琼脂糖凝胶电泳法检测DNA及RNA的纯度及浓度
1、DNA 的琼脂糖凝胶电泳检测 （1）配制琼脂糖凝胶 ①称取适量琼脂糖，放入100mL锥形瓶中按胶浓度加入1倍 TAE 或 TBE 缓冲液，于微波炉或水浴中溶解。 ②熔化的琼脂糖冷却至60℃，加入终浓度为0.5μg/mL 的 EB，混匀。 ③将凝胶床水平放置，插入两端的挡板，用滴管吸取少量的凝胶封好胶床边缘。 ④放入梳子，使梳齿高于底板0.5～1.0mm。 ⑤倒入琼脂糖凝胶溶液，其厚度为3～5mm，放置30～60min，使胶完全硬化。 ⑥去掉两端的挡板，将胶床放入电泳槽中，加入电泳缓冲液，液面高出胶面1～2mm 小心拔出梳子，检查样品孔是否完整。 （2）点样 ①取浓度为 1μg/μL 的 DNA 样品5μL，与 5μL 溴酚蓝于封口膜上混合。 ②用 20μL 的移液器将样品加入样品孔内。操作时，可用右手持移液器，左手握住右手腕，左肘支撑桌面，防止点样时右手晃动。 ③同样操作点上 DNA 分子量标准物。......阅读全文
RNA实验和方案新手必读（八）
不同来源的核糖体RNA大小来源rRNA大小(kb)E. coli16S 23S1.5 2.9S. cerevisiae18S 26S2.0 3.8小鼠18S 28S1.9 4.7人18S 28S1.9 5.0RNA分析：分析凝胶变性凝胶分析的原理利用RNA在甲醛琼脂糖凝胶中的电荷迁移效应，可对RNA
核酸电泳（RNA电泳与DNA电泳）
（一）DNA的凝胶电泳：凝胶电泳是分子克隆的中心技术之一。琼脂糖凝胶用于分离大于200～1000bp的片段;操作简单、快速，且分离范围广，分辨率高。2.聚丙烯酰胺凝胶用于分离5－500bp的片段; 效果好、分辨率极高，相差1bp的DNA片断就能分开，能容纳相对大量的DNA ，用于核苷酸多态性的分析。
多药抗药基因的表达实验
PCR扩增法 实验方法原理 大多MDR细胞膜上出现MDR-1基因及其基因产物P-糖蛋白过度表达。 多药抗药基因的表达实验
dna琼脂糖凝胶电泳实验的临床意义
dna琼脂糖凝胶电泳实验的临床意义是用来分离DNA的。按长度来分开。不同长度的DNA带不同的电荷，然后再电场里的移动速度也就不同，然后就可以分开了。用琼脂糖凝胶作支持物的电泳法。借助琼脂糖凝胶的分子筛作用，核酸片段因其分子量或分子形状不同，电泳移动速度有差异而分离。是基因操作中常用的重要方法。可以将
dna琼脂糖凝胶电泳实验的临床意义
dna琼脂糖凝胶电泳实验的临床意义是用来分离DNA的。按长度来分开。不同长度的DNA带不同的电荷，然后再电场里的移动速度也就不同，然后就可以分开了。用琼脂糖凝胶作支持物的电泳法。借助琼脂糖凝胶的分子筛作用，核酸片段因其分子量或分子形状不同，电泳移动速度有差异而分离。是基因操作中常用的重要方法。可以将
DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾的原因
1、 可以考虑是不是样品不纯，目的产物与杂带相差不大，所以要多跑一段时间才有尾巴。参考marker,marker应该不会有。如果有的话说明配胶有问题。2 、琼脂糖检测DNA一般去1~5微升原液，加2微升溴酚蓝便可，注意上样浓度；3、可能是原液浓度太大造成的；4、可能DNA已降解。5、在提取前对样品进
dna琼脂糖凝胶电泳实验的临床意义
dna琼脂糖凝胶电泳实验的临床意义是用来分离DNA的。按长度来分开。不同长度的DNA带不同的电荷，然后再电场里的移动速度也就不同，然后就可以分开了。用琼脂糖凝胶作支持物的电泳法。借助琼脂糖凝胶的分子筛作用，核酸片段因其分子量或分子形状不同，电泳移动速度有差异而分离。是基因操作中常用的重要方法。可以将
DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾的原因
电泳出现拖尾现象,英文成为smear,就是弥散.其原因,主要从以下两个方面考虑：1、PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差,dNTP浓度过高,Mg2+浓度过高,退火温度过低,循环次数过多,而造成PCR的非特异性产物 过多.对策：①减少Taq酶的量,或调换另一来源的酶.②减少dNTP的浓度.
