哺乳类实验动物病理剖检方法
一、基本要求（一）实验动物背景资料记录（1）实验动物来源、种类、年龄、性别、原编号、体重、临床症状等。（2）剖检时间、地点，麻醉方法、时间、麻醉者，处死方法、解剖者、记录人、温度、湿度。（3）其他指标：动物剖杀前禁食（不禁水）时间一致，为12h。（二）体表检查一般用于组织学取材的实验动物剖杀前应先隔离检疫7～10d，用于实验组和对照组动物的病理剖检视不同动物实验的要求而定。剖检前的体表检查项目如下：1、发育状态体格发育是否与年龄、品种相称，各部发育比例是否正常，有无畸形。2、营养状态丰满还是消瘦，检查时可用手抚摸实验动物背、腰部，营养良好时，背腰部厚实，皮肤弹性好。营养不良时，背腰部椎骨突出，肋骨明显。3、精神状态实验动物的自主活动、运动情况，对外界的反应（迟钝或亢进）、步态如何。4、感觉器官眼睛的瞳孔是否清晰等，有无分泌物，眼睑有无发炎及红肿，球结膜颜色变化，有否潮红、苍白、黄染或发绀。5、呼吸系统呼吸动物如呼吸次数、节律、有......阅读全文
动物实验跑台实验方法介绍
ZH-PT型动物实验跑台(平板跑步机)主要用于白鼠类小动物作跑步运动训练，可取代传统的游泳训练，使训练强度指标更加准确。是体能、耐力、运动损伤、营养、药物、生理和病理等实验的必要的手段之一。二、技术指标1、跑道数： 8通道9、跑台倾角±35°均可调2、大鼠跑道单道规格：1000× 96× 120 m
实验动物的麻醉方法3
四、实验动物用药量的确定及计算方法（一）动物给药量的确定观察一种药物对实验动物的作用时，一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死。可以按下述方法确定剂量：1. 先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干
实验动物的麻醉方法2
二、麻醉方法（一）全身麻醉：麻醉药经呼吸道吸入或静脉、肌肉注射，产生中枢神经系统抑制，呈现神志消失，全身不感疼痛，肌肉松弛和反射抑制等现象，这种方法称全身麻醉。其特点为抑制深浅与药物在血液内的浓度有关，当麻醉药从体内排出或在体内代谢破坏后，动物逐渐清醒，不留后遗症。1. 吸入麻醉法 麻醉药以蒸气或气
实验动物编号的常规方法
常用的标记法有染色、耳缘剪孔、烙印、号牌等方法。（一）颜料涂染这种标记方法在实验室最常使用，也很方便。经常应用的涂染化学药品有：①、涂染红色：0.5%中性红或品红溶液。 ②、涂染黄色：3～5%苦味酸溶液。 ③、黑色：煤焦油的酒精溶液。 ④、涂染咖啡色：2%硝酸银溶液。标记时用毛笔或棉签蘸取上述
实验动物抓取保定方法
一、小鼠的抓取保定小鼠性情较温顺，挣扎力小，比较容易抓取和保定。抓取时，用左手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部（如图11-3所示）放在格板或铁笼上。趁着小鼠试图挣脱的瞬间，迅速用另外三个手指压住小鼠的尾巴根部握入手掌（如图11-4所示）；放松拇指和食指，用另外三个手指控制小鼠，然后用食指和拇指捏住小鼠头部
实验动物被毛去除方法
动物实验前应去除实验操作局部的被毛，以免影响实验操作和观察。常用的被毛去除方法有拔毛法、剪毛法、剃毛法和脱毛法四种。一、拔毛法 实验动物被固定后，用食指和拇指将暴露部位的毛拔去。进行采血或动、静脉穿刺时，常用此方法暴露血管穿刺的部位。拔毛不但暴露了血管，而且刺激了局部组织产生扩张血管的作用
实验动物的抓取固定方法
正确的抓取固定动物，是为了不损害动物健康，不影响观察指标，并防止被动物咬伤，保证实验顺利进行。抓取固定动物的方法依实验内容和动物类而定。抓取固定动物前，必须对各种动物的一般习性有所了解，抓取固定时既要小心仔细，不能粗暴，又要大胆敏捷，确实达到正确抓取固定动物的目的。（一）小鼠抓取固定方法小鼠温顺，一
实验动物标本的采集方法
实验概要本文介绍了实验动物标本(脑脊液、骨髓、消化液、腹水、胸水、尿液等)的采集方法。实验步骤1. 脑脊液的采集 1) 脊髓穿刺法狗、兔脑脊液的采集通常采取脊髓穿刺法。穿刺部位在两髂连线中点稍下方第七腰椎间隙。动物轻度麻醉后，侧卧位固定，使头部及尾部向腰部尽量弯曲，剪去第七腰椎周围的被毛。消毒
