转膜后怎么分清楚膜的正反

转膜后分清楚膜的正反的方法:定义转膜时与胶接触的一面为“正”。封闭时使用封闭液,液体盖过膜就好,所以无所谓正反,假如用暗室显影法,将显影的试剂与“正”面接触,胶片与“正面”接触,假如用荧光的话,理论上“正”面朝下,扫描,但实际操作过程中貌似都可以的。湿电转膜仪:湿电转膜仪是用来转印蛋白的仪器。转移蛋白最常用的是电泳转印方法,该技术具有快速、有效、并保持蛋白在凝胶中高分辨率的特性。电泳转印法是指在凝胶中分离的蛋白质向印迹膜载体转印的过程。由于该技术可以准确、快速、高效地将蛋白转印到膜上,并可以保持蛋白在凝胶中高的分辨率,而被广泛的应用于转移印迹技术中。......阅读全文

western-blot转膜-膜上有白点点怎么回事

封闭的时候才出现的白点,是不是奶粉没有完全溶解啊。重新溶解下奶粉,然后用0.45或者0.21um的滤膜过滤一下,看情形能不能好转。另外还得根据结果来看,如果白点最后显影都变成黑点,奶粉没有溶解的可能性就比较大了。

转膜时间太长,小蛋白会不会从膜中穿过

影响因素应该有很多;一、首先需确定目的蛋白是否在胶上:跑完电泳可以先考马斯亮蓝染胶,如果在marker的指示下看到了目的蛋白的清晰条带,基本可以确定蛋白已经在胶上跑开。二、膜的准备:1.根据被转移的蛋白分子量大小,选择不同孔径的pvdf膜。因为随着膜孔径的不断减小,膜对低分子量蛋白的结合就越牢固。通

转膜时间太长,小蛋白会不会从膜中穿过

影响因素应该有很多;一、首先需确定目的蛋白是否在胶上:跑完电泳可以先考马斯亮蓝染胶,如果在marker的指示下看到了目的蛋白的清晰条带,基本可以确定蛋白已经在胶上跑开。二、膜的准备:1.根据被转移的蛋白分子量大小,选择不同孔径的pvdf膜。因为随着膜孔径的不断减小,膜对低分子量蛋白的结合就越牢固。通

转膜时间太长,小蛋白会不会从膜中穿过

影响因素应该有很多;一、首先需确定目的蛋白是否在胶上:跑完电泳可以先考马斯亮蓝染胶,如果在marker的指示下看到了目的蛋白的清晰条带,基本可以确定蛋白已经在胶上跑开。二、膜的准备:1.根据被转移的蛋白分子量大小,选择不同孔径的pvdf膜。因为随着膜孔径的不断减小,膜对低分子量蛋白的结合就越牢固。通

关于Southern杂交的转膜的介绍

  即将凝胶中的单链DNA片段转移到固相支持物上。而此过程最重要的是保持各DNA片段的相对位置不变。DNA是沿与凝胶平面垂直的方向移出并转移到膜上,因此,凝胶中的DNA片段虽然在碱变性过程已经变性成单链并已断裂,转移后各个DNA片段在膜上的相对位置与在凝胶中的相对位置仍然一样,故而称为印迹(blot

western转膜后marker拖尾原因

western转膜有时候marker深,有时候浅是很正常的事情因为不同批次转膜的时候,电压电流缓冲液温度等等条件不可能完全保持一致,在各种条件变化的情况下,很容易造成批次间的差异,具体表现就是有时候marker深,有时候浅所以western转膜有时候marker深,有时候浅是很正常的事情

western-blotting转膜是根据什么原理

原理:westernblotting转膜一般采用“滤纸-凝胶-膜-滤纸”夹心法,凝胶靠近负极,膜靠近正极。因为蛋白上结合有sds,因而带负电,在电流的作用下会从负极向正极运动,从而转移到膜上。

western-blot-的转膜缓冲液

目的是为了消除电荷对电泳的影响,western各步骤的缓冲液基本上都是要加的。

RNA样品的转膜(虹吸印迹法)

实验概要本实验介绍了RNA样品的转膜(即虹吸印迹法)的操作步骤等。主要试剂1. 20×SSC:175.3g NaCl,88.2g柠檬酸钠,DEPC水定容1000ml                      NaOH调pH至7.0,高压后备用。 2. 6×SSC:用20×SSC稀释。主要设备1. 紫

western-blotting转膜是根据什么原理

原理:westernblotting转膜一般采用“滤纸-凝胶-膜-滤纸”夹心法,凝胶靠近负极,膜靠近正极。因为蛋白上结合有sds,因而带负电,在电流的作用下会从负极向正极运动,从而转移到膜上。

PVDF膜活化处理完后不转膜能保存吗

PVDF膜即聚偏二氟乙烯膜(polyvinylidene fluoride)是蛋白质印迹法中常用的一种固相支持物。PVDF膜是疏水性的,膜孔径有大有小,随着膜孔径的不断减小,膜对低分子量的蛋白结合就越牢固。大于20000的蛋白选用0.45um的膜,小于20000的蛋白选用0.2um的膜。PVDF膜在

Western-Blot转膜时胶和膜放反了有影响吗

那蛋白就都转到滤纸上去了,没有到膜上。你找点丽春红染染膜看看,估计膜上什么也没有哇。不用往下做了。当然,如果你在膜上看到预染Marker了,还是值得再去尝试一下的。

PVDF膜活化处理完后不转膜能保存吗

PVDF膜即聚偏二氟乙烯膜(polyvinylidene fluoride)是蛋白质印迹法中常用的一种固相支持物。PVDF膜是疏水性的,膜孔径有大有小,随着膜孔径的不断减小,膜对低分子量的蛋白结合就越牢固。大于20000的蛋白选用0.45um的膜,小于20000的蛋白选用0.2um的膜。PVDF膜在

