实验动物实验标本的采集实验——动物采血方法
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：适用于少量采血，如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后，将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉，让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。②眼眶后静脉丛采血：一手拇指及食指抓住鼠两耳之间的皮肤固定，轻轻压迫颈部两侧，使眼球充分外突。取血管在眼角与眼球之间向眼底方向刺人，旋转切开静脉丛，血液即流入取血管中。小鼠一次可采血 0. 2~0. 3 ml, 大鼠一次可采血0.5~1. 0 ml 。短期内可重复采血。③颈（股）静脉或颈（股）动脉采血：麻醉动物，剪去操作部位的被毛，作颈静脉或颈动脉分离术，根据所需血量，使用注射器或采血器。④摘眼球采血：采血时，用左手固定动物，压迫眼球，尽量使眼球突出，右手用镊子或止血钳迅速摘除眼球，迅速采集流出的血液。(2) 豚鼠采血方法：①耳缘切口......阅读全文
动物行为实验方法
行为是基因与环境相互作用的结果。基因的变化（如转基因，基因敲除或下调等）最终表现为与基因相关的行为变化；环境的变化（如声、光、电的刺激和药物的处理）不仅其本身可直接影响动物的行为，而且可通过对相关基因的影响而改变动物的行为。学习和记忆更是这种相关基因与环境相互作用的行为表现的一种形式。学习是一个获得
实验动物编号标记方法
动物在实验前常常需要作适当的分组，那么就要将其标记使各组加以区别。标记的方法很多，良好的标记方法应满足标号清晰、耐久、简便、适用的要求。 常用的标记法有染色、耳缘剪孔、烙印、号牌等方法。 （一）颜料涂染 这种标记方法在实验室最常使用，也很方便。使用的颜料一般有3-5%苦味酸溶
实验动物局部麻醉方法
动物局部麻醉方法：用局部麻醉药阻滞周围神经末梢或神经干、神经节、神经丛的冲动传导，产生局部性的麻醉区，称为局部麻醉。其特点是动物保持清醒，对重要器官功能干扰轻微，麻醉并发症少，是一种比较安全的麻醉方法。适用于大中型动物各种短时间内的实验。局部麻醉操作方法很多，可分为表面麻醉、局部浸润麻醉、区域阻滞麻
实验动物标记实验
实验材料 兔子 小鼠试剂、试剂盒 3%～5%苦味酸 0.5%中性品红 2%硝酸银实验步骤 1. 染色法 适用于小动物，如兔子、大鼠、小鼠等。此方法是将化学药品涂在动物的被毛上，以不同颜色来区分动物。常用的化学药品有：3%～5%苦味酸溶液（黄色）、0.5%中性品红（红色）、2%硝酸银（咖啡色）
实验动物标记实验
实验材料兔子 小鼠试剂、试剂盒3%～5%苦味酸 0.5%中性品红 2%硝酸银实验步骤1. 染色法 适用于小动物，如兔子、大鼠、小鼠等。此方法是将化学药品涂在动物的被毛上，以不同颜色来区分动物。常用的化学药品有：3%～5%苦味酸溶液（黄色）、0.5%中性品红（红色）、2%硝酸银（咖啡色）。标记的原则是
动物实验跑台实验方法介绍
ZH-PT型动物实验跑台(平板跑步机)主要用于白鼠类小动物作跑步运动训练，可取代传统的游泳训练，使训练强度指标更加准确。是体能、耐力、运动损伤、营养、药物、生理和病理等实验的必要的手段之一。二、技术指标1、跑道数： 8通道9、跑台倾角±35°均可调2、大鼠跑道单道规格：1000× 96× 120 m
实验动物的取血实验
实验方法原理实验动物的采血方法很多，按采血部位不同，可分为：尾部采血(割、剪鼠尾)，鼠尾刺血法，眼眶静脉丛采血，断头采血，心脏采血，颈静脉(动脉)采血，腹主动脉采血，股动(静)脉采血，耳缘剪口采血，耳静脉采血，后肢外侧小隐静脉采血，前肢内侧皮下头静脉采血，毛细血管采血，翼下采血等。实验材料家兔狗豚鼠
动物血液采集实验——家兔耳静脉放血法
实验材料家兔仪器、耗材75％ 酒精棉花消毐干棉花凡士林刀片或解剖刀剪刀灭菌小试管特制家兔木箱实验步骤1. 将家兔放在特制木盒内，使兔头伸出在外。2. 在耳背外侧边缘剃毛（如图 1）。图 1 家兔耳边缘静脉采血切口图3. 用酒精棉花消毒剃毛区。并磨擦该区的边缘静脉上方的皮肤，使静脉扩张充血。4. 在剃
实验动物全身麻醉的方法
全身麻醉：麻醉药经呼吸道吸入或静脉、肌肉注射,产生中枢神经系统抑制,呈现神志消失，全身不感疼痛，肌肉松弛和反射抑制等现象，这种方法称全身麻醉。其特点为抑制深浅与药物在血液内的浓度有关,当麻醉药从体内排出或在体内代谢破坏后,动物逐渐清醒，不留后遗症。吸入麻醉法 麻醉药以蒸气或气体状态经呼吸道吸入而产生
