实验小鼠给药和采血方法
（一）给药方法1．灌胃给药小鼠专用灌胃针由注射器和喂管组成，喂管长约1nm，喂管尖端焊有一金属小圆球，金属球中空，用途是防止喂管插入时造成损伤。金属球弯成20度角，以适应口腔与食道之间弯曲。将喂管插头紧紧连接在注射器的接口上，吸入定量的药液；左手捉住小鼠，右手拿起准备好的注射器。将喂管针头尖端防放进小鼠口咽部，顺咽后壁轻轻往下推，喂管会顺着食管滑入小鼠的胃，插入深度约3cm。用中指与拇指捏住针筒，食指按着针竿的头慢慢往下压，即可将注射器忠的药液灌入小鼠的胃中。在插入过程中如遇到阻力或可看见1/3的针管，则江喂管取出重新插入，因为这时灌胃并没有插入胃中。2．注射给药（1）皮下注射给药皮下注射给药是将药液推入皮下结缔组织，经毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环的过程。作皮下注射常选项背或大腿内侧的皮肤。操作时，常规消毒注射部位皮肤，然后将皮肤提起，注射针头取一钝角角度刺入皮下，把针头轻轻向左右摆动，易摆动则表示已刺入皮下，再......阅读全文
实验小鼠给药和采血方法
（一）给药方法1．灌胃给药小鼠专用灌胃针由注射器和喂管组成，喂管长约1nm，喂管尖端焊有一金属小圆球，金属球中空，用途是防止喂管插入时造成损伤。金属球弯成20度角，以适应口腔与食道之间弯曲。将喂管插头紧紧连接在注射器的接口上，吸入定量的药液；左手捉住小鼠，右手拿起准备好的注射器。将喂管针头尖端防放
常见小鼠给药及采血方法
小鼠灌胃小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入； 二是动作要轻柔，从口角进入，防止损失食道。做的多了自然就熟练了。具体操作过程如下：1. 准备灌胃针头。一般可以从市场上面买到，实在没有的话，可以用12号的针头，剪去针尖，用砂纸将头端磨平，也可
常见小鼠给药及采血方法
小鼠灌胃小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入； 二是动作要轻柔，从口角进入，防止损失食道。做的多了自然就熟练了。具体操作过程如下：1. 准备灌胃针头。一般可以从市场上面买到，实在没有的话，可以用12号的针头，剪去针尖，用砂纸将头端磨平，也可
常见小鼠给药及采血方法
小鼠灌胃小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入； 二是动作要轻柔，从口角进入，防止损失食道。做的多了自然就熟练了。具体操作过程如下：1. 准备灌胃针头。一般可以从市场上面买到，实在没有的话，可以用12号的针头，剪去针尖，用砂纸将头端磨平，也可
常见小鼠给药及采血方法
小鼠灌胃小鼠灌胃方法比较简单，需要关注的只有两点：一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入； 二是动作要轻柔，从口角进入，防止损失食道。做的多了自然就熟练了。具体操作过程如下：1.准备灌胃针头。一般可以从市场上面买到，实在没有的话，可以用12号的针头，剪去针尖，用砂纸将头端磨平，也可以
实验动物给药和采血方法（一）
1.割(剪）尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器（刀或剪刀）割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉
实验动物给药和采血方法（二）
4.后肢胫部皮下静脉取血将兔仰卧固定于兔固定板上，或由一人将兔固定好。拔去胫部被毛，在胫部上端股部扎以橡皮管，则在胫部外侧浅表皮下，可清楚见到皮下静脉。用左手两指固定好静脉，右手取带有5（1/2）号针头的注射器内皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器，表示针头已刺入血管，即可取血。一次
实验动物给药途径和方法
（六）淋巴囊注射蛙类常采用此法，因其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头背淋巴囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。有时也可采用胸淋巴囊给药。方法是将针头刺入口腔，使穿过下颌肌层入
实验动物给药途径和方法