dna琼脂糖凝胶电泳实验的临床意义
dna琼脂糖凝胶电泳实验的临床意义是用来分离DNA的。按长度来分开。不同长度的DNA带不同的电荷，然后再电场里的移动速度也就不同，然后就可以分开了。用琼脂糖凝胶作支持物的电泳法。借助琼脂糖凝胶的分子筛作用，核酸片段因其分子量或分子形状不同，电泳移动速度有差异而分离。是基因操作中常用的重要方法。可以将
DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾的原因
原因有以下：1、 可以考虑是不是样品不纯，目的产物与杂带相差不大，所以要多跑一段时间才有尾巴。参考marker,marker应该不会有。如果有的话说明配胶有问题。2 、琼脂糖检测DNA一般去1~5微升原液，加2微升溴酚蓝便可，注意上样浓度；3、可能是原液浓度太大造成的；4、可能DNA已降解。5、在提
dna琼脂糖凝胶电泳实验的临床意义
dna琼脂糖凝胶电泳实验的临床意义是用来分离DNA的。按长度来分开。不同长度的DNA带不同的电荷，然后再电场里的移动速度也就不同，然后就可以分开了。用琼脂糖凝胶作支持物的电泳法。借助琼脂糖凝胶的分子筛作用，核酸片段因其分子量或分子形状不同，电泳移动速度有差异而分离。是基因操作中常用的重要方法。可以将
DNA片段的琼脂糖凝胶电泳结果怎么分析
看来这时指核小体被酶切后的电泳图咯，效果有点差哦！1、4是Marker，2 是染色质，3是小球菌核酶(micro coccal nuclease)处理的染色质。现象描述：在约200-1000bp有明显的梯度带（每带隔约200bp），这时因为用一种能使DNA降解的小球菌核酶(micro coccal
质粒DNA的琼脂糖凝胶电泳（agarose－gel－electrophoresis）
带电荷的物质在电场中的趋向运动称为电泳。电泳的种类多，应用非常广泛，它已成为分子生物学技术中分离生物大分子的重要手段。琼脂糖凝胶电泳由于其操作简单、快速、灵敏等优点，已成为分离和鉴定核酸的常用方法。实验目的：掌握琼脂糖凝胶电泳的原理，学习琼脂糖凝胶电泳的操作。实验材料：质粒DNA、BAC、植物总DN
DNA片段的琼脂糖凝胶电泳（agarose－gel－electrophoresis）
【原 理】琼脂糖凝胶电泳是重组DNA研究中常用的技术，可用于分离，鉴定和纯化DNA片段。不同大小、不同形状和不同构象的DNA分子在相同的电泳条件下（如凝胶浓度、电流、电压、缓冲液等），有不同的迁移率，所以可通过电泳使其分离。凝胶中的DNA可与荧光染料溴化乙锭（EB）结合，在紫外灯下可看到荧光条带，籍
DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾的原因
电泳出现拖尾现象,英文成为smear,就是弥散.其原因,主要从以下两个方面考虑：1、PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差,dNTP浓度过高,Mg2+浓度过高,退火温度过低,循环次数过多,而造成PCR的非特异性产物 过多.对策：①减少Taq酶的量,或调换另一来源的酶.②减少dNTP的浓度.
DNA琼脂糖凝胶电泳图如何分析
第一张图感觉没什么意义，因为没有marker。第二张图只要看看你的条带与marker相同位置的条带大小是多少，就可以判定你的条带大小是多少。至于条带的亮度，在某种程度上也可以指示你的DNA浓度如何，条带越亮浓度越高
DNA琼脂糖凝胶电泳（agarose－gel－electrophoresis）分析
一、原理琼脂糖凝胶具有分子筛效应。在中性ppH值的电泳缓冲液体系中，DNA分子由于带负电荷，所以在电场作用下由负极向正极泳动。由于DNA分子的大小和构型不同，在相同的时间内迁移至不同的位置。凝胶经溴化乙锭染色后，紫外检测仪下观察，即可看见DNA片段按大小不同呈条带分布。由于在一定条件下，DNA的迁移
如何选择琼脂糖凝胶的浓度来分离DNA
总体原则是：分子量大的DNA，电泳时使用浓度较小的凝胶反之亦反。胶浓度越大，电泳速度越小；若胶浓度偏高，可能跑不动，条带缩在一起；若胶浓度过低，可能跑得太快，同样分不开。可参考下面的对应关系：凝胶浓度（%） 线性DNA长度（bp）0.5 1000～300000.7 800～120001.0 500～
如何选择琼脂糖凝胶的浓度来分离DNA