请教western转膜封闭后怎么办

western blot中封闭主要是起去除非特异性吸附的作用在western blot转膜时,PVDF膜在甲醇活化后是带电的,因而在转膜时会将蛋白吸附。封闭的目的就是要将PVDF膜上无蛋白的部分空隙用奶粉填满,以免孵抗体的时候一抗二抗与之结合,产生非特异条带或者是背景杂乱。所以western blo

170KD蛋白转膜用多大电压

电流通过导体(或用电器)的时候,会受到一定的阻力,但在电压的作用下,电流能够克服这种阻力顺利通过导体(或用电器),但遗憾的是,流过串联电阻(或用电器)后,电位(电势)再也没有以前那么高了,它的电位(电势)下降了。而且电阻越大,它两端电位(电势)的变化就越大。所以,把电流流过电阻(或用电器)时,在电阻

western-blot转膜是怎么做的

蛋白免疫印迹( Western Blot) 是将电泳分离后的细胞或组织总蛋白质从凝胶转移到固相支持物NC膜或PVDF 膜上。目前主流方法是电转印法,分为湿式转印与半干转印。湿式转印是将胶块垂直方向夹在湿式转印槽内进行电转印。以E-Blotter湿转槽为例,一般使用垂直电泳槽的缓冲液槽体,将内部垂直电

10分钟读懂转膜甲醇的作用

  VDF膜一定要在纯甲醇里浸润的!不然蛋白结合不上去。  在100%甲醇里短暂浸润,其目的是为了活化PVDF膜上面的正电基团,使它更容易跟带负电的蛋白质结合。小分子及大分子量的蛋白转移时,多加或不加甲醇也是这个目的。因为小分子不容易和膜结合而大分子更容易。  转膜的过程,是一个恒定电场下,电荷转移

western转膜之后,封闭之前要不要洗

westernblot中封闭主要是起去除非特异性吸附的作用在westernblot转膜时,pvdf膜在甲醇活化后是带电的,因而在转膜时会将蛋白吸附。封闭的目的就是要将pvdf膜上无蛋白的部分空隙用奶粉填满,以免孵抗体的时候一抗二抗与之结合,产生非特异条带或者是背景杂乱。所以westernblot中封

blot-转膜是应该加甲醇还是不该加

westernblot中封闭主要是起去除非特异性吸附的作用在westernblot转膜时,PVDF膜在甲醇活化后是带电的,因而在转膜时会将蛋白吸附。封闭的目的就是要将PVDF膜上无蛋白的部分空隙用奶粉填满,以免孵抗体的时候一抗二抗与之结合,产生非特异条带或者是背景杂乱。所以westernblot中封

目的蛋白分子量与转膜时间对应关系

转膜分干转和湿转,恒流转膜一般0.8mA/cm2分子量与转膜时间对应关系分离胶浓度(%) 线性分离范围 电泳时间(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0

目的蛋白分子量与转膜时间对应关系

转膜分干转和湿转,恒流转膜一般0.8mA/cm2分子量与转膜时间对应关系分离胶浓度(%) 线性分离范围 电泳时间(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0

western转膜后marker拖尾是怎么回事

western转膜有时候marker深,有时候浅是很正常的事情因为不同批次转膜的时候,电压电流缓冲液温度等等条件不可能完全保持一致,在各种条件变化的情况下,很容易造成批次间的差异,具体表现就是有时候marker深,有时候浅所以western转膜有时候marker深,有时候浅是很正常的事情

目的蛋白分子量与转膜时间对应关系

转膜分干转和湿转,恒流转膜一般0.8mA/cm2分子量与转膜时间对应关系分离胶浓度(%) 线性分离范围 电泳时间(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0

目的蛋白分子量与转膜时间对应关系

转膜分干转和湿转,恒流转膜一般0.8mA/cm2分子量与转膜时间对应关系分离胶浓度(%) 线性分离范围 电泳时间(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0

目的蛋白分子量与转膜时间对应关系

转膜分干转和湿转,恒流转膜一般0.8mA/cm2分子量与转膜时间对应关系分离胶浓度(%) 线性分离范围 电泳时间(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0

目的蛋白分子量与转膜时间对应关系

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目的蛋白分子量与转膜时间对应关系

转膜分干转和湿转,恒流转膜一般0.8mA/cm2分子量与转膜时间对应关系分离胶浓度(%) 线性分离范围 电泳时间(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0

转印到膜上的蛋白质检测实验

实验材料 蛋白质试剂、试剂盒 PBSTween印度墨汁仪器、耗材 摇床实验步骤 1.  将转印膜置于塑料容器中,在旋转摇床中于37℃用Tween 20溶液洗涤3次,每次30 min,然后再于室温用Tween 20溶液洗2次,每次30 min。2.  用印度墨汁溶液染膜3 h或过夜。 3.  在Twe

目的蛋白分子量与转膜时间对应关系

转膜分干转和湿转,恒流转膜一般0.8mA/cm2分子量与转膜时间对应关系分离胶浓度(%) 线性分离范围 电泳时间(h)15 10~43 0.512 12~60 0.7510 20~80 1.57.5 36~94 1.5~2.0

western转膜后marker拖尾是怎么回事

western转膜有时候marker深,有时候浅是很正常的事情因为不同批次转膜的时候,电压电流缓冲液温度等等条件不可能完全保持一致,在各种条件变化的情况下,很容易造成批次间的差异,具体表现就是有时候marker深,有时候浅所以western转膜有时候marker深,有时候浅是很正常的事情