实验动物经口给药法——实验动物经口给药法
实验材料小鼠大鼠豚鼠兔猫狗试剂、试剂盒水药液片剂胶囊剂仪器、耗材灌胃器注射器兽用针头鼠笼开口器导尿管镊子经口给药有口服和灌胃两种方法，口服法一般将药物掺入饲料或溶于水中，由动物自由摄取，但为了保证药物的剂量准确性，应使用灌胃法。可供选择的动物有小鼠、大鼠、豚鼠、兔、猫、狗等动物。灌胃法(1)小鼠灌胃法：将小鼠放在粗糙面上，用左手手掌及小指无名指夹住尾部，再以拇指及示指抓住两耳和头颈部的皮肤，使口腔和食管成一直线，腹部面朝上，右手持灌胃器（1~ 2ml的注射器和16号兽用针头，把针尖部磨钝，针头长4. Scm），从小鼠口角插入口腔内，经舌面紧沿上腭进入食管，进针2~ 3cm左右即可注药。手法正确，进针很顺。如进针遇到阻力，应退出重插，不能强插。以免刺破食管或误人气管，使动物死亡，灌药量一般为0.l~ 0.3ml/10g体重。(2)大鼠灌胃法：右手提起鼠尾，将鼠放在粗糙物（鼠笼面）上面 ，轻轻向后拉尾巴，此时大鼠前肢抓住粗糙面不动，......阅读全文
实验动物经口给药法——实验动物经口给药法
实验材料小鼠大鼠豚鼠兔猫狗试剂、试剂盒水药液片剂胶囊剂仪器、耗材灌胃器注射器兽用针头鼠笼开口器导尿管镊子经口给药有口服和灌胃两种方法，口服法一般将药物掺入饲料或溶于水中，由动物自由摄取，但为了保证药物的剂量准确性，应使用灌胃法。可供选择的动物有小鼠、大鼠、豚鼠、兔、猫、狗等动物。灌胃法(1)小鼠灌胃
实验动物经口给药法
经口给药有口服和灌胃两种方法，口服法一般将药物掺入饲料或溶于水中，由动物自由摄取，但为了保证药物的剂量准确性，应使用灌胃法。可供选择的动物有小鼠、大鼠、豚鼠、兔、猫、狗等动物。 灌胃法(1)小鼠灌胃法：将小鼠放在粗糙面上，用左手手掌及小指无名指夹住尾部，再以拇指及示指抓住两耳和头颈部的皮肤，使口腔和
动物颅脑给药—套管给药实验的操作方法
在脑科学基础研究领域中，颅脑给药已经成为大多数动物实验的重要环节。根据实验设计，常见有三种给药方式：单次注射给药、多次反复给药和持续释放给药。前者通常采用立体定位仪配合微量注射泵给药，第二种通常采用套管给药，第三种通常通过植入式缓释泵给药。 本文主要介绍套管给药，它主要用于给小鼠、大鼠、猴等实验动物
实验动物给药途径和方法
在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。 （一）皮下注射 注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚
实验动物给药途径和方法
（六）淋巴囊注射蛙类常采用此法，因其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头背淋巴囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。有时也可采用胸淋巴囊给药。方法是将针头刺入口腔，使穿过下颌肌层入
实验动物的除毛和给药
一、实验动物的除毛在动物实验中，被毛有时会影响实验操作与观察，因此必须除去。除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脱毛等。（一）剪毛法：剪毛法是将动物固定后，先用蘸有水的纱布把被毛浸湿，再用剪毛剪刀紧贴皮肤剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪破皮肤。剪下的毛应集中放在一容器内，防止到处飞扬。给狗、羊等动物
实验动物给药和采血方法（一）
1.割(剪）尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器（刀或剪刀）割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉
实验动物给药和采血方法（二）
4.后肢胫部皮下静脉取血将兔仰卧固定于兔固定板上，或由一人将兔固定好。拔去胫部被毛，在胫部上端股部扎以橡皮管，则在胫部外侧浅表皮下，可清楚见到皮下静脉。用左手两指固定好静脉，右手取带有5（1/2）号针头的注射器内皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器，表示针头已刺入血管，即可取血。一次
