实验动物实验标本的采集实验——实验动物脑脊液采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 狗、兔脑脊液的采集：通常采取脊髓穿刺法，穿刺部位在两髂连线中点稍下方第七腰椎间隙。动物麻醉后侧卧位固定，头尾部尽量弯向腰部，去被毛。消毒后一手固定穿刺部位的皮肤，腰穿针垂直刺入，当有落空感及动物的后肢跳动时，针已达椎管内，抽去针芯，即见脑脊液流出。如无脑脊液流出，轻轻调节进针方向及角度。避免脑脊液流出太快，以免形成脑疝。(2) 大鼠脑脊液的采集：可采用枕大孔直接穿刺法。大鼠麻醉后，头部固定。去被毛、消毒。手术暴露枕骨大孔。由枕骨大孔进针直接抽取脑脊液。缝合皮肤，处理刀口。......阅读全文
实验动物血液标本的选择及处理
实验动物血液标本的处理-----系列一血液标本的选择一般血液标本分为全血、血浆和血清。1、全血全血一般加入适当的抗凝剂，使血液不产生凝固含有形成分的标本，常用于碳氧血红蛋白、高铁血红蛋白、硫血红蛋白、细胞培养等的测定，及制备血中各种细胞和全血分析用。2、血浆血浆是全血去除细胞成分后剩余部分的标本，比
实验动物的取血实验
实验方法原理实验动物的采血方法很多，按采血部位不同，可分为：尾部采血(割、剪鼠尾)，鼠尾刺血法，眼眶静脉丛采血，断头采血，心脏采血，颈静脉(动脉)采血，腹主动脉采血，股动(静)脉采血，耳缘剪口采血，耳静脉采血，后肢外侧小隐静脉采血，前肢内侧皮下头静脉采血，毛细血管采血，翼下采血等。实验材料家兔狗豚鼠
脑脊液标本采集与处理
留取脑脊液标本于3个无菌试管中，每个试管1～2ml。第一管做病原生物学检验；第二管做化学和免疫学检验；第三管做理学和细胞学检验。标本采集后应立即送检，并于1h内检验完毕。标本放置过久，可造成细胞破坏、葡萄糖等物质分解、细菌溶解等，影响检验结果。
脑脊液标本采集及处理
腰椎穿刺成功后立即测定脑脊液压力，然后留取脑脊液标本于3个无菌试管中，每个试管1～2ml。第一管做病原生物学检验，第二管做化学和免疫学检验，第三管做理学和细胞学检验。标本采集后应立即送检，并于1h内检验完毕。因标本放置过久，可造成细胞破坏、葡萄糖等物质分解、细菌溶解等，影响检验结果。脑脊液标本应尽量
脑脊液检查之标本采集
脑脊液由 临床医师进行腰椎穿刺采集，必要时可从小脑延脑池或侧脑室穿刺获得。穿刺后应由医师用压力测定，正常人脑脊液压力卧位为0.78-1.76kpa（80-180mmH 2O），儿童为0.4-1.0kpa（40-100mmH2O）。任何病变使脑组织体积或脑脊液量增加时，脑脊液压力均可升高。待压力测定
脑脊液检查之标本采集
脑脊液由临床医师进行腰椎穿刺采集，必要时可从小脑延脑池或侧脑室穿刺获得。穿刺后应由医师用压力测定，正常人脑脊液压力卧位为0.78-1.76kpa（80-180mmH 2O），儿童为0.4-1.0kpa（40-100mmH2O）。任何病变使脑组织体积或脑脊液量增加时，脑脊液压力均可升高。待压力测定后将
动物血液采集
实验方法原理 实验材料 小鼠仪器、耗材 毛细吸管烧杯（盛自来水用）实验步骤 1. 右手拖鼠尾，左手的食指放在小鼠左耳后面，拇指放在右耳上，然后两手指抓住此两处的皮肤，并使小鼠的头向左转，而右眼朝上，此时由於颈静脉堵塞而使眼眶内血管丛充血，眼睛是突出的。2. 右手用一毛细吸管轻轻从小鼠右眼的边缘当中插
动物实验与动物仪器
一、动物实验的主要目的 医疗器械的动物试验的主要目的是研究医疗器械的安全性，通常医学研究中的动物试验研究的主体可能是一种新诊治方法和原理，或一种新的药物的作用机理等等，它的主要研究目的是机理、有效性和安全性，这个研究可能与器械的使用存在联系，也可能不存在联系，且研究中可能没有涉及到植入或与
动物免疫实验
