Protein－Isolation－Using－RIPA－Lysis－Buffer
MaterialsRIPA buffer (RIPA buffer enables the extraction of cytoplasmic, membrane and nuclear proteins and is compatible with many applications, inclu
煮蛋白加loading－buffer有什么用
loadingbuffer中有变性剂，可以使蛋白变性后不沉淀。一般还有还原剂，可以打开二硫键。
煮蛋白加loading－buffer有什么用
loadingbuffer中有变性剂，可以使蛋白变性后不沉淀。一般还有还原剂，可以打开二硫键。
毛细管电泳要loading－buffer么
loading buffer的作用不仅仅是有染色,loading buffer的成分往往还有甘油或者蔗糖这是最关键的一点是要将你的样的密度加大,只有加大密度才能在你点样的时候,使得你的样品比TAE的密度大,从而沉的点样孔里边.所以你的问题就可以解释了,如果是6X的,那么应该是5ul的样+1ul的lo
蛋白液体加sds－loading－buffer煮后结块
将蛋白样品稀释之后再加上样缓冲液就能溶解了。如果是SDS-PAGE，加了上样缓冲液后依然煮蛋白后结块，那说明蛋白样品浓度过高，已经超出了SDS可以结合的浓度。建议降低样品的浓度即可。如果没有加含有SDS的上样缓冲液，那么就是蛋白样品被煮沸后变性沉淀了。加入溶解剂即可。
双向电泳的常见问题解析
重泡胀后的胶可以不用转移到另一个电泳槽，直接跑 2D 的一向吗？一般情况下是可以的。但当上样量特别大时，可能会有一部分蛋白质没有被胶条吸收，这样跑完 1D 和 2D 胶后，会有很多横向条纹。所以在这种情况下，最好在重泡胀后，将胶条转移到另外一个电泳漕中进行电泳。为什么我在等电聚焦前加的矿物油在聚焦后
双向电泳仪的常见问题
重泡胀后的胶可以不用转移到另一个电泳槽，直接跑 2D 的一向吗？一般情况下是可以的。但当上样量特别大时，可能会有一部分蛋白质没有被胶条吸收，这样跑完 1D 和 2D 胶后，会有很多横向条纹。所以在这种情况下，最好在重泡胀后，将胶条转移到另外一个电泳漕中进行电泳。为什么我在等电聚焦前加的矿物油在聚焦后
双向电泳法的基本原理
蛋白质首先在薄条凝胶中通过等电聚焦分离。然后将凝胶水平放置在第二个平板状凝胶上，通过SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白质。水平分离反映了pI的差异；垂直分离反映了分子量的差异。因此，原始的蛋白质组成在两个维度上扩散。使用双向电泳技术可以分解数千种细胞蛋白质。可以从凝胶中切取出单个蛋白质点，并通过质谱
Bovine－Ig(Total－Immunoglobulin)－ELISA－Kit使用说明（二）
Note: Samples to be used within 5 days can be stored at 4°C, besides that, samples must be stored at -20°C (assay ≤1 month) or -80°C(assay≤2 month
继电器的选用
1、先了解必要的条件： ①控制电路的电源电压，能提供的最大电流； ②被控制电路中的电压和电流； ③被控电路需要几组、什么形式的触点。选用继电器时，一般控制电路的电源电压可作为选用的依据。控制电路应能给继电器提供足够的工作电流，否则继电器吸合是不稳定的。 2、查阅有关资料确定使用条件后，可