哺乳类实验动物病理剖检方法
一、基本要求（一）实验动物背景资料记录（1）实验动物来源、种类、年龄、性别、原编号、体重、临床症状等。（2）剖检时间、地点，麻醉方法、时间、麻醉者，处死方法、解剖者、记录人、温度、湿度。（3）其他指标：动物剖杀前禁食（不禁水）时间一致，为12h。（二）体表检查一般用于组织学取材的实验动物剖杀前应先隔离检疫7～10d，用于实验组和对照组动物的病理剖检视不同动物实验的要求而定。剖检前的体表检查项目如下：1、发育状态体格发育是否与年龄、品种相称，各部发育比例是否正常，有无畸形。2、营养状态丰满还是消瘦，检查时可用手抚摸实验动物背、腰部，营养良好时，背腰部厚实，皮肤弹性好。营养不良时，背腰部椎骨突出，肋骨明显。3、精神状态实验动物的自主活动、运动情况，对外界的反应（迟钝或亢进）、步态如何。4、感觉器官眼睛的瞳孔是否清晰等，有无分泌物，眼睑有无发炎及红肿，球结膜颜色变化，有否潮红、苍白、黄染或发绀。5、呼吸系统呼吸动物如呼吸次数、节律、有......阅读全文
哺乳类实验动物病理剖检方法
一、基本要求（一）实验动物背景资料记录（1）实验动物来源、种类、年龄、性别、原编号、体重、临床症状等。（2）剖检时间、地点，麻醉方法、时间、麻醉者，处死方法、解剖者、记录人、温度、湿度。（3）其他指标：动物剖杀前禁食（不禁水）时间一致，为12h。（二）体表检查一般用于组织学取材的实验动物剖杀前应先隔
实验动物的剖检方法
实验概要本文介绍了实验动物的剖检方法。实验步骤动物尸体取仰卧位，将四肢固定，用水浸湿被毛。从下颌中央开始到耻骨联合正中垂直切口，用骨剪把左右肋骨剪断后，将胸骨向前下方翻开，即可暴露胸、腹腔。按胸腔、腹腔、颅腔的次序观察各脏器位置、形状及彼此相互关系，然后分别取下。先在胸腔入口处切断食道和气管，将心和
关于法氏囊的剖检变化－介绍
法氏囊呈黄色胶冻样水肿、质硬、粘膜上覆盖奶油色纤维素性渗出物，有的法氏囊粘膜严重发炎、出血、坏死、萎缩。死鸡严重脱水、腿和胸部肌肉有出血，颜色暗红。肾肿胀，肾小管和输尿管充满白色尿酸盐。脾胀及腺胃和肌胃交界处粘膜出血。
哺乳类动物的基因转移方法
哺乳类动物基因转移方法，是将改建后的目的基因（或基因组片段）用显微注射等方法注入实验动物的受精卵（或着床前的胚胎细胞），然后将此受精卵（或着床前的胚胎细胞）再植入受体动物的输卵管（或子宫）中，使其发育成携带有外源基因的转基因动物。 根据外源基因导入的方法和对象的不同，制作转基因动物的方法主要有显微注
哺乳类无菌动物技术
实验概要本实验介绍了哺乳类无菌动物的制备流程。无菌动物在自然界并不存，必须用人为的方法养育而成。一般将临产前的健康动物用麻醉药品或拉断颈椎处死后，立即浸泡在37℃灭菌液中，送进无菌室（或无菌隔离器），按无菌手术进行剖腹，切除带胎子宫（子宫内首先应无菌），将其浸入消毒液里并立即输送到另一只隔离器中，切
哺乳类实验动物的遗传质量控制（三）
c) 实验室指定序号及实验室注册代号实验室指定序号是由实验室对已成功的转基因系给予的特定编号，最多不超过5位数字。而且，插入片段标示的字符与实验室指定序号的数字位数之和不能超过11。 实验室注册代号是对从事转基因动物研究生产的实验室给予的特定符号。 举例： C57BL/
哺乳类实验动物的遗传质量控制（二）
2.1.5.2 命名a) 重组近交系的命名由两个亲代近交系的缩写名称中间加大写英文字母X命名。由相同双亲交配育成的一组近交系用阿拉拍数字予以区分。例如：由BALB/c与C57BL两个近交系杂交育成的一组重组近交系，分别命名为CXB1、CXB2……对常用近交系小鼠的缩写名称规定如下：近交系
哺乳类实验动物的遗传质量控制（一）
1 范围本标准规定了哺乳类实验动物的遗传分类及命名原则、繁殖交配方法和近交系动物的遗传质量标准。 本标准适用于哺乳实验动物的遗传分类、命名、繁殖及近交系小鼠、大鼠的遗传纯度检测。2 哺乳类实验动物的遗传分类及命名 根据遗传特点的不同，实验动物分为近交系、封闭群和杂交群。2.1 近交系
哺乳类实验动物的遗传质量控制（四）