实验动物编号的常规方法
常用的标记法有染色、耳缘剪孔、烙印、号牌等方法。（一）颜料涂染这种标记方法在实验室最常使用，也很方便。经常应用的涂染化学药品有：①、涂染红色：0.5%中性红或品红溶液。 ②、涂染黄色：3～5%苦味酸溶液。 ③、黑色：煤焦油的酒精溶液。 ④、涂染咖啡色：2%硝酸银溶液。标记时用毛笔或棉签蘸取上述
实验动物的麻醉方法2
二、麻醉方法（一）全身麻醉：麻醉药经呼吸道吸入或静脉、肌肉注射，产生中枢神经系统抑制，呈现神志消失，全身不感疼痛，肌肉松弛和反射抑制等现象，这种方法称全身麻醉。其特点为抑制深浅与药物在血液内的浓度有关，当麻醉药从体内排出或在体内代谢破坏后，动物逐渐清醒，不留后遗症。1. 吸入麻醉法 麻醉药以蒸气或气
实验动物的剖检方法
实验概要本文介绍了实验动物的剖检方法。实验步骤动物尸体取仰卧位，将四肢固定，用水浸湿被毛。从下颌中央开始到耻骨联合正中垂直切口，用骨剪把左右肋骨剪断后，将胸骨向前下方翻开，即可暴露胸、腹腔。按胸腔、腹腔、颅腔的次序观察各脏器位置、形状及彼此相互关系，然后分别取下。先在胸腔入口处切断食道和气管，将心和
实验动物编号的常规方法
常用的标记法有染色、耳缘剪孔、烙印、号牌等方法。（一）颜料涂染这种标记方法在实验室最常使用，也很方便。经常应用的涂染化学药品有：①、涂染红色：0.5%中性红或品红溶液。 ②、涂染黄色：3～5%苦味酸溶液。 ③、黑色：煤焦油的酒精溶液。 ④、涂染咖啡色：2%硝酸银溶液。标记时用毛笔或棉签蘸取上述
实验动物的麻醉方法1
麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。一、常用的麻醉药（一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％
实验动物的抓取固定方法
正确的抓取固定动物，是为了不损害动物健康，不影响观察指标，并防止被动物咬伤，保证实验顺利进行。抓取固定动物的方法依实验内容和动物类而定。抓取固定动物前，必须对各种动物的一般习性有所了解，抓取固定时既要小心仔细，不能粗暴，又要大胆敏捷，确实达到正确抓取固定动物的目的。（一）小鼠抓取固定方法小鼠温顺，一
实验动物的麻醉方法3
四、实验动物用药量的确定及计算方法（一）动物给药量的确定观察一种药物对实验动物的作用时，一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死。可以按下述方法确定剂量：1. 先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干
动物免疫实验
实验概要将某种蛋白注射新西兰大耳兔产生免疫反应，通过ELISA检测免疫产生的抗体。实验原理将抗原吸附在固相载体表面，加入抗血清，抗体和抗原在载体表面形成抗原-抗体复合物，洗去未结合抗体，然后加入辣根过氧化物酶标记的二抗（抗体的抗体），二抗与抗体结合，洗去未结合二抗，加底物显色剂显色，在一定波长下测定
动物免疫实验
实验概要将某种蛋白注射新西兰大耳兔产生免疫反应，通过ELISA检测免疫产生的抗体。实验原理将抗原吸附在固相载体表面，加入抗血清，抗体和抗原在载体表面形成抗原-抗体复合物，洗去未结合抗体，然后加入辣根过氧化物酶标记的二抗（抗体的抗体），二抗与抗体结合，洗去未结合二抗，加底物显色剂显色，在一定波长下测定
啮齿类实验动物——实验动物兽医护理
实验动物兽医护理（上篇）上期小华介绍了很多动物福利的内容，那么实验动物的福利该如何具体实施？随着全球实验动物行业的发展和规范，这中间对于兽医的要求越来越高，起到与IACUC（实验动物管理与使用委员会）同等重要的监督作用。这期小华将跟您聊一聊实验动物的兽医护理在实验动物福利的具体施行方面应注意的问题。
实验动物的选择
动物实验和实验动物都要求达到实验室操作规范（good laboratory practice, GLP）和标准操作程序（standard operating procedure, SOP）这些规范和操作对实验动物和实验室条件，工作人员素质，技术水平和操作方法都要求标准化。所有药物的安全评价试
快速了解动物血标本采集步骤
一、《细胞及血液样本采集操作指南》(gDNA) 培养细胞 1. 培养细胞用细胞瓶，须加满培养基后，常温运输。 血液 1. 已加入抗凝剂(选择用 EDTA-、柠檬酸-、ACD 等抗凝，不要用肝素抗凝)的新鲜 全血，常温运输。 注意事项 1. 我们不接收裂解的细胞样本以及全血样本。 2.