实验概要将某种蛋白注射新西兰大耳兔产生免疫反应，通过ELISA检测免疫产生的抗体。实验原理将抗原吸附在固相载体表面，加入抗血清，抗体和抗原在载体表面形成抗原-抗体复合物，洗去未结合抗体，然后加入辣根过氧化物酶标记的二抗（抗体的抗体），二抗与抗体结合，洗去未结合二抗，加底物显色剂显色，在一定波长下测定
动物免疫实验
实验概要将某种蛋白注射新西兰大耳兔产生免疫反应，通过ELISA检测免疫产生的抗体。实验原理将抗原吸附在固相载体表面，加入抗血清，抗体和抗原在载体表面形成抗原-抗体复合物，洗去未结合抗体，然后加入辣根过氧化物酶标记的二抗（抗体的抗体），二抗与抗体结合，洗去未结合二抗，加底物显色剂显色，在一定波长下测定
动物实验时动物的选择
为了获得理想的实验结果，必须根据实验目的选择适宜的观察对象，在选择动物时，需考虑如下因素： 种属的选择不同种属的动物对同一疾病病因刺激的反应程度会有很大的差异。在选择实验动物时，尽可能选择对刺激因素较为敏感且与人类接近的种属。例如在进行发热实验时，宜首选家兔：在进行过敏反应和变态反应实验时，宜首选豚
脑脊液糖测定的标本采集
脑脊液可由临床医师进行腰椎穿刺采集，穿刺后应由医师做压力测定，压力测定完成后，将脑脊液收集于无菌试管中。
啮齿类实验动物——实验动物兽医护理
实验动物兽医护理（上篇）上期小华介绍了很多动物福利的内容，那么实验动物的福利该如何具体实施？随着全球实验动物行业的发展和规范，这中间对于兽医的要求越来越高，起到与IACUC（实验动物管理与使用委员会）同等重要的监督作用。这期小华将跟您聊一聊实验动物的兽医护理在实验动物福利的具体施行方面应注意的问题。
实验动物的选择
动物实验和实验动物都要求达到实验室操作规范（good laboratory practice, GLP）和标准操作程序（standard operating procedure, SOP）这些规范和操作对实验动物和实验室条件，工作人员素质，技术水平和操作方法都要求标准化。所有药物的安全评价试
疼痛实验动物模型制作实验
神经病理痛模型(neuropathic pain model) 组织炎症疼痛模型 疾病并发慢性痛模型 实验方法原理 疼
疼痛实验动物模型制作实验
实验方法原理 疼痛是一种与潜在和实际组织损伤相关的不快的感觉和情感经历。在生理情况下动物受到伤害性刺激时，通常会即刻产生快速的躲避或防御性反应行为，称为急性痛反应。实验材料 实验动物实验步骤 (1)神经瘤(neuroma)模型20世纪70年代，由Wall与其同事创建的神经病理性痛模型。其制备方法较为
免疫学实验动物实验介绍
动物实验介绍： 动物实验是在实验室内，为了获得有关生物学、医学等方面的新知识或解决具体问题而使用动物 进行的科学研究。动物实验必须由经过培训的、具备研究学位或专 业技术能力的人员进行或在其指导下进行。 动物实验正常值： 无 动物实验临床意义： 实验动物科学发展的最终目的，就是要通过对动
实验室血培养血标本的采集和培养小贴士
一、 血培养标本的采集1、皮肤消毒 用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，直径5cm，30秒待干后采血。推荐使用碘酊、洗必泰或碘伏作为皮肤消毒剂，消毒剂需要有足够的作用时间以保证消毒效果（碘酊作用1min；碘伏作用1.5～2min）。洗必泰的作用时间和碘酊一样，但是没有过敏反应，因此在静脉穿刺完成后不
脑脊液检验的标本采集与处理
腰椎穿刺成功后立即测定脑脊液压力，然后留取脑脊液标本于3个无菌试管中，每个试管1～2ml。第一管作病原生物学检验，第二管作化学和免疫学检验，第三管作理学和细胞学检验。标本采集后应立即送检，并于1h内检验完毕。因标本放置过久，可造成细胞破坏、葡萄糖等物质分解、细菌溶解等，影响检验结果。脑脊液标本应尽量
脑脊液标本的采集及运送原
1 检验项目脑脊液的细菌培养、真菌培养、一般细菌涂片、真菌涂片、结核菌涂片、墨汁染色查新型隐球菌。 2 物品准备与检验申请 2.1 首选无菌穿刺包内无菌管。也可请拿检验申请单到细菌室登记领取无菌试管。 2.2 填写检验申请单。用钢笔填写，字迹清楚，填写完整。