总体原则是：分子量大的DNA，电泳时使用浓度较小的凝胶反之亦反。胶浓度越大，电泳速度越小；若胶浓度偏高，可能跑不动，条带缩在一起；若胶浓度过低，可能跑得太快，同样分不开。可参考下面的对应关系：凝胶浓度（%） 线性DNA长度（bp）0.5 1000～300000.7 800～120001.0 500～
如何选择琼脂糖凝胶的浓度来分离DNA
总体原则是：分子量大的DNA，电泳时使用浓度较小的凝胶反之亦反。胶浓度越大，电泳速度越小；若胶浓度偏高，可能跑不动，条带缩在一起；若胶浓度过低，可能跑得太快，同样分不开。可参考下面的对应关系：凝胶浓度（%） 线性DNA长度（bp）0.5 1000～300000.7 800～120001.0 500～
λ噬菌体DNA限制性内切酶图谱分析
实验方法原理λDNA是线状双链DNA,EcoRⅠ在其上有5个切点,产生6个片段,通过琼脂糖凝胶电泳可将这几条片段分离开。如何重建这6个片段呢?可用两种限制性内切酶同时或先后作用于λDNA。例如λDNA经EcoRⅠ切割后在凝胶上分离开来的6条带可洗脱出来,然后分别将这6条片段用HindⅢ切割。结果表明
λ噬菌体DNA限制性内切酶图谱分析
实验方法原理 λDNA是线状双链DNA,EcoRⅠ在其上有5个切点,产生6个片段,通过琼脂糖凝胶电泳可将这几条片段分离开。如何重建这6个片段呢?可用两种限制性内切酶同时或先后作用于λDNA。例如λDNA经EcoRⅠ切割后在凝胶上分离开来的6条带可洗脱出来,然后分别将这6条片段用HindⅢ切割。结果表
单细胞凝胶电泳法检测单细胞DNA损伤
单细胞凝胶电泳（single-cell gel eiectrophoresis，SCGE）又称慧星试验（comet assay）是一项较新的电泳方法。自1978年被Rydcbert B.等人成功地用于检验DNA单链断裂以来，经过不断的改进，已成为一种快速、灵敏、简便的检测DNA损伤的方法，广泛地应用
琼脂糖凝胶电泳和蛋白质分离纯化
脂糖凝胶电泳是用琼脂糖作为介质的一种电泳方法，其兼具“分子筛”和“电泳的双重作用。 琼脂糖(Agarose)是一种线性多糖聚合物，是从红色海藻产物琼脂中提取而来的，当琼脂糖溶液加热到沸点后冷却凝固便会形成良好的电泳介质，其密度是由琼脂糖的浓度决定的。 经过化学修饰的低熔点的琼脂糖，在
关于DNA酶切及凝胶电泳的简介
限制性内切酶能特异地结合于一段被称为限制性酶识别序列的DNA序列之内或其附近的特异位点上，并切割双链DNA。它可分为三类：Ⅰ类和Ⅲ类酶在同一蛋白质分子中兼有切割和修饰（甲基化）作用且依赖于ATP的存在。Ⅰ类酶结合于识别位点并随机的切割识别位点不远处的DNA，而Ⅲ类酶在识别位点上切割DNA分子，然
植物DNA的提取及凝胶电泳分析
实验概要利用基因组DNA较长的特性，可以将其余细胞器或质粒等小分子DNA分离。当加入一定量的异丙醇或乙醇，基因组的大分子DNA即沉淀形成纤维状絮团漂浮其中，可用玻璃棒将其取出，而小分子DNA则只形成颗粒状沉淀附于壁上及底部，从而达到分离提取的目的。分离基因组DNA应尽量在温和的条件下操作。琼脂糖或聚
质粒的琼脂糖凝胶电泳及PCR结果图分析
质粒电泳图那个除了很亮的那个是质粒，上面细细的那带应该是基因组的；PCR结果比较差，基本上是没跑好了，再优化体系和问题跑跑看吧。
琼脂糖凝胶电泳注意事项及操作流程
凝胶电泳操作注意事项： 1. 缓冲系统：在没有离子存在时，电导率最小，DNA不迁移，或迁移极慢，在高离子强度的缓冲液中，电导很高并产热，可能导致DNA变性，因此应注意缓冲液的使用是否正确。长时间高压电泳时，常更新缓冲液或在两槽间进行缓冲液的循环是可取的。 2. 琼脂糖：不同厂家、不同批号的琼脂糖，其
DNA酶切及凝胶电泳（gel－electrophoresis）
材料、设备及试剂 一、 材料 λDNA: 购买或自行提取纯化; 重组T-vector质料或pUC19质粒; EcoRI酶及其酶切缓冲液: 购买成品; HindⅢ酶及其酶切缓冲液: 购买成品;琼脂糖(Agarose): 进口或国产的电泳用琼脂糖均可。 二、 设备 水平式电泳装置,电泳仪,台式高
琼脂糖凝胶电泳用哪种琼脂糖－DNA线性长度如何确定
线性DNA长度可以琼脂糖凝胶电泳来判断呀,这要看你的DNA是多大的了,如果是几KB的话,选择相应的Marker,跑电泳比对一下就知道大小了,如果是10KB以上的话,先用内切酶切,然后再跑电泳比对带型