实验动物的麻醉方法1
麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。一、常用的麻醉药（一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％
实验动物全身麻醉的方法
全身麻醉：麻醉药经呼吸道吸入或静脉、肌肉注射,产生中枢神经系统抑制,呈现神志消失，全身不感疼痛，肌肉松弛和反射抑制等现象，这种方法称全身麻醉。其特点为抑制深浅与药物在血液内的浓度有关,当麻醉药从体内排出或在体内代谢破坏后,动物逐渐清醒，不留后遗症。吸入麻醉法 麻醉药以蒸气或气体状态经呼吸道吸入而产生
实验动物编号的常规方法
常用的标记法有染色、耳缘剪孔、烙印、号牌等方法。（一）颜料涂染这种标记方法在实验室最常使用，也很方便。经常应用的涂染化学药品有：①、涂染红色：0.5%中性红或品红溶液。 ②、涂染黄色：3～5%苦味酸溶液。 ③、黑色：煤焦油的酒精溶液。 ④、涂染咖啡色：2%硝酸银溶液。标记时用毛笔或棉签蘸取上述
细胞重编程研究新突破：非哺乳类动物重编程
将已分化的细胞重编程，令其恢复多能性是一项重要的科学突破，这一成果也因此荣获了2012年诺贝尔生理/医学奖——两位科学家因证明“成熟细胞能被重编程恢复多能性”站在的科学的最高领奖台上。不过到目前为止，这种多能性重编程应用主要还是限制在哺乳动物中。 近期一组研究人员在9月3日的eLife杂志
油田堵水调剖技术
根据我们多年的经验，目前大部分油田已进入中高含水期，油田早期的开发技术已不再适用，关键是改善注水开发效果，以增加驱油效率、提高产量、延长稳产期，zui终提高注水采收率。生产实践证明，调剖堵水技术是提高注水采收率的重要技术之一。油田堵水技术从50年代开始在现场使用，至今已有四十多年的历史，其发展经历了
肠溶剂动物药理实验的方法
1、选择那种动物比较好？用Beagle犬比较多。2、怎么实验动物给药？方法是使狗的嘴张开并固定，头稍抬起，用镊子把胶囊或是片子放在舌后部，倒少量的水，如果是胶囊水不能太多否则胶囊会漂起来，然后动作快点放开固定，Beagle犬很温顺一般不会有什么问题 。口服制剂用兔子的也比较多，但一般需要将药物粉碎后
动物实验的接种途径和方法
动物实验的接种途径和方法是检验技师考试的内容，医学教育网搜集整理相关内容供大家参考。 动物实验的接种途径和方法包括： ①皮内接种：通常以背部皮肤为宜。 ②皮下接种：选用腹壁、背部或腹股沟等处。 ③肌肉接种：一般选用臀部和大腿部肌肉，若为禽类以胸部肌肉为宜。 ④静脉接种：家兔以耳静脉外缘为
实验动物中常用的麻醉方法
(一)全身麻醉：麻醉药经呼吸道吸入或静脉、肌肉注射,产生中枢神经系统抑制,呈现神志消失，全身不感疼痛，肌肉松弛和反射抑制等现象，这种方法称全身麻醉。其特点为抑制深浅与药物在血液内的浓度有关,当麻醉药从体内排出或在体内代谢破坏后,动物逐渐清醒，不留后遗症。吸入麻醉法 麻醉药以蒸气或气体状态经呼吸道吸入
实验动物给药途径和方法
（六）淋巴囊注射蛙类常采用此法，因其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头背淋巴囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。有时也可采用胸淋巴囊给药。方法是将针头刺入口腔，使穿过下颌肌层入
实验动物体液采集方法
实验动物体液采集方法一、 血液的采集常用的采血方法有割（剪）尾采血、眼眶静脉丛采血、断头采血、心脏采血、颈静脉（动脉）采血、股动脉（静脉）采血、耳静脉采血、前肢头静脉采血、后肢小静脉采血等。二、 尿液的采集实验动物的尿液常用代谢笼采集，也可通过其他装置来采集。（一）、用代谢笼采集尿液代谢笼用于收集实
实验动物体液采集方法
一、血液的采集常用的采血方法有割（剪）尾采血、眼眶静脉丛采血、断头采血、心脏采血、颈静脉（动脉）采血、股动脉（静脉）采血、耳静脉采血、前肢头静脉才学、后肢小静脉采血等。二、尿液的采集实验动物的尿液常用代谢笼采集，也可通过其他装置来采集。（一）用代谢笼采集尿液代谢笼用于收集实验动物自然排出的尿液，是一
实验动物给药途径和方法