在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。 （一）皮下注射 注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚
小鼠大鼠的采血方法
割（剪）尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3～0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉
动物颅脑给药—套管给药实验的操作方法
在脑科学基础研究领域中，颅脑给药已经成为大多数动物实验的重要环节。根据实验设计，常见有三种给药方式：单次注射给药、多次反复给药和持续释放给药。前者通常采用立体定位仪配合微量注射泵给药，第二种通常采用套管给药，第三种通常通过植入式缓释泵给药。 本文主要介绍套管给药，它主要用于给小鼠、大鼠、猴等实验动物
小鼠的灌胃给药技术指导
从新药研发角度来说，因口服给药是最方便、经济安全的方式，在研究中最为常用。动物实验中，灌胃是口服给药最常用的方法，然而，看似简单的几步，可对于初学者常常因为手法不当而伤到气道或食道，进而引起小鼠死或者逐渐消瘦至死亡。那么在灌胃的实验中，我们究竟该掌握哪些注射手法和技巧呢？下面一起来看看！灌胃： 借助
实验动物的除毛和给药
一、实验动物的除毛在动物实验中，被毛有时会影响实验操作与观察，因此必须除去。除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脱毛等。（一）剪毛法：剪毛法是将动物固定后，先用蘸有水的纱布把被毛浸湿，再用剪毛剪刀紧贴皮肤剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪破皮肤。剪下的毛应集中放在一容器内，防止到处飞扬。给狗、羊等动物
小鼠腹腔注射、采血
一、实验类型 提高型实验 二、实验原理 小鼠是医学实验最常用的一种动物，常用于药物筛选、急性毒性试验、采血制备抗血清、进行常规检查或某些生物化学分析等，本实验学习小鼠捉持方法、腹腔注射方法以及采血方法。 三、实验方法 材料： 小鼠，注射器，生理盐水，采血管，EP管，弯头镊子，酒精棉球等。
大小鼠肺部给药繁琐？北京元森凯德雾化给药技术详述
在生命医学科研领域，呼吸系统疾病的临床前模型构建和药物动力学（PK）/药效学（PD）研究往往需要将药物直接递送至动物的肺部。相比于传统的全身给药（如口服、静脉注射），肺部给药能更真实地模拟人类的呼吸道暴露环境，同时避免了药物在体内的首过效应（First-pass effect）和全身分布带来的干
动物血液采集实验——小鼠摘除眼球采血法
实验材料小鼠仪器、耗材小镊子灭菌小试管实验步骤1. 抓取小鼠使眼球突出同「小鼠眼眶后血管丛取血法」。2. 用一小镊子将突出的眼球摘除。3. 立刻将眼眶向下，使血液滴入小试管内。4. 用颈椎脱臼法处死小鼠：左手拉住鼠尾，使小鼠横爬在搪瓷盘上，右手用一镊子夹住鼠颈向右一拉。此法比「小鼠眼眶后血管丛取血法
实验动物经口给药法——实验动物经口给药法
实验材料小鼠大鼠豚鼠兔猫狗试剂、试剂盒水药液片剂胶囊剂仪器、耗材灌胃器注射器兽用针头鼠笼开口器导尿管镊子经口给药有口服和灌胃两种方法，口服法一般将药物掺入饲料或溶于水中，由动物自由摄取，但为了保证药物的剂量准确性，应使用灌胃法。可供选择的动物有小鼠、大鼠、豚鼠、兔、猫、狗等动物。灌胃法(1)小鼠灌胃
常用小型实验动物灌胃给药技术方法介绍
随着生命科学技术的发展，动物实验已成为医学实验研究的基本方法。根据实验研究目的、实验动物的种类及药物剂型、剂量的不同，要求对实验动物实施不同的给药方法。尤其对于药物的毒理、药效的研究和药物剂量的确定，经口灌胃给药方法是一种重要的途径。在国内文献上却很少见到具体的描述。在此，作者将在实践中摸索出的一套
实验动物经口给药法
经口给药有口服和灌胃两种方法，口服法一般将药物掺入饲料或溶于水中，由动物自由摄取，但为了保证药物的剂量准确性，应使用灌胃法。可供选择的动物有小鼠、大鼠、豚鼠、兔、猫、狗等动物。 灌胃法(1)小鼠灌胃法：将小鼠放在粗糙面上，用左手手掌及小指无名指夹住尾部，再以拇指及示指抓住两耳和头颈部的皮肤，使口腔和
实验动物实验标本的采集实验——动物采血方法