实验室实验动物设施的分类
按照设施的使用功能,分为实验动物生产设施、实验动物实验设施和实验动物特殊实验设施。(1)实验动物生产设施指用于实验动物生产的建筑物和设备的总称。包括动物生产区、辅助生产区和辅助区。(2)实验动物实验设施指以研究、试验、教学、生物制品、药品及相关产品生产、质控等为目的而进行实验动物实验的建筑物和设备的
实验动物的处死及尸体处理实验
一、实验动物的处死方法 1.较大动物的处死方法以下几种方法适用于豚鼠、猫、兔、狗等较大或更大一点的动物。 （1）空气栓塞法：将空气注入动物静脉，使之很快栓塞而死。当空气注入静脉后，可在右心随着心脏的跳动使空气与血液相混致血液成泡沫状，随血液循环到全身。如进入肺动脉，可阻塞其分支，进入心脏冠状动脉，造
实验室实验动物的管理原则
实验动物是指经人工培育,对其携带微生物和寄生虫实行控制,遗传背景明确或者来源清楚,用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的动物,如大鼠、小鼠、金黄地鼠、豚鼠、家兔、犬等。实验动物是从事科学研究、教学、生产、检定的重要支撑条件,广泛应用于医药研发、教学实验、生物检定等多个方面,是动物实验研究的
实验室实验动物环境的概念
实验动物不能像自然界动物一样可以自由选择适当的生活环境,而是根据科研要求有所限制。实验动物环境是将动物饲养在人为控制的有限空间内,并按照人的意志进行生长、繁殖、实验的人工特定场所。动物实验室或饲养室以外的周围环境称为外环境,以内的环境称为内环境。内环境又可分为小环境和大环境2个层次,其中小环境是指直
实验动物的处死及尸体处理实验
实验步骤一、实验动物的处死方法 1.较大动物的处死方法以下几种方法适用于豚鼠、猫、兔、狗等较大或更大一点的动物。 （1）空气栓塞法：将空气注入动物静脉，使之很快栓塞而死。当空气注入静脉后，可在右心随着心脏的跳动使空气与血液相混致血液成泡沫状，随血液循环到全身。如进入肺动脉，可阻塞其分支，进入心脏冠状
实验动物处死方法
实验动物的处死方法很多，应根据动物实验目的、实验动物品种（品系）、以及需要采集标本的部位等因素，选择不同的处死方法。无论采用哪一种方法，都应遵循安乐死的原则。安乐死是指在不影响动物实验结果的前提下，使实验动物短时间无痛苦地死亡。处死实验动物时应注意，首先要保证实验人员的安全；其次要确认实验动物已经死
动物RNA提取实验
实验方法原理 SV Total RNA Isolation System (SV 总RNA 纯化系统)可在1小时内从组织、培养细胞和白细胞中提取纯化完整总RNA，方法简单、快速。该系统以膜为基础，根据组织类型的不同，每次最多可纯化60 mg 组织。系统包含DNase 处理步骤，直接在小离
动物实验技术2
2．于第①、②、③管内分别加乙型溶血性链球菌培养物、四联球菌培养物、生理盐水各0.5m1。 3．上述3支试管每管加入5%氯化钙0.2ml，摇匀，置37℃水浴10min，待血液凝固，再继续37℃水浴约30min，观察结果。 【结果】 l．观察时，可将小试管慢慢倾斜至30°
实验动物捉拿、固定
捉拿和保定是动物实验操作技术中最基本最简单而又很重要的一项基本功。捉拿和保定各种动物的原则是：保证实验人员的安全，防止动物意外性损伤，禁止对动物采取粗暴动作。动物一般都是害怕陌生人接触其身体的，对于非条件性的各种剌激则更是进行防御性反抗。在捉拿、保定时，首先应慢慢友好地接近动物，并注意观察其表情，让
动物DNA提取实验
实验方法原理 在浓氯化钠（1-2 mol/L）溶液中，脱氧核糖核蛋白的溶解度很大，核糖核蛋白的溶解度很小，在稀氯化钠（0.14 mol/L）溶液中，脱氧核糖核蛋白的溶解度很小，核糖核蛋白的溶解度很大。因此，可利用不同浓度的氯化钠溶液，将脱氧核糖核蛋白和核糖核蛋白从样品中分别抽提出来。 将抽提得的