动物实验的接种途径和方法
动物实验的接种途径和方法是检验技师考试的内容，医学教育网搜集整理相关内容供大家参考。 动物实验的接种途径和方法包括： ①皮内接种：通常以背部皮肤为宜。 ②皮下接种：选用腹壁、背部或腹股沟等处。 ③肌肉接种：一般选用臀部和大腿部肌肉，若为禽类以胸部肌肉为宜。 ④静脉接种：家兔以耳静脉外缘为宜，小鼠和大鼠科注射尾静脉，豚鼠科注射后腿静脉，鸡可注射翅下静脉。 ⑤腹腔接种：常用于小白鼠。 ⑥脑内接种：常用于小白鼠。家兔、豚鼠由于颅骨较硬，需用钢锥先打孔后注射。 ⑦脚掌（垫）接种。......阅读全文
动物实验的接种途径和方法
动物实验的接种途径和方法是检验技师考试的内容，医学教育网搜集整理相关内容供大家参考。 动物实验的接种途径和方法包括： ①皮内接种：通常以背部皮肤为宜。 ②皮下接种：选用腹壁、背部或腹股沟等处。 ③肌肉接种：一般选用臀部和大腿部肌肉，若为禽类以胸部肌肉为宜。 ④静脉接种：家兔以耳静脉外缘为
实验动物接种途径和接种方法试验
实验方法原理 实验材料 实验动物试剂、试剂盒 病毒试剂仪器、耗材 注射器实验步骤 皮下接种。注射时轻轻捏起皮肤，手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；狗多在大腿外侧注射。皮下接种多用于观察
实验动物接种途径和接种方法试验——静脉接种
实验材料实验动物试剂、试剂盒病毒试剂仪器、耗材注射器实验步骤静脉接种。可造成病毒全身性感染，可观察病毒的致病性或机体对病毒的清除机制。(1) 小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。鼠尾静脉共有 3 根，左右两侧和背侧各 1根．两侧尾静脉比较容易固定，常被采用。(2) 豚鼠的静脉注射：一般采用前肢皮
实验动物接种途径和接种方法试验——颅内接种法
实验方法原理实验材料实验动物试剂、试剂盒病毒试剂仪器、耗材注射器实验步骤颅内接种法。将临床标本或特定的病毒直接接种于动物脑内，使动物形成实验性中枢神经系统感染。(1) 小白鼠：接种时用拇指与食指固定鼠头，消毒注射部位，于眼后角、耳前线和颅中线构成的三角区域中间进行注射，进针 2-3 mm。注射量乳鼠
实验动物接种途径和接种方法——皮下接种法及腹腔接种法
实验材料实验动物试剂、试剂盒病毒试剂仪器、耗材注射器实验步骤皮下接种。注射时轻轻捏起皮肤，手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；狗多在大腿外侧注射。皮下接种多用于观察动物病毒感染后的免疫学
实验动物给药途径和方法
在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。 （一）皮下注射 注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚
实验动物给药途径和方法
（六）淋巴囊注射蛙类常采用此法，因其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头背淋巴囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。有时也可采用胸淋巴囊给药。方法是将针头刺入口腔，使穿过下颌肌层入
实验动物染毒途径和技术4
（三)经皮肤染毒> 经皮肤染毒的目的有两种。一种是经皮染毒毒性试验，如经皮Lao测定常用大鼠，皮肤致癌试验常用小鼠‘另一种是皮肤刺激和致敏试验，皮肤刺激试验常用兔和豚鼠，皮肤致敏试验用豚鼠。 被毛的去除：试验前用机械法(剪剃毛)或化学法(硫化胸或硫化钡)脱毛。对兔和啮6类常用的脱毛剂处方为：
实验动物染毒途径和技术3