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：适用于少量采血，如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后，将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉，让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。
静脉采血方法和注意事项
静脉采血方法：1.概述：静脉采血多采用位于体表的浅静脉，通常采用肘部静脉、手背静脉、内踝静脉或股静脉。小儿可采颈外静脉血液。根据采血量可选用不同型号注射器，配备相应的针头。某些特殊检查，为避免血小板激活，要使用塑料注射器和硅化处理后的试管或塑料试管。2.操作方法和注意事项（1）患者准备：采血前应向患
从小鼠和人中克隆miRNA实验方法
Supplementary information to miRNAs cloned from mouse and humanAn online clearinghouse for miRNA gene name assignments (http://www.sanger.ac.uk/Softwa
皮肤给药法
熏蒸浴洗法 是将药物水煎熏蒸浴洗皮肤的一种给药方法。如《金匮要略》中以百合一升，以水一斗，渍之一宿，以洗身，疗“百合病一月不解变成口渴”。百合病日久不愈，阴津亏损，虚火亢盛，则口渴不止。百合养阴润燥，用百合煎汤浴洗周身，通过皮肤的吸收，达到养阴清热，生津止渴的作用。《金匮要略》还以矾石
缓控释给药系统与普通给药系统的比较
缓控释给药系统与普通给药系统相比，具有以下优点：1、减少给药次数，对半衰期短或需频繁给药的药物，可尾部了病人的顺应性；2、血药浓度平衡，减少“峰谷”现象，降低毒副作用，提高疗效；3、增加药物治疗的稳定性；4、避免某些药物对胃肠道的刺激性。 缓控释给药系统较普通给药系统有更多的优点，但也存在其局限性
豚鼠心脏采血实验
实验材料豚鼠仪器、耗材注射器实验步骤取血前应探明心脏搏动最强部位，通常在胸骨左缘的正中，选心跳最明显的部位作穿刺。针头宜稍细长些，以免发生手术后穿刺孔出血。因豚鼠身体较小，一般可不必将动物固定在解剖台上，而可由助手握住前后肢进行采血。成年豚鼠采血应不超过10ml为宜。
豚鼠心脏采血实验
实验材料 豚鼠仪器、耗材 注射器实验步骤 取血前应探明心脏搏动最强部位，通常在胸骨左缘的正中，选心跳最明显的部位作穿刺。针头宜稍细长些，以免发生手术后穿刺孔出血。因豚鼠身体较小，一般可不必将动物固定在解剖台上，而可由助手握住前后肢进行采血。成年豚鼠采血应不超过10ml为宜。
实验小鼠血脑屏障作用基本原理和实验方法
实验概要本文介绍了实验小鼠血脑屏障作用的基本原理和实验方法。实验原理血脑屏障由软脑膜、脉络丛的毛细血管壁和包在壁外的神经胶质细胞形成的胶质膜构成，起着天然的屏障作用，可以阻挡病原微生物及毒性产物、异物颗粒包括染料颗粒等从血流进入脑组织和脑脊液内，从而保护中枢神经系统免受损害。主要试剂1. 5%台盼蓝
小鼠的正确抓取与固定方法（一）
与小白鼠相生相杀的日子，被咬伤出血真是一件很让人抓狂的事，不只是影响着身体健康。所谓一朝被蛇咬，十年怕井绳，心里的恐惧还会延误我们的课题，关乎着毕业。不懂人情世故的小编也难逃此劫，回看过去几篇文章，其实小鼠性情温顺还挺可爱的，原来它咬伤我，在于我还不懂她……因此，在日常实验中，我们应该读懂小鼠，站在
豚鼠股动脉采血实验
实验材料 豚鼠仪器、耗材 注射器实验步骤 将动物仰位固定在手术台上，减去腹股沟区的毛，麻醉后局部用碘酒消毒。切开长约2～3cm的皮肤，使股动脉暴露及分离，然后用镊子提起股动脉，远端结扎，近端用止血钳夹住，在动脉中央剪一小孔，用无菌玻璃小导管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入，放开止血钳，血液既由导管流出。一
豚鼠股动脉采血实验
实验材料豚鼠仪器、耗材注射器实验步骤将动物仰位固定在手术台上，减去腹股沟区的毛，麻醉后局部用碘酒消毒。切开长约2～3cm的皮肤，使股动脉暴露及分离，然后用镊子提起股动脉，远端结扎，近端用止血钳夹住，在动脉中央剪一小孔，用无菌玻璃小导管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入，放开止血钳，血液既由导管流出。一次可采