聚丙烯酰胺凝胶电泳为什么跑出双条带
先要问问，你是跑蛋白还是DNA啊，如果是DNA，可能是PCR扩增出非特异的条带了，也就是我们所说的杂带，因为丙烯酰胺的分辨率很高，有时这些杂带在琼脂糖胶中不会被发现，但是到了丙烯酰胺胶中就会很明显了，因为如果在足够高的浓度下，单个碱基的差异都可以被区分。......阅读全文
为什么我的聚丙烯酰胺凝胶条带圆圆的不整齐
正常胶应该在30分钟到1个小时就凝固了按29:1混和丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺配制成30%的储备胶这个30%的Acr-Bis保质期有限的，三月份配的肯定就不能用了另外，TEMED易氧化失效，AP需要-20°保存
“智慧环保”让珠海金湾区跑出加速度
如非亲眼所见，一个由区级环保局开发出的环保综合服务系统能够内容丰富，细节周详，功能强大，确实让人难以相信。 据广东省珠海市金湾区环保局局长杨晖介绍，这套“金湾区环保综合服务平台”软件从系统构思、架构设计、档案电子化、平台搭建到数据深挖、细节完善，历时两年，就和呱呱坠地的婴儿一样不断经历成长，从
中国新型储能产业跑出“加速度”
“依托强大的内需市场及完整产业链供应链支撑，中国新型储能产业跑出‘加速度’，在全球形成了制造优势、产能优势、创新优势、人才优势和竞争优势，同时也孕育了如宁德时代、比亚迪、中电科蓝天等一批中国储能产业领先品牌。”在近日于浙江省杭州市举办的第十四届中国国际储能大会暨展览会上，中国化学与物理电源行业协
电泳中为什么加入电泳缓冲液和加样缓冲液
电泳缓冲液的主要作用是使胶的导电性和体系的一致,这样跑出的条带才回一致；加样缓冲液的主要作用是使PCR产物与其混合,使DNA沉于加样孔的底部,防止DNA跑出来.
聚丙烯酰胺凝胶电泳为什么出现锯齿状胶体
你的水封做的有问题，你用的什么做的水封？是水还是其他物质，如果是其他物质，有可能是里面残留有水分导致的。还有水封时你是否进行了吹干
聚丙烯酰胺凝胶电泳为什么出现锯齿状胶体
如果是分离胶有锯齿，应该是制胶的问题，与电泳槽和电泳缓冲液无关。可能水封做得不好，加水太猛，冲出了锯齿；同时胶凝固太快，可能是AP和TEMED过多。可减少二者用量，使胶在15-30分钟凝固。加水封要轻，避免扰动表面。至少加完水后界面恢复平整。
聚丙烯酰胺凝胶电泳为什么那凝胶根本就不凝
胶不凝的原因有很多,APS失效或量不够,催化剂的量不够,温度太低了也会影响凝胶的速度.ph也很关键。 丙烯酰胺单体和甲叉双丙烯酰胺交联剂按一定比例混合，在催化剂（如过硫酸铵）作用下聚合而成的交叉网状结构的凝胶，使其产生分子筛效应。凝胶孔径大小可以通过制备时所使用的浓度和交联度控制。常用做层析介
SDS－PAGE电泳过程的常见问题及解决方法
几乎所有蛋白质电泳分析都在聚丙烯酰胺凝胶上进行，而所有条件总要确保蛋白质解离成单个多肽亚基并进可能减少其相互间的聚集，最常用的就是SDS-PAGE电泳技术，关于大家在此过程中经常遇到的问题进行一些讨论： Q：SDS-PAGE电泳的基本原理? A：SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳，是在聚丙烯酰胺凝胶
“双一流”建设－为什么是“他们”成功入选