经皮肤染毒的目的有两种。一种是经皮染毒毒性试验，如经皮Lao测定常用大鼠，皮肤致癌试验常用小鼠‘另一种是皮肤刺激和致敏试验，皮肤刺激试验常用兔和豚鼠，皮肤致敏试验用豚鼠。 被毛的去除：试验前用机械法(剪剃毛)或化学法(硫化胸或硫化钡)脱毛。对兔和啮6类常用的脱毛剂处方为：①硫
实验动物染毒途径和技术1
在毒理学试验中染毒途径的选择，应尽可能模拟人在接触该受试物的方式。最常用的染毒途径为经口、经呼吸道；经皮及注射途径。染毒的途径和方法根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。不同途径的吸收速率，一般是静脉注射>吸入>肌内注射>腹腔注射>皮下注射>经口>皮内注射>其他途径(如经皮等)
实验动物染毒途径和技术2
实验动物 呼吸量 最低呼吸量 静式染毒2h可放动物数
病毒的培养方法实验——动物接种法
实验方法原理注意选择动物种类，年龄。按病毒侵袭部位的不同，选择适宜的接种途径，例如脑炎病毒以注射脑内最敏感。接种后经一定潜伏期，动物发病或死亡即进行解剖。根据动物的症状表现，器官病理改变，受染脏器组织悬液能在同种动物进行连续传代，并排除其他微生物污染的可能性等，即可证明有病毒的增殖。实验材料小白鼠实
免疫接种的接种途径
常用的有皮上划痕、皮内、皮下、口服与气雾等途径。死疫苗多用皮下注射法，活疫苗则可用皮内注射、皮上划痕或以自然感染途径接种，尤以后者为佳。如脊髓灰质炎活疫苗以口服为佳，而流感疫苗则以气雾吸入为佳。
免疫接种的接种途径有哪些？
常用的有皮上划痕、皮内、皮下、口服与气雾等途径。死疫苗多用皮下注射法，活疫苗则可用皮内注射、皮上划痕或以自然感染途径接种，尤以后者为佳。如脊髓灰质炎活疫苗以口服为佳，而流感疫苗则以气雾吸入为佳。
核酸疫苗的接种途径
直接肌肉注射注射的DNA在肌肉细胞中以环型分子存在，不能复制，并不能整合到宿主细胞染色体中。肌肉细胞中特有的横管系统与细胞外空间有直接交通，因而可能介导质粒 DNA的内吞作用。而且横纹肌中溶酶体和DNA酶的含量较低，可能也是质粒DNA能在细胞中存在较长时间的原因。微离子轰击介导的DNA免疫即基因枪。
常见的免疫接种的途径
常用的有皮上划痕、皮内、皮下、口服与气雾等途径。死疫苗多用皮下注射法，活疫苗则可用皮内注射、皮上划痕或以自然感染途径接种，尤以后者为佳。如脊髓灰质炎活疫苗以口服为佳，而流感疫苗则以气雾吸入为佳。
DNA疫苗的主要接种途径
直接肌肉注射注射的DNA在肌肉细胞中以环型分子存在，不能复制，并不能整合到宿主细胞染色体中。肌肉细胞中特有的横管系统与细胞外空间有直接交通，因而可能介导质粒 DNA的内吞作用。而且横纹肌中溶酶体和DNA酶的含量较低，可能也是质粒DNA能在细胞中存在较长时间的原因。微离子轰击介导的DNA免疫即基因枪。
实验动物的编号、抓取和固定方法
1、实验动物的编号实验时，为了分组和辨别的方便，常需事先为实验动物进行编号。常用的编号方法如下：1）染料标记法：常用染料——红色染料：5％中性红或品红液；黄色染料：3%～5％苦味酸溶液；咖啡色染料：2％硝酸银溶液；黑色染料：煤焦油的乙醇溶液。标记规则——根据实验动物被毛颜色的不同选择不同化学药品涂染
关于破伤风疫苗的接种部位、途径和剂量介绍
（1）DTaP：上臂外侧三角肌肌内注射，0.5ml。 （2）DTaP－Hib：肌内注射，推荐部位为臀部外上方1/4处。每1次人用剂量的无细胞百白破联合疫苗和b型流感嗜血杆菌结合疫苗各0.5ml混合，每次1ml。 （3）DTaP－IPV/Hib：上臂外侧三角肌或大腿前外侧（中间三分之一处）肌内
实验动物分组和标记编号方法
一、分组（一） 分组原则实验动物分组应严格按照随机分组的原则进行，使每只动物都有同等机会被分配到各个实验组中去，尽量避免人为因素对实验造成的影响。（二） 建立对照组实验动物分组时应特别注意建立对照组。对照组可分自身对照组和平行对照组。1．自身对照组自身对照是把实验动物本身在动物实验前、后两阶