3.2.1 引种 作为繁殖用原种的封闭群动物必须遗传背景明确，来源清楚，有较完整的资料（包括品系名称、近交代数、遗传基因特点及主要生物学特征等）。为保持封闭群动物的遗传异质性及基因多态性，引禍动物数量要足够多，小型啮齿类封闭群动物引种数目一般不能少于25对。3.2.2繁殖为保持封闭群动物的
哺乳类实验动物的遗传质量控制（二）
2.1.7.1 定义同源导入近交系：通过杂交-互交（cro-intercro）或回交（backcro）等方式将一个基因导入到近交系中，由此形成的一个新的近交系与原来的近交系只是在一个很小的染色体片段上的基因不同，称为同源导入近交系（同类近交系），简称同源导入系（同类系）。2.1.7.2 命名同源导入
哺乳类实验动物的遗传质量控制（三）
2.3 杂交群 hybrids2..3.1 定义杂交群：由不同品系或种群之间杂交产生的后代。2.3.2 命名杂交群应按以下方式命名：此雌性亲代名称在前，雄性亲代名称居后，二者之间以大写英文字母"X"相连表示杂交。将以上部分用括号括起，再在其后标明杂交的代数（如F1、F2等）。对品系或种群的名称可使用
哺乳类实验动物的遗传质量控制（一）
1 范围本标准规定了哺乳类实验动物的遗传分类及命名原则、繁殖交配方法和近交系动物的遗传质量标准。本标准适用于哺乳实验动物的遗传分类、命名、繁殖及近交系小鼠、大鼠的遗传纯度检测。2 哺乳类实验动物的遗传分类及命名根据遗传特点的不同，实验动物分为近交系、封闭群和杂交群。2.1 近交系 ired stra
实验动物实验标本的采集实验——动物采血方法
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：适用于少量采血，如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后，将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉，让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。
哺乳类动物的DNA甲基化特点
哺乳类动物一生中DNA甲基化水平有着显著变化：在受精卵最初几次卵裂中，去甲基化酶清除DNA分子上几乎所有从亲代遗传下来的甲基化标记；在胚胎植入子宫时，一种新的甲基化遍布整个基因组，构建性甲基化酶使DNA重新建立一个新的甲基化模式，一旦细胞内新的甲基化模式建成，将通过维持甲基化酶以“甲基化维持”的形式
哺乳类实验动物的遗传质量控制(国家标准信息发布)
GB 14923-2001 哺乳类实验动物的遗传质量控制 前 言 本标准由1994年发布的国家标准GB 14923-1994《实验动物 哺乳动物的遗传质量控制》修订而成。修订中
实验动物处死方法
实验动物的处死方法很多，应根据动物实验目的、实验动物品种（品系）、以及需要采集标本的部位等因素，选择不同的处死方法。无论采用哪一种方法，都应遵循安乐死的原则。安乐死是指在不影响动物实验结果的前提下，使实验动物短时间无痛苦地死亡。处死实验动物时应注意，首先要保证实验人员的安全；其次要确认实验动物已经死
疼痛实验动物模型制作实验——神经病理痛模型
实验方法原理疼痛是一种与潜在和实际组织损伤相关的不快的感觉和情感经历。在生理情况下动物受到伤害性刺激时，通常会即刻产生快速的躲避或防御性反应行为，称为急性痛反应。实验材料实验动物实验步骤(1)神经瘤(neuroma)模型20世纪70年代，由Wall与其同事创建的神经病理性痛模型。其制备方法较为简单，
动物的注射方法实验
实验方法原理 实验材料 小白鼠试剂、试剂盒 灭菌生理盐水仪器、耗材 注射器（1 ml）6 号针头消毒煮沸器碘酒棉花75％ 酒精棉花消毒干棉花实验步骤 1. 注射器的准备与消毒注射器与针头一般用高压蒸气灭菌或干热灭菌比较彻底，而且可以预先准备好，但也可用煮沸消毒法，不过消毒后不能久放。此处主要介绍煮沸
动物行为实验方法
行为是基因与环境相互作用的结果。基因的变化（如转基因，基因敲除或下调等）最终表现为与基因相关的行为变化；环境的变化（如声、光、电的刺激和药物的处理）不仅其本身可直接影响动物的行为，而且可通过对相关基因的影响而改变动物的行为。学习和记忆更是这种相关基因与环境相互作用的行为表现的一种形式。学习是一个获得