实验动物注射给药法
常用的注射给药法包括（1）皮下注射（2）肌肉注射（3）静脉注射（4）动脉注射（5）腹腔注射等。实验动物的注射给药法是指由注射器将无菌药液或生物制剂注入组织、血管或体腔中，达到预防、治疗、协助检查、维持正常生理功能以及减轻痛苦不适的目的。皮下注射、肌肉注射、静脉注射、动脉注射实验方法原理在动物实验中，
皮肤给药法
熏蒸浴洗法 是将药物水煎熏蒸浴洗皮肤的一种给药方法。如《金匮要略》中以百合一升，以水一斗，渍之一宿，以洗身，疗“百合病一月不解变成口渴”。百合病日久不愈，阴津亏损，虚火亢盛，则口渴不止。百合养阴润燥，用百合煎汤浴洗周身，通过皮肤的吸收，达到养阴清热，生津止渴的作用。《金匮要略》还以矾石
常用小型实验动物灌胃给药技术方法介绍
随着生命科学技术的发展，动物实验已成为医学实验研究的基本方法。根据实验研究目的、实验动物的种类及药物剂型、剂量的不同，要求对实验动物实施不同的给药方法。尤其对于药物的毒理、药效的研究和药物剂量的确定，经口灌胃给药方法是一种重要的途径。在国内文献上却很少见到具体的描述。在此，作者将在实践中摸索出的一套
实验动物给药量的确定
在观察一个药物的作用时，应该给动物多在的剂量是实验开始时应确定的一个重要问题。剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死，可以按下述方法确定剂量： 1．先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干分之一为应用剂量，一般可取1/10-1/5。 2．植物
实验动物给药量的确定
在观察一个药物的作用时，应该给动物多在的剂量是实验开始时应确定的一个重要问题。剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死，可以按下述方法确定剂量：1．先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干分之一为应用剂量，一般可取1/10-1/5。2．植物药粗制剂
由左颈总动脉导管经肾动脉的大鼠肾脏无创伤给药法
实验动物模型给药中有很多给药途径~但大多数都是全身给药，不但造成了贵重药物的浪费，而且也造成了没有必要的全身药物影响~肾脏疾病模型的治疗常用给药方法之不足：1、尾静脉注入：尾静脉注入不能锁定靶向器官，显像差2、肾实质注入：干细胞转移率不高3、肾包膜下注入：药物吸收不好，干细胞转移不均匀4、肾动脉注入
常规剂型、系统给药siRNA显示动物疗效
《自然生物技术》杂志发表一篇由哈佛大学和麻州大学科学家的一个妊娠毒血症siRNA药物发现工作。作者根据溶解性FLT1（sFLT1，也称sVEGFR1）mRNA与膜上全长FLT1 mRNA的区别找到选择性敲低sFLT1的siRNA序列。在小鼠模型中不需使用特殊纳米制剂的siRNA显着降低血浆和胎盘
巴马香猪猪皮经皮给药研究必不可少
皮肤是经皮传递系统中药物必须跨越的生理屏障，研究药物在皮肤中的转运吸收行为，是进行经皮给药系统处方设计、制剂评价以及产品临床安全性和有效性预测的重要步骤。动物皮肤模型目前在经皮给药实验中是最为常用的，研究及应用较多的动物模型涉及小鼠、大鼠、家兔、猴、猪等。但是猴类动物饲养、实验成本较高，一般的实验室
新型小动物雾化给药在雾化吸入法研究肺部炎症和纤维...
新型小动物雾化给药在雾化吸入法研究肺部炎症和纤维化治疗的应用2020年2月28日发表在Nature Communications的《Inhalation of lung spheroid cell secretome and exosomes promotes lung repair in pu
概述华法林的给药说明
严格掌握适应证。在无凝血酶原测定的条件时，切不可滥用本品。不同患者对本品的反应不一，用量务必个体化。依据凝血酶原时间而调整用量。一般维持正常对照值的1.5-2.5倍。由于本品系间接作用抗凝药，半衰期长，给药5-7日后疗效才可稳定，维持量的足够与否务必观察5-7日后方能作定论。当凝血酶原时间已显著
实验小鼠给药和采血方法
（一）给药方法1．灌胃给药小鼠专用灌胃针由注射器和喂管组成，喂管长约1nm，喂管尖端焊有一金属小圆球，金属球中空，用途是防止喂管插入时造成损伤。金属球弯成20度角，以适应口腔与食道之间弯曲。将喂管插头紧紧连接在注射器的接口上，吸入定量的药液；左手捉住小鼠，右手拿起准备好的注射器。将喂管针头尖端防放
