PCR基本实验方法(四)

Labelling PCR Products with DigoxigeninPCR products may be very conveniently labelled with digoxigenin-11-dUTP (Boehringer-Mannheim) by incorporating the reagent to 10-35% final effective dTTP concentration in a nucleotide mix of final concentration 50-100uM dNTPs (Emanual, 1991; Nucleic Acids Res 19: 2790). This allows substitution to a known extent of probes of exactly defined length, which in turn allows exac......阅读全文

PCR基本实验方法(四)

Labelling PCR Products with DigoxigeninPCR products may be very conveniently labelled with digoxigenin-11-dUTP (Boehringer-Mannheim) by incorporating

PCR基本实验方法(四)

 Labelling PCR Products with DigoxigeninPCR products may be very conveniently labelled with digoxigenin-11-dUTP (Boehringer-Mannheim) by incorporating

PCR基本实验方法(二)

Recommended Reaction Conditions:Initial Conditions:Initial denaturation at start: 92 - 97oC for 3 - 5 min. If you denature at 97oC, denature sample on

PCR基本实验方法(一)

Recommended Reagent Concentrations:Primers: 0.2 - 1.0 uMNucleotides: 50 - 200 uM EACH dNTPDimethyl sulphoxide (DMSO): 0 - 10% (v/v)Taq polymerase: 0.5

原位PCR实验的基本方法

  ① 固定组织或细胞:将组织细胞固定于预先用四氟乙烯包被的玻片上,并用多聚甲醛处理,再灭活除去细胞内源性过氧化物酶。  ②蛋白酶K消化处理:用60ug/ml的蛋白酶K将固定好的组织细胞片55℃消化处理2h后,96℃2min以灭活蛋白酶K。  ③PCR扩增:在组织细胞片上,加PCR反应液,覆盖并加液

PCR基本实验方法(二)

Recommended Reaction Conditions:Initial Conditions:Initial denaturation at start: 92 - 97oC for 3 - 5 min. If you denature at 97oC, denature sample on

PCR基本实验方法(五)

Cloning PCR ProductsT-A Cloning Strategy: Taq and other polymerases seem to have a terminal transferase activity which results in the non-templated ad

PCR基本实验方法(三)

Temperature Cycling:92 - 94oC for 30 - 60 sec (denature)37 - 72oC for 30 - 60 sec (anneal)72oC for 30 - 60 sec (elongate) (60 sec per kb target sequen

PCR基本实验方法(五)

Cloning PCR ProductsT-A Cloning Strategy: Taq and other polymerases seem to have a terminal transferase activity which results in the non-templated ad

PCR基本实验方法(一)

Recommended Reagent Concentrations:Primers: 0.2 - 1.0 uMNucleotides: 50 - 200 uM EACH dNTPDimethyl sulphoxide (DMSO): 0 - 10% (v/v)Taq polymerase: 0.5

PCR实验技术(四)

4.我们上面介绍的只是一种基本的PCR反应条件,对于具体的每一种PCR反应,反应条件差异很大,需要根据情况调整。(1)时间:上面介绍的时间适用于在0.2 ml薄壁管进行PCR反应,其反应体积为50 µl,热循环仪为Perkin-Elmer 9600 或9700、Master Cycler PCR仪(

免疫PCR:基本实验步骤

主要程序(1) 抗原+生物素化抗体→抗原-生物素化抗体复合物;(2) 加亲合素→抗原-生物素化抗体-亲合素复合物;(3) 加生物素化DNA→抗原-生物素化抗体-亲合素-生物素化DNA;(4) PCR扩增生物素化DNA部分。实验步骤(1)制备生物素化DNA将噬粒 BLuescript skt,用生物素

PCR实验室SOP文件(四)

输入一个新程序名:如1、2、3设定:温度(Targer  emperature)      恒温时间 (Incubation  Time)                  温度变化率(Temperature  Transition  Rate)           荧光检测模式(Acquisiti

荧光定量PCR实验基本步骤

1、目的基因(DNA和mRNA)的查找和比对;2、引物、探针的设计;3、引物探针的合成;    4、反应体系的配制;    5、反应条件的设定;    6、反应体系和条件的优化;    7、荧光曲线和数据分析;    8、标准品的制备;

原位PCR的基本方法

①固定组织或细胞:将组织细胞固定于预先用四氟乙烯包被的玻片上,并用多聚甲醛处理,再灭活除去细胞内源性过氧化物酶.②蛋白酶K消化处理:用60ug/ml的蛋白酶K将固定好的组织细胞片55℃消化处理2h后,96℃2min以灭活蛋白酶K.③PCR扩增:在组织细胞片上,加PCR反应液,覆盖并加液体石蜡后,直接

如何做好荧光定量PCR实验?(四)

3.7 模板浓度起始模板的量对于获得高产量很重要。对大多数PCR扩增和荧光PCR扩增,104到106个起始目的分子就足以观测到好的荧光曲线(或在溴化乙锭染色胶上观察到)。所需的最佳模板量取决于基因组的大小(下表)。举例说,100ng到1μg的人类基因组DNA,相当于3×104到3×105个分子,足以