今天，中国高等教育掀开了崭新一页。42所学校进入一流大学建设高校行列、95所学校进入一流学科建设高校行列，“双一流”建设将为中国高等教育由大向强迈进而共同奋斗。随着“双一流”建设名单的公布，这一牵动全国高校乃至全社会关注的大事，也将真正迈出实质性一步。 这份名单是如何遴选出来的？为什么是“他们
条带转移(Band－Shift)
Or gel mobility shift assay, gel shift assay, gel retardation, electrophoretic mobility shift assay (EMSA) EMSA Using Oligos (Mike A. Dyer)Anneal two
血清蛋白醋酸纤维薄膜电泳条带为什么有宽有窄
因为各种蛋白质的百分含量不同，所以粗细不同。颜色深浅由于含量以及蛋白对染色剂亲和力不同影响。血清白蛋白和球蛋白正常值（表中数字为所占％）各部分醋酸纤维 蛋白质薄膜电泳纸上电泳白蛋白62～71 54～61球蛋白α1 3～4 4～6α2 6～10 7～9β7～11 10～13γ9～18 17～22。白蛋
marker条带非常模糊，无法辨别具体条带问题分析
出现上述情况，可能有以下几个原因：1. marker条带出现了降解。请确保在使用过程中避免核酸酶污染；2. 电泳缓冲液陈旧。电泳缓冲液多次使用后，离子浓度降低，pH值上升，缓冲能力减弱，从而影响电泳效果，建议经常更换电泳缓冲液；3. 电泳条件不合适。电泳时电压应不超过20V/cm，温度应低于30℃；
跑胶的maker最少可以加多少
跑胶的maker最少可以加5微升。琼脂糖凝胶制作胶板从而让样品在胶板上产生电泳，简称“跑胶”。分子生物学中的跑胶会出现条带，是因为带电荷的生物大分子在电泳池里的运动速度决定于该分子的分子量，所以相同分子量的生物大分子就聚集在一起形成条带，进而实现了分离纯化生物大分子的目的。Maker跑出来的每条条带
聚丙烯酰胺凝胶电泳为什么那凝胶根本就不凝呢
胶不凝的原因有很多,APS失效或量不够,催化剂的量不够,温度太低了也会影响凝胶的速度.ph也很关键。 丙烯酰胺单体和甲叉双丙烯酰胺交联剂按一定比例混合，在催化剂（如过硫酸铵）作用下聚合而成的交叉网状结构的凝胶，使其产生分子筛效应。凝胶孔径大小可以通过制备时所使用的浓度和交联度控制。常用做层析介
为什么marker缺带？
对于含有较小片段的marker，如果出现缺带现象，可能是因为：小条带跑出凝胶或分子量大小非常相近的条带不易辨认所致，可适当缩短电泳时间，降低电压，同时增加凝胶浓度；2. 凝胶中EB含量过低，导致大片段结合EB量太少或没有，在紫外光下亮度太低，可适当增加EB用量。
PCR只有引物二聚体的条带，没有目的基因条带
如果实验目的只是基因型鉴定，对PCR产物无其他要求的话，二聚体并非不能忍受，可以尝试以下方法优化反应条件：1.确定DNA模板为阳性，即确定含有目标序列；2.对退火温度设置温度梯度，琼脂糖电泳检测是否有目标条带，即使可能并不清晰；3.选取最清晰的温度，在PCR体系中设置镁离子浓度梯度，选取最理想的条件
双指示剂甲醛滴定法－为什么中性红
先Na2S2O3溶液滴定至溶液呈浅黄色（部I2已作用）,加入淀粉溶液,用Na2S2O3继续滴定至蓝色恰消失,即终点.淀粉指示剂若加入太早,则量I2与淀粉结合蓝色物质,部I2容易与Na2S2O3反应,使滴定发误差.直接碘量加I2,加进待测物质反应掉,受指示剂影响.