实验动物的麻醉方法
实验动物的麻醉方法1．全身麻醉（1）吸入法 用一块圆玻璃板和一个钟罩或一个密闭的玻璃箱作为挥发性麻醉剂的容器，多选用*作麻药。麻醉时用几个棉球，将*倒可其中，迅速转入钟罩或箱内，让其挥发，然后把待麻醉动物投入，约隔4--6分钟即可麻醉，麻醉后应立即取出，并准备一个蘸有*的棉球小烧杯，在动物麻醚变浅时
动物实验的常用方法
在医学教学、科研和医学工作中，不论是从事基础医学的还是临床医学、预防医学，都需要用实验动物来进行各种实验。通过对动物的实验的观察和分析，来研究和解决医学上存在的许多问题，动物实验方法已成为医学科学研究和教学工作中必不可少的重要手段。动物实验方法是多种多样的，在医学的各个领域内都有其不同的应用，其中一
实验动物编号标记方法
动物在实验前常常需要作适当的分组，那么就要将其标记使各组加以区别。标记的方法很多，良好的标记方法应满足标号清晰、耐久、简便、适用的要求。 常用的标记法有染色、耳缘剪孔、烙印、号牌等方法。 （一）颜料涂染 这种标记方法在实验室最常使用，也很方便。使用的颜料一般有3-5%苦味酸溶
实验动物的麻醉方法
1．全身麻醉 （1）吸入法 用一块圆玻璃板和一个钟罩或一个密闭的玻璃箱作为挥发性麻醉剂的容器，多选用乙醚作麻药。麻醉时用几个棉球，将乙醚倒可其中，迅速转入钟罩或箱内，让其挥发，然后把待麻醉动物投入，约隔4-6分钟即可麻醉，麻醉后应立即取出，并准备一个蘸有乙醚的棉球小烧杯，在动物麻醚变浅时给套在鼻
实验动物的处死方法
实验动物的处死方法很多，应根据动物实验目的、实验动物品种（品系）、以及需要采集标本的部位等因素，选择不同的处死方法。无论采用哪一种方法，都应遵循安乐死的原则。安乐死是指在不影响动物实验结果的前提下，使实验动物短时间无痛苦地死亡。处死实验动物时应注意，首先要保证实验人员的安全；其次要确认实验动物已经死
实验动物的处死方法
实验概要本文介绍了大鼠和小鼠及家兔和狗的几种处死方法，大鼠和小鼠的处死方法主要有：脊椎脱臼法，断头法，击打法，急性失血法和化学致死法。家兔和狗的处死方法主要有：空气栓塞法，急性失血法等。实验步骤1. 大鼠和小鼠的处死方法： 1) 脊椎脱臼法：右手抓住鼠尾用力向后拉，同时左手拇指与食指用力向下按
实验动物局部麻醉方法
动物局部麻醉方法：用局部麻醉药阻滞周围神经末梢或神经干、神经节、神经丛的冲动传导，产生局部性的麻醉区，称为局部麻醉。其特点是动物保持清醒，对重要器官功能干扰轻微，麻醉并发症少，是一种比较安全的麻醉方法。适用于大中型动物各种短时间内的实验。局部麻醉操作方法很多，可分为表面麻醉、局部浸润麻醉、区域阻滞麻
实验室通常检查哪些内容
实验室检查主要包括生物学检查和理化检查。生物学检查又包括微生物学和寄生虫学，它们分别确定传染病的病原和寄生虫病的病原；理化检查是确定由中毒或者代谢原因导致的疾病理化因素。以下简单介绍有关的主要实验室检查内容。（1）微生物学检查。病料涂片镜检：对于一些具有特征性形态的病原体，比如曲霉菌、巴氏杆菌、葡萄
病理学的研究方法
病理学的研究方法多种多样，研究材料主要来自患病人体（人体病理材料）和实验动物以及其他实验材料如组织培养、 细胞培养 等（实验病理材料）。 （一）尸体剖检 对死亡者的遗体进行病理剖检（尸检）是病理学的基本研究方法之一。尸体剖检（autopsy
临床物理检查方法介绍剖胸术介绍
剖胸术介绍: 剖胸术是因为胸腔内部有病变者,需要开胸进行针对性手术。剖胸术正常值: 身体正常健康,没有疾病。剖胸术临床意义: 因胸腔引流管、尿管、胃管等管道会引起疼痛或不适,应妥善固定,当患者坐起或翻身时,注意保持管道应与身体同步,防止管道牵拉、扭曲,刺激伤口,加重疼痛;变换体位,咳嗽等活动:术后取
细胞重编程研究新突破：非哺乳类动物重编程
将已分化的细胞重编程，令其恢复多能性是一项重要的科学突破，这一成果也因此荣获了2012年诺贝尔生理/医学奖——两位科学家因证明“成熟细胞能被重编程恢复多能性”站在的科学的最高领奖台上。不过到目前为止，这种多能性重编程应用主要还是限制在哺乳动物中。 近期一组研究人员在9月3日的eLife杂志