实验动物被毛去除方法
动物实验前应去除实验操作局部的被毛，以免影响实验操作和观察。常用的被毛去除方法有拔毛法、剪毛法、剃毛法和脱毛法四种。一、拔毛法 实验动物被固定后，用食指和拇指将暴露部位的毛拔去。进行采血或动、静脉穿刺时，常用此方法暴露血管穿刺的部位。拔毛不但暴露了血管，而且刺激了局部组织产生扩张血管的作用
实验动物抓取保定方法
一、小鼠的抓取保定小鼠性情较温顺，挣扎力小，比较容易抓取和保定。抓取时，用左手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部（如图11-3所示）放在格板或铁笼上。趁着小鼠试图挣脱的瞬间，迅速用另外三个手指压住小鼠的尾巴根部握入手掌（如图11-4所示）；放松拇指和食指，用另外三个手指控制小鼠，然后用食指和拇指捏住小鼠头部
肠溶剂动物药理实验的方法
1、选择那种动物比较好？用Beagle犬比较多。2、怎么实验动物给药？方法是使狗的嘴张开并固定，头稍抬起，用镊子把胶囊或是片子放在舌后部，倒少量的水，如果是胶囊水不能太多否则胶囊会漂起来，然后动作快点放开固定，Beagle犬很温顺一般不会有什么问题 。口服制剂用兔子的也比较多，但一般需要将药物粉碎后
动物实验的接种途径和方法
动物实验的接种途径和方法是检验技师考试的内容，医学教育网搜集整理相关内容供大家参考。 动物实验的接种途径和方法包括： ①皮内接种：通常以背部皮肤为宜。 ②皮下接种：选用腹壁、背部或腹股沟等处。 ③肌肉接种：一般选用臀部和大腿部肌肉，若为禽类以胸部肌肉为宜。 ④静脉接种：家兔以耳静脉外缘为
实验动物中常用的麻醉方法
(一)全身麻醉：麻醉药经呼吸道吸入或静脉、肌肉注射,产生中枢神经系统抑制,呈现神志消失，全身不感疼痛，肌肉松弛和反射抑制等现象，这种方法称全身麻醉。其特点为抑制深浅与药物在血液内的浓度有关,当麻醉药从体内排出或在体内代谢破坏后,动物逐渐清醒，不留后遗症。吸入麻醉法 麻醉药以蒸气或气体状态经呼吸道吸入
植物标本的采集和制作实验
实验材料：植物枝条 仪器、耗材：报纸 标本夹
植物标本的采集和制作实验
实验方法原理 实验材料 植物枝条仪器、耗材 报纸标本夹采集袋枝剪和高枝剪小铲子手锯号牌野外记录签和定名签放大镜海拔表（或 GPS 定位仪）实验步骤 (1) 根据采集目的和要求，确定采集时间和地点如各种植物的生长发育时期有长有短，因此必须在不同季节、不同时间采集，才能得到各类不同时期的标本。如木兰科的
动物RNA提取实验
SV总RNA试剂盒提取法 Trizol试剂提取法 实验方法原理 SV Total RNA Isolation System (SV 总RNA
动物RNA提取实验
实验方法原理 SV Total RNA Isolation System (SV 总RNA 纯化系统)可在1小时内从组织、培养细胞和白细胞中提取纯化完整总RNA，方法简单、快速。该系统以膜为基础，根据组织类型的不同，每次最多可纯化60 mg 组织。系统包含DNase 处理步骤，直接在小离