在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。 （一）皮下注射 注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚
实验动物分组和标记编号方法
一、分组（一） 分组原则实验动物分组应严格按照随机分组的原则进行，使每只动物都有同等机会被分配到各个实验组中去，尽量避免人为因素对实验造成的影响。（二） 建立对照组实验动物分组时应特别注意建立对照组。对照组可分自身对照组和平行对照组。1．自身对照组自身对照是把实验动物本身在动物实验前、后两阶
炭疽杆菌的细菌学检查
1、涂片镜检 病料涂片以碱性美蓝、瑞氏染色或姬姆萨染色法染色镜检，如发现有典型的炭疽杆菌，即可作出初步诊断，材料不新鲜时菌体易消失。 2、分离培养 取病料接种于普通琼脂或血液琼脂，37℃培养18~24h，观察有无典型的炭疽杆菌菌落，同时涂片作革兰染色镜检。 3、动物感染试验 将被检病料
炭疽芽孢杆菌的细菌学检查的介绍
1、涂片镜检 病料涂片以碱性美蓝、瑞氏染色或姬姆萨染色法染色镜检，如发现有典型的炭疽杆菌，即可作出初步诊断，材料不新鲜时菌体易消失。 2、分离培养 取病料接种于普通琼脂或血液琼脂，37℃培养18~24h，观察有无典型的炭疽杆菌菌落，同时涂片作革兰染色镜检。 3、动物感染试验 将被检病
动物实验与动物仪器
一、动物实验的主要目的 医疗器械的动物试验的主要目的是研究医疗器械的安全性，通常医学研究中的动物试验研究的主体可能是一种新诊治方法和原理，或一种新的药物的作用机理等等，它的主要研究目的是机理、有效性和安全性，这个研究可能与器械的使用存在联系，也可能不存在联系，且研究中可能没有涉及到植入或与
实验动物实验标本的采集实验——实验动物尿液采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒水仪器、耗材收集器实验步骤尿液的采集 常用的采集方法较多，一般在实验前需给动物灌服一定量的水。(1) 代谢笼法：此法较常用，适用于大、小鼠。将动物放在特制的笼内。一般需收集 5 小时以上的尿液，最后取平均值。(2) 导尿法：常用于雄性兔、狗。动物轻度麻醉后，固定于手术台上
实验动物实验标本的采集实验——实验动物脑脊液采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 狗、兔脑脊液的采集：通常采取脊髓穿刺法，穿刺部位在两髂连线中点稍下方第七腰椎间隙。动物麻醉后侧卧位固定，头尾部尽量弯向腰部，去被毛。消毒后一手固定穿刺部位的皮肤，腰穿针垂直刺入，当有落空感及动物的后肢跳动时，针已达椎管内，抽去针芯，即
动物实验室生物安全设备和设施要求
人们经过长期实践总结出支撑生命科学发展的4大要素，即A、E、R、I。A是试验动物(animal)，E是设备（equipment)R是试剂(reagent)，I是信息(information)。当今，由于科学技术的发展，要获得高、精、尖的仪器设备，纯度高的试剂以及必要的文献信息，已是容易办到的事情。随
刚地弓形虫的病原学检查
1、涂片染色法取急性期患者的体液（脑脊液、血液、骨髓、羊水、胸水）经离心后，沉淀物做涂片，或采用活组织穿刺物涂片，染色后，镜检弓形虫滋养体。此法简便，但阳性率不高，易漏检。此外，也可切片用免疫酶或荧光染色法，观察特异性反应，可提高虫体的检出率。2、动物接种分离法或细胞培养法采用敏感的实验动物小白鼠，
酵母菌四分体的制备与剖分实验
实验材料 酵母菌试剂、试剂盒 酵母裂解酶山梨糖仪器、耗材 解剖显微镜解剖针实验步骤 1a. Glusulase酶处理：用无菌水洗涤孢子3次，再用5 ml 无菌水重悬并取30 μl 稀释在270 μl 无菌水中。在光学显徽镜下观察细胞，检测完整的子囊，加3 μl 稀释的Glusulase酶到
酵母菌四分体的制备与剖分实验
实验材料酵母菌试剂、试剂盒酵母裂解酶山梨糖仪器、耗材解剖显微镜解剖针实验步骤1a. Glusulase酶处理：用无菌水洗涤孢子3次，再用5 ml 无菌水重悬并取30 μl 稀释在270 μl 无菌水中。在光学显徽镜下观察细胞，检测完整的子囊，加3 μl 稀释的Glusulase酶到孢子制备液中，用