实验动物实验标本的采集实验——动物采血方法
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：适用于少量采血，如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后，将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉，让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。
狂犬病基础免疫阶段的接种途径、部位和剂量
肌肉注射。2岁及以上儿童和成年人于上臂三角肌注射；2岁以下儿童于大腿前外侧肌注射。禁止在臀部肌肉注射。每剂0.5ml或1.0ml（具体参照产品规格或产品说明书）。
狂犬病基础免疫阶段的接种途径、部位和剂量
肌肉注射。2岁及以上儿童和成年人于上臂三角肌注射；2岁以下儿童于大腿前外侧肌注射。禁止在臀部肌肉注射。每剂0.5ml或1.0ml（具体参照产品规格或产品说明书）。
实验动物给药和采血方法（二）
4.后肢胫部皮下静脉取血将兔仰卧固定于兔固定板上，或由一人将兔固定好。拔去胫部被毛，在胫部上端股部扎以橡皮管，则在胫部外侧浅表皮下，可清楚见到皮下静脉。用左手两指固定好静脉，右手取带有5（1/2）号针头的注射器内皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器，表示针头已刺入血管，即可取血。一次
实验动物给药和采血方法（一）
1.割(剪）尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器（刀或剪刀）割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉
动物的注射方法实验
实验方法原理 实验材料 小白鼠试剂、试剂盒 灭菌生理盐水仪器、耗材 注射器（1 ml）6 号针头消毒煮沸器碘酒棉花75％ 酒精棉花消毒干棉花实验步骤 1. 注射器的准备与消毒注射器与针头一般用高压蒸气灭菌或干热灭菌比较彻底，而且可以预先准备好，但也可用煮沸消毒法，不过消毒后不能久放。此处主要介绍煮沸
实验动物的处死方法
实验动物的处死方法很多，应根据动物实验目的、实验动物品种（品系）、以及需要采集标本的部位等因素，选择不同的处死方法。无论采用哪一种方法，都应遵循安乐死的原则。安乐死是指在不影响动物实验结果的前提下，使实验动物短时间无痛苦地死亡。处死实验动物时应注意，首先要保证实验人员的安全；其次要确认实验动物已经死
实验动物的麻醉方法
1．全身麻醉 （1）吸入法 用一块圆玻璃板和一个钟罩或一个密闭的玻璃箱作为挥发性麻醉剂的容器，多选用乙醚作麻药。麻醉时用几个棉球，将乙醚倒可其中，迅速转入钟罩或箱内，让其挥发，然后把待麻醉动物投入，约隔4-6分钟即可麻醉，麻醉后应立即取出，并准备一个蘸有乙醚的棉球小烧杯，在动物麻醚变浅时给套在鼻
实验动物的处死方法
实验概要本文介绍了大鼠和小鼠及家兔和狗的几种处死方法，大鼠和小鼠的处死方法主要有：脊椎脱臼法，断头法，击打法，急性失血法和化学致死法。家兔和狗的处死方法主要有：空气栓塞法，急性失血法等。实验步骤1. 大鼠和小鼠的处死方法： 1) 脊椎脱臼法：右手抓住鼠尾用力向后拉，同时左手拇指与食指用力向下按
动物实验的常用方法
在医学教学、科研和医学工作中，不论是从事基础医学的还是临床医学、预防医学，都需要用实验动物来进行各种实验。通过对动物的实验的观察和分析，来研究和解决医学上存在的许多问题，动物实验方法已成为医学科学研究和教学工作中必不可少的重要手段。动物实验方法是多种多样的，在医学的各个领域内都有其不同的应用，其中一