PCR实验方法步骤

PCR在分子克隆和DNA分析中有多种用途,下面小编就向大家介绍PCR实验方法步骤:方法1/4在冰浴中,按以下次序将各成分加入一无菌0.5ml离心管中。      10×PCR buffer                    5 μl     dNTP mix (2mM)             

实验入门第四讲——PCR技术

  一、PCR是什么  聚合酶链式反应是一种用于放大扩增特定的DNA(或RNA)片段的分子生物学技术,它可看作是生物体外的特殊DNA复制,PCR的最大特点,是能将微量的DNA大幅增加。因此,无论是化石中的古生物、历史人物的残骸,还是几十年前凶杀案中凶手所遗留的毛发、皮肤或血液,只要能分离出一丁点的D

实验相关技术-|-PCR方法简介

  PCR是聚合酶链式反应的简称,是一种酶促化学反应,可以在试管里将待测的目的基因在很短的时间内扩增物十万倍乃至上百万倍,大大提高了基因诊断的灵敏度,降低了分析的难度。PCR法是目前基因诊断中使用最多的方法。它具有特异、敏感、产率高、快速、简便、重复性好、易自动化等突出优点;能在一个试管内将所要研究

RTPCR实验方法

RT-PCR定义:是指对组织或细胞的总RNA进行抽提,把RNA反转录为cDNA,然后设计目的基因引物进行PCR,琼脂糖电泳并数码拍照,分析电泳条带灰度值,判断目的基因mRNA转录水平的相对量的变化。 RT-PCR流程简介 一、抽提RNA: 1、防止RNA酶污染 180℃的高温下

PCR技术(四):PCR污染与对策

PCR反应的最大特点是具有较大扩增能力与极高的灵敏性,但令人头痛的问题是易污 染,极其微量的污染即可造成假阳性的产生.一、污染原因  (一)标本间交叉污染:标本污染主要有收集标本的容器被污染,或标本放置时,由于 密封不严溢于容器外,或容器外粘有标本而造成相互间交叉污染;标本核酸模板在提 取过程中,由

知晓PCR,定量PCR与数字PCR的实验方法与选择

从1985年至今的30多年时间里,PCR分析经历了三代技术的发展。一代传统PCR技术,采用琼脂糖凝胶电泳的方法对PCR产物进行定性分析。第二代荧光定量PCR技术,通过在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号的积累实时监控PCR进程,最后用Cq值对基因进行定量分析。第三代数字PCR技术,通过将PC

RTPCR实验方法大全

RT-PCR实验有三步:抽提RNA,RT,PCR。 要求:1.做RT前必需测RNA浓度,逆转录体系对RNA量还是有一些要求,常用500ng或1ug。2. RT按要求做,一般不会出太大问题。 3. PCR,按常规。但如需扩长片段,则对前两步要求较高,需要有完整的cDNA存在,不是单改变Mg2 浓度、退

PCR实验的原理和方法步骤

原理就是碱基互补原则步骤模板DNA的变性:模板DNA经加热至94℃左右一定时 聚合酶链式反应间后,使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA解离,使之成为单链,以便它与引物结合,为下轮反应作准备;②模板DNA与引物的退火(复性):模板DNA经加热变性成单链后,温度降至40~60℃左右,引物与模板

PCR实验的原理和方法步骤

原理就是碱基互补原则步骤模板DNA的变性:模板DNA经加热至94℃左右一定时 聚合酶链式反应间后,使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA解离,使之成为单链,以便它与引物结合,为下轮反应作准备;②模板DNA与引物的退火(复性):模板DNA经加热变性成单链后,温度降至40~60℃左右,引物与模板

Taq酶PCR实验方法介绍

General AdvicePCR allows the production of more than 10 million copies of a target DNA sequence from only a few molecules. The sensitivity of this tec

384well-PCR实验方法

Beforehand.choose empirically the annealing temperature of primers;make sure you have enough PCR-plates, Q-covers and sealing tape;prepare the stocks:

PCR实验的原理和方法步骤

原理就是碱基互补原则步骤模板DNA的变性:模板DNA经加热至94℃左右一定时 聚合酶链式反应间后,使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA解离,使之成为单链,以便它与引物结合,为下轮反应作准备;②模板DNA与引物的退火(复性):模板DNA经加热变性成单链后,温度降至40~60℃左右,引物与模板

PCR实验的原理和方法步骤

原理就是碱基互补原则步骤模板DNA的变性:模板DNA经加热至94℃左右一定时 聚合酶链式反应间后,使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA解离,使之成为单链,以便它与引物结合,为下轮反应作准备;②模板DNA与引物的退火(复性):模板DNA经加热变性成单链后,温度降至40~60℃左右,引物与模板

实验分析方法PCR扩增产物

孔板夹心杂交法:  该法是通过一固定于微孔板的捕获探针与PCR产物的某一区域特 异杂交使产物的间接地固定于微孔板上,然后,再用一生物素 等非放射性标记物标记的检测探针与产物的另一特异性较一次 杂交,漂洗后显色即可判断结果。该法需要两个杂交过程来检测 一个产物,因此,其特异性较一次杂交的检测法高。该法