为什么双抗体夹心法是检测抗原的常用方法？
双抗体夹心法适用于测定二价或二价以上的大分子抗原，但不适用于测定半抗原及小分子单价抗原，因其不能形成两位点夹心。那么，为什么双抗体夹心法是检测抗原常用的方法?1、将特异性抗体与固相载体联结，形成固相抗体。洗涤除去未结合的抗体及杂质。 2、加受检标本，保温反应。标本中的抗原与固相抗体结合，形成固相抗原
为什么双波长测定法无需使用参比溶液
在单位时间内有两条波长不同的光束λ1和λ2交替照射同一个溶液，由检测器测出的吸收度是这两个波长下吸收度的差值△A。△A与被测定物质的浓度成正比，这个方法称双波长分光光度法。 双波长分光光度法的关键是正确选择两波长λ1、λ2，要求被测组分D在。
为什么通道式X光机要使用双视角技术
双视角通道式X光机（英文简称DV机）内部采用两套X射线源和探测器，是在传统单视角通道式X光机基础上发展起来的新技术设备。双视角设备从两个不同角度对其中所通过的包裹进行扫描成像，同时分别获得不同角度的两个X光图像供判图，与传统的单视角通道式X光机相比，双视角X光机具以下优势：1.当违禁品以特殊角度摆放
为什么蜘蛛有很多眼睛，而人类只有一双？
人类有两只面向前方的眼睛。我们的眼睛非常善于看到颜色和形状。我们的脑袋前面有两只大眼睛，这意味着它们可以一起猜测一个东西有多远(我们称之为"判断距离")。这使我们更容易抓住另一种动物，所以我们可以吃到它。 蜘蛛也是猎手，它们需要眼睛来帮助它们寻找和捕捉食物。事实上，大多数蜘蛛的视力不是很好，它
凝胶电泳常见问题分析
1、要跑琼脂糖凝胶电泳，5ng就能很清楚的跑出来，是这样吗？能够照相的清楚的条带，至少需要多少量呢？ 参考见解 ： 5ng已经可以了，但是或许20ng～200ng效果好，在此范围内呈线性。 2、把210bp的PCR产物进行酶切，
凝胶电泳常见问题分析
要跑琼脂糖凝胶电泳， 5ng 就能很清楚的跑出来是这样吗？能够照相的清楚的条带，至少需要多少量呢？参考见解：5ng 已经可以了，但是或许20ng50ng-200ng效果好，在此范围内呈线性。把210bp的pcr产物进行酶切,得到190+20bp的两个片段,请问能用琼脂糖凝胶电泳检测酶切结果吗?用多大
凝胶电泳（gel－electrophoresis）常见问题分析
琼脂糖凝胶电泳检测DNA时,跑出的带后面出现拖尾现象,什么原因造成的?参考见解： DNA带模糊：1、 DNA降解??避免核酸酶污染。2、 DNA上样量过多??减少凝胶中DNA上样量。3、 所用电泳条件不合适??电泳时电压不应超过20V/cm，温度＜30℃,巨大DNA链，温度应＜15℃，核查所用电泳缓
SDSPAGE电泳的电极缓冲液可以反复使用吗
反复使用次数多了会导致你的电泳速度变慢，电泳时看起来泡泡就是很脏的那种。最后跑出来的胶也不好看。缓冲液换的时间不太确定，因为情况不一样换的时间也不一样，有的实验室跑电泳比较频繁，就不存在这样的问题。平时肉眼看看，如果感觉比较浑浊了再换，但是如果要切胶纯化呀或者要求高一点那么最好用新的缓冲液；缓冲液肯
分离42和55之间的蛋白用多少浓度的胶比较好
一般凝胶浓度低是容易出现条带模糊的情况。个人手法是：用好点的材料制备凝胶来进行分析。10%的浓度可以用来分离这两种蛋白，将电泳电压在后半程调高可改善条带清晰度。也可以调高分离胶浓度至12%,但差别会较10%的更小。是在不行可以考虑用梯度胶分。“用好点的材料”是说的丙烯酰胺和甲叉。“将电泳电压在后半程
为什么SDSPAGE聚丙烯酰胺凝胶电泳中样品跑不进胶
溴酚蓝指示剂跑进去没有，有没有在合适的位置？染料配制的有无问题，最好找别的胶试一试。另外脱色液也很重要，加热（55度）脱色。可以同时上一个预染Marker看一看。
western－blot－条带怎么分析
把条带圈出来然后点测量 就是measure 出来的那个mean的数值就是灰度 应该说是白度值 条带越深数值越小
western－blot的条带分析
你的对照组是什么？对照组有没有出现问题？有问题的话是很可能是你在操作过程中有问题膜的质量是否有问题？
PCR电泳目的条带很浅
可以照胶的时候去调节亮度，对比和γ射线，然后会清楚一些。同时，你优化下PCR扩增条件之类的，提高扩增效率