鸟类急性经口毒性试验
实验概要通过测定供试物对鸟的半致死剂量值，评价化学农药对鸟类的急性经口毒性和急性饲喂毒性，为化学农药登记提供环境影响资料。主要设备试验用鸟笼容量瓶移液器烧杯电子天平实验材料日本鹌鹑[详细信息：日本鹌鹑，30日龄，体重90-110g，实验室条件驯养7d以上。]鹌鹑饲料实验步骤1. 按一定间距设置5-7
经口急性毒性试验
※化学毒物经口急性毒性试验是研究化学物毒性效应的基本试验。奉实习的目的是学习急性毒性试验的实验设计原则，学会经口灌胃技术、随机分组方法，掌握主要的LD50计算方法和急性毒性分级标准。※选择健康的实验动物，根据体重按随机分组的方法，依据LD50计算的设计原则将动物分成数个染毒组。一次或24h内多次给予
关于华法林的给药说明介绍
严格掌握适应证。在无凝血酶原测定的条件时，切不可滥用本品。不同患者对本品的反应不一，用量务必个体化。依据凝血酶原时间而调整用量。一般维持正常对照值的1.5-2.5倍。由于本品系间接作用抗凝药，半衰期长，给药5-7日后疗效才可稳定，维持量的足够与否务必观察5-7日后方能作定论。当凝血酶原时间已显著
关于法玛新的给药说明介绍
（1）法玛新静脉给药，用灭菌注射用水稀释，使其终浓度不超过2mg/ml； （2）法玛新建议先注入生理盐水检查输液管通畅性及注射针头确实在静脉之后，再经此通畅的输液管给药。以此减少药物外溢的危险，并确保给药后静脉用盐水冲洗； （3）表柔比星注射时溢出静脉会造成组织的严重损伤甚至坏死。小静脉注射
经自然腔道手术机器人动物实验成功
李汉忠教授正在操作手术机器人 近日，由北京协和医院泌尿外科与北京航空航天大学机器人研究所联合研发的经自然腔道手术机器人系统，成功完成临床前动物实验。初步验证该手术机器人的安全性、稳定性、精确性及可操作性，还标志着经自然腔道手术机器人系统迈向临床试验研究的可行性。 经尿道前列腺切
环保“小创意”渴望“市场经”给力
35岁的丁辉最近得到了一笔不菲的资助奖金。在“绿动未来·2010年高校环保科研应用技术项目支持计划”（以下简称“支持计划”）中，他负责的“单晶硅切割废液中硅与碳化硅的分离回收”技术从500余份环保科研方案中脱颖而出，获得了“优秀适用”奖。这意味着他的年轻团队获得了30万元支持资金，其“环保创意”
缓控释给药系统与普通给药系统的比较
缓控释给药系统与普通给药系统相比，具有以下优点：1、减少给药次数，对半衰期短或需频繁给药的药物，可尾部了病人的顺应性；2、血药浓度平衡，减少“峰谷”现象，降低毒副作用，提高疗效；3、增加药物治疗的稳定性；4、避免某些药物对胃肠道的刺激性。 缓控释给药系统较普通给药系统有更多的优点，但也存在其局限性
实验动物中常用的麻醉药
(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。(二)常用全身麻醉剂：乙醚 乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用
动物实验表明――体细胞经诱导可转化为肝脏细胞
中国科学院上海生命科学研究院生物化学与细胞生物学研究所惠利健研究小组新近完成的关于转化型肝脏细胞研究，在国际上首次证明了肝脏以外的体细胞可以被诱导直接转化为肝脏细胞。该研究论文于5月12日在线发表在国际顶尖学术刊物《自然》杂志上。有关专家认为，该研究为将来从病人自身体细胞诱导获得肝脏细胞奠定了基
实验动物骨髓的采集法
采集骨髓一般选择胸骨、肋骨、髁骨、胫骨和股骨等造血功能活跃的骨组织。猴、犬、羊等大动物的骨髓的采集用活体穿刺取骨髓的方法；大、小鼠等小动物骨头小难穿刺，只能剖杀后采胸骨、股骨的骨髓。（一）猴、犬、羊等的骨髓采集法1. 骨髓穿刺点定位（1）胸骨：穿刺部位在胸骨中线，胸骨体与胸骨柄连接处，或选胸骨上1/
实验动物组织标本的制备实验_解剖法
通常选用家兔、豚鼠、大白鼠或小白鼠等动物，禁食24 小时。击头致昏，以避免麻醉或失血对胃肠道机能的影响。立即打开腹腔，取出所需的胃、肠、胆囊等。去除附着的系膜或脂肪等组织。迅速放入充氧（或95%O2+5%CO2 ）保温（37 ℃）的营养液中，并以注射器用营养液将管腔内的食物残渣清洗干净。